The preservation of pear germplasm, like that of other clonal germplasms, is difficult because it requires conservation of whole plants or their tissues. Among the currently available methods for long-term conservation of clonal germplasm, cryopreservation of shoot tips is the most reliable and cost- and space-effective option. Alginate-coated axillary shoot tips from in vitro-grown pear were conserved successfully in liquid nitrogen (LN) following dehydration. Shoot recovery from cryopreserved shoot tips was improved greatly after 8 weeks of cold acclimation, but recovery decreased slightly after then. The highest regeneration rate was observed when in vitro shoot tips were preincubated in MS (Murashige and Skoog) medium with 0.3 M sucrose for 48 h, and when alginate-coated shoot tips were precultured in MS medium with increasing sucrose concentrations (0.5 M and 0.7 M) for 8 and 16 h, respectively. When the encapsulated beads were dehydrated for up to 7 h [25% water content (fresh weight basis)] under laminar flow, the highest regeneration rate was observed in "BaeYun No. 3" (55.7%) and "Whanggeum" (43.3%) after warming from LN. This technique is useful as a practical procedure to cryopreserve plant material that is sensitive to freezing of the surrounding cryoprotectant medium. Therefore, this technique appears to be promising for the cryopreservation of shoot tips from in vitro-grown plantlets of pear germplasm.
담양군 죽순으로 제조한 죽순식초와 시판 과실식초의 이화학적 특성인 산도, 무기질, 아미노산, 플라보놀을 비교 분석하고 SBSE-GC/MS방법을 사용하여 향기성분을 분석하였다. 죽순식초의 산도는 4.49%로 제일 낮았으며 무기질 중 Na의 경우 8.36 mg/100 g으로 다른 과실식초에 비해 그 함량이 낮았다. 아미노산은 다른 시판 식초에 비해 tyrosine과 lysine의 함량이 높았으며 flavonol aglycone 중 quercetin이 3.29 mg/L 들어있었다. SBSE방법으로 향기성분을 분석한 결과 aldehyde류의 함량이 시판식초에 비해 높았으며 특이적으로 수면 유도물질로 알려진 oleamide가 처음으로 검출되었다.
시클라멘의 급속증식체계를 확립하기 위하여 발아 후 자엽이 전개된 어린 식물체의 괴경, 자엽, 엽병 등의 절편을 분리하여 절편부위별로 캘러스 및 기관분화에 미치는 생장조절제의 종류와 농도에 따른 식물체의 생장반응을 조사하였다. 절편부위별 캘러스 형성 및 shoot분화에 있어서 auxin류 단용처리의 경우 괴경절편의 NAA처리구에서 절편으로부터 캘러스 없이 shoot가 직접 발생하여 가장 양호하였으며, 1개의 절편체에서 10개 이상의 다아체가 분화되었다. 자엽이나 엽병절편은 캘러스만 유도되었고 대부분 치상당시의 상태로 shoot 발생에 auxin류의 처리는 부적합하였다. Cytokinin류 단용처리는 1.0 mg/L TDZ처리구에서 괴경의 경우 100% shoot 분화율을 보였고, 자엽절편 역시 배양 40일경부터 다수의 shoot가 발생되어 양호하였다. NAA와 BA혼용처리는 0.5 mg/L NAA와 0.5 mg/L BA 혼용첨가된 배지에서 괴경. 자엽, 엽병절편 모두 shoot 분화가 양호하였으며, auxin류와 cytokinin 류 단용처리보다 NAA와 BA 혼용처리가 모들 절편에서 양호한 결과를 보였다. 뿌리발생을 유도하기 위해 NAA와 IBA 단용처리에 shoot를 배양한 결과 배양 15일경부터 0.5 mg/L IBA처리구에서 뿌리가 발생되기 시작하여 배양 30일 후에는 Pot이식이 가능할 정도로 뿌리가 발생되어 가장 양호한 결과를 보였다.
To set efficient transformation system in chrysanthemum, thirty-four chrysanthemum (Dendranthema grandiflorum Kitamura) varieties were collected and cultured for shoot regeneration. Five varieties, ‘Shuho-no-chikara', ‘Zinba', ‘Baekma', ‘Pink pride' and ‘Keumsu' of them were selected, because they had a high shoot regeneration efficiency. MS medium containing 1.0 mg/L NAA and BA respectively was very adequate for shoot regeneration in those varieties. MS medium with 3.0 mg/L NAA and 1.0 mg/L kinetin in ‘Shuho-no-chikara' and the medium with 0.5 mg/L NAA and 3.0 mg/L BA in ‘Keumsu' were also suitable for shoot regeneration. The most efficient callus induction and shoot regeneration were obtained on MS medium. Shoot regeneration was enhanced more than 8% on MS medium with 0.3% phytagel and 10-15 mg/L putrescine. The best cultural material for shoot regeneration was stem. When stem was used as a culture material, shoot regeneration rate was increased more than 26% and the days to shoot regeneration was shortened about 14 days.
다래(A. arguta)의 절간조직을 절편체로하여 식물생장조절제의 종류와 광조건이 shoot 형성에 미치는 영향을 조사하였으며 아울러 기내발근을 통하여 다래로부터 완전한 식물체를 재분화시킬 수 있는 실험체제를 확립하였다. 절간절편체는 3.0 mg/L의 zeatin이 단독첨가된 배지에 암배양한 경우 62.5%로 높은 shoot 형성률을 나타내었다. 0.5mg/L NAA가 포함된 WPM 배지에 4주 동안 배양하여 발근시킨 식물체는 vermiculite와 perlite 가 1:1(v/v)로 혼합된 배양토에 1주간 순화시킨 후 일반토양에 이식한 결과, 완전한 식물체로 생장시킬 수 있었다. 다래의 절간절편체를 shoot 유도배지에 배양하여 shoot의 형성과정을 발달단계별로 조직학적인 측면에서 관찰한 결과, 배양초기에는 신장되거나 모양이 다양한 무정형의 세포가 대부분이었으나 배양이 진전됨에 따라 세포의 크기가 작고 세포질이 충만한 분열조직군이 형성되면서 이들로부터 장차 shoot로 발달될 shoot primordia가 형성되는 것을 관찰할 수 있었다.
This study describes the successful establishment of a cryopreservation protocol for Citrus limon cultivars: 'Frost Eureka limon' and 'Cook Eureka limon', using a droplet-vitrification method. The shoot tips that were excised from in vitro grown seedlings of the two cultivars were preserved in liquid nitrogen (LN) and successfully regenerated into whole plants. Excised shoot tips were pre-cultured for 1 or 2 days in 0.3 M and 0.5 M sucrose solutions at $25^{\circ}C$ and incubated in a loading solution (LS) composed of 17.5% glycerol + 17.5% sucrose in Murashige and Skoog (MS) medium for 40 min at $25^{\circ}C$. Prior to direct immersion in LN for 1 h, the shoot tips were dehydrated with plant vitrification solution 2 (PVS2) at $0^{\circ}C$ or PVS3 at $25^{\circ}C$. The frozen shoot tips were re-warmed and unloaded with 1.2 M sucrose in $\text\tiny{^1/_2}$ MS for 30 min at $25^{\circ}C$. Shoot tips were post-cultured overnight on survival medium and then micrografted onto 'trifoliate orange' (Poncirus trifoliate (L.) Raf. seedling rootstocks for recovery and to produce whole plants. The highest regrowth rates were 53.5% and 50.3% for cryopreserved shoot tips of 'Frost Eureka limon' and 'Cook Eureka limon', respectively, when pre-cultured in 0.3 M and 0.5 M sucrose concentrations in a sequencing manner, with LS and treated with PVS2 for 60 min at $0^{\circ}C$. We also investigated whether the ammonium ion concentration on post-culture medium affected the viability of the cryopreserved Citrus shoot tips. The viability of cooled samples, following culturing on woody plant media (WPM) containing $\text\tiny{^1/_4}$ ammonium nitrate overnight before micrografting, was the highest (70.3%) in 'Frost Eureka limon'. The study described here is a cost-effective and safe method to conserve Citrus fruit cultivars, for the improvement and large-scale multiplication of fruit plants and for breeding disease resistance.
Erwinia pyrifoliae, which causes black shoot blight in apple and pear trees, was first identified in Korea in 1995. Extensive measures are typically used to control the disease by eradicating trees in diagnosed orchards, owing to the detrimental impact of the disease on apple and pear production. However, despite governmental efforts, the disease has continuously spread. In this study, we analyzed the current status of the black shoot blight occurrence in apple and pear orchards between 1995 to 2022. Our findings reveal that over the past 28 years, black shoot blight has occurred in 26 cities and districts across five Korean provinces. The affected regions are predominantly concentrated in the northern part of Korea, including the Gangwon and Gyeonggi provinces. Furthermore, black shoot blight has gradually expanded to the northern provincial regions of Chungbuk, Chungnam, and Gyeongbuk, which are centrally situated in Korea. Furthermore, the occurrence pattern of black shoot blight differed between apple and pear orchards; in apple orchards, black shoot blight occurred consistently each year, with a sudden increase in cases in 2020; however, in pear orchards, it has considerably decreased since 2007. To the best of our knowledge, this is the first comprehensive report on the occurrence of black shoot blight in apple and pear trees in 28 years, and the results will provide valuable insights for future disease management strategies.
In order to establish in vitro propagation method of sundew, Drosera rotundifolia L., the effects of MS medium concentration, cytokinin type and concentration, pH, and auxin type and concentration on shoot proliferation and root formation were investigated using shoots at 3 month after seed germination. The highest shoot production was obtained with the half strength of MS ($\frac{1}{2}$ MS) medium than with any other strength of MS medium tested. Addition of kinetin or BA in $\frac{1}{2}$ MS medium was strongly suppressed shoot proliferation. The suppression of shoot proliferation was more effective in BA-supplemented $\frac{1}{2}$ MS medium than kinetin-supplemented. The optimum pH of the media for shoot proliferation was pH 5.7-6.7. Shoots were subcultured in $\frac{1}{2}$ MS medium supplemented with 0.5mg/L 2,4-D for rooting every 8 weeks. All subcultured shoots produced extensive root systems after 5 to 6 week culture. Plantlets after root development were planted in plastic pots filled with moss. The survival rate of plantlets was almost 100%. On subculturing every 8 weeks, hundreds of the plants were propagated from a single plant within a year.
식물생장조절제의 종류와 농도를 모색하여 할미꽃의 발근 최적 조건을 조사하여 정상적인 재분화체를 획득하고자 하였다. 지금까지의 선행연구를 토대로 최적조건에서 shoot를 유도시킨 후 발근 유도 생장조절제에 바로 옮기면 shoot가 너무 작아 재분화체가 성장하지 못하고 고사되었다. 1/2 MS에서 키운 shoot를 3.0 mg/L NAA를 첨가한 배지에서 3일간 생장시킨 후, 1/3 MS로 옮겨 치상 한 경우, 약 10일 전후에 뿌리의 유도가 관찰되었다. 이렇게 뿌리가 유도된 재분화체는 염의 농도와 설탕의 농도를 동시에 순차적으로 낮추어 순화처리되었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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