Gefitinib is the well-tolerated first-line treatment of non-small cell lung cancer. As it needs analgesics during oncology treatment, particularly in the context of the coronavirus disease, where patients are more susceptible to contract high fever and sore throat. This has increased the likelihood of taking both gefitinib and antipyretic analgesic acetaminophen (APAP). Given that gefitinib and APAP overdose can predispose patients to liver injury or even acute liver failure, there is a risk of severe hepatotoxicity when these two drugs are used concomitantly. However, little is known regarding their safety at therapeutic doses. This study simulated the administration of gefitinib and APAP at clinically relevant doses in an animal model and confirmed that gefitinib in combination with APAP exhibited additional hepatotoxicity. We found that gefitinib plus APAP significantly exacerbated cell death, whereas each drug by itself had little or minor effect on hepatocyte survival. Mechanistically, combination of gefitinib and APAP induces hepatocyte death via the apoptotic pathway obviously. Reactive oxygen species (ROS) generation and DNA damage accumulation are involved in hepatocyte apoptosis. Gefitinib plus APAP also promotes the expression of Kelch-like ECH-associated protein 1 (Keap1) and downregulated the antioxidant factor, Nuclear factor erythroid 2-related factor 2 (Nrf2), by inhibiting p62 expression. Taken together, this study revealed the potential ROS-mediated apoptosis-dependent hepatotoxicity effect of the combination of gefitinib and APAP, in which the p62/Keap1/Nrf2 signaling pathway participates and plays an important regulatory role.
Objective: Numerous studies have indicated that the apoptosis and proliferation of granulosa cells (GCs) are closely related to the normal growth and development of follicles and ovaries. Previous evidence has suggested that miR-126-3p might get involved in the apoptosis and proliferation of GCs, and phosphatidylinositol 3-kinase regulatory subunit 2 (PIK3R2) gene has been predicted as one target of miR-126-3p. However, the molecular regulation of miR-126-3p on PIK3R2 and the effects of PIK3R2 on porcine GCs apoptosis and proliferation remain virtually unexplored. Methods: In this study, using porcine GCs as a cellular model, luciferase report assay, mutation and deletion were applied to verify the targeting relationship between miR-126-3p and PIK3R2. Annexin-V/PI staining and 5-ethynyl-2'-deoxyuridine assay were applied to explore the effect of PIK3R2 on GCs apoptosis and proliferation, respectively. Real-time quantitative polymerase chain reaction and Western Blot were applied to explore the regulation of miR-126-3p on PIK3R2 expression. Results: We found that miR-126-3p targeted at PIK3R2 and inhibited its mRNA and protein expression. Knockdown of PIK3R2 significantly inhibited the apoptosis and promoted the proliferation of porcine GCs, and significantly down-regulated the mRNA expression of several key genes of PI3K pathway such as insulin-like growth factor 1 receptor (IGF1R), insulin receptor (INSR), pyruvate dehydrogenase kinase 1 (PDK1), and serine/threonine kinase 1 (AKT1). Conclusion: MiR-126-3p might target and inhibit the mRNA and protein expressions of PIK3R2, thereby inhibiting GC apoptosis and promoting GC proliferation by down-regulating several key genes of the PI3K pathway, IGF1R, INSR, PDK1, and AKT1. These findings would provide great insight into further exploring the molecular regulation of miR-126-3p and PIK3R2 on the functions of GCs during the folliculogenesis in female mammals.
Histone modifications on major transcription factor target genes are one of the major regulatory mechanisms controlling adipogenesis. Plant homeodomain finger 2 (PHF2) is a Jumonji domain-containing protein and is known to demethylate the histone H3K9, a repressive gene marker. To better understand the function of PHF2 in adipocyte differentiation, we constructed stable PHF2 knock-down cells by using the mouse pre-adipocyte cell line 3T3-L1. When induced with adipogenic media, PHF2 knock-down cells showed reduced lipid accumulation compared to control cells. Differential expression using a cDNA microarray revealed significant reduction of metabolic pathway genes in the PHF2 knock-down cell line after differentiation. The reduced expression of major transcription factors and adipokines was confirmed with reverse transcription- quantitative polymerase chain reaction and Western blotting. We further performed co-immunoprecipitation analysis of PHF2 with four major adipogenic transcription factors, and we found that CCATT/enhancer binding protein (C/EBP)${\alpha}$ and C/EBP${\delta}$ physically interact with PHF2. In addition, PHF2 binding to target gene promoters was confirmed with a chromatin immunoprecipitation experiment. Finally, histone H3K9 methylation markers on the PHF2-binding sequences were increased in PHF2 knock-down cells after differentiation. Together, these results demonstrate that PHF2 histone demethylase controls adipogenic gene expression during differentiation.
Objectives: The purpose of this study was to investigate whether Lonicera japonica(LJ) could inhibit LPS-induced type I IFN production. Methods: To evaluate inhibitory effect of LJ on type I IFN, we examined type I IFN, IRF-1, 7 and IL-10 production on LPS-induced macrophages using real time RT-PCR. Next, we observed the interaction of type I IFN, IRF-1, 7 and IL-10 using IL-10 neutralizing antibody. Finally we examined the activation of STAT-1, 3 using western blot. Results: LJ inhibited Type I IFN expression of mRNA and increased IL-10 expression of mRNA. Also LJ inhibited the level of IRF-1, 7 mRNA and the nuclear translocation of IRF-3. Further more, LJ reduced the activation of STAT-1, 3 which are involved in continuous secretion of immune cytokines. Blockade of IL-10 action caused a significant reduction of type I IFN and IRF-1, 7 than LPS-induced LJ pretreatment. Conclusions: LJ inhibits LPS-induced production of type I IFN by IL-10. This study may provide a clinical basis for anti-inflammatory properties of LJ.
Diverse studies have shown that miR-155 is overexpressed in different tumor types. However, the precise molecular mechanism of the ectopic expression of miR-155 in breast cancer is still poorly understood. To further explore the role of miR-155 in breast tumorigenesis, we here assessed the influence of miR-155 antisense oligonucleotide (miR-155 ASO) on MDA-MB-157 cell viability and apoptosis in vitro. Furthermore, the effects of inhibitory effects of miR-155 on the growth of xenograft tumors in vivo were determined with performance of immunohistochemistry to detect expression of caspase-3, a pivotal apoptosis regulatory factor, in xenografts. Transfection efficiency detected by laser confocal microscope was higher than 80%. The level of miR-155 expression was significantly decreased (P<0.05) in the cells transfected with miR-155 ASO, compared with that in cells transfected with a negative control. After being transfected with miR-155 ASO, the viability of MDA-MB-157 cells was reduced greatly (P<0.05) and the number of apoptotic cells was increased significantly. Additionally, miR-155 ASO inhibited the growth of transplanted tumor in vivo and significantly increased the expression of caspase-3. Taken together, our study revealed that miR-155 ASO can induce cell apoptosis and inhibit cell proliferation in vitro. Moreover, miR-155 ASO could significantly repress tumor growth in vivo, presumably by inducing apoptosis via caspase-3 up-regulation. These findings provide experimental evidence for using miR-155 as a therapeutic target of breast carcinoma.
Background: The role of the interferon consensus sequence binding protein (ICSBP), a member of interferon regulatory factor family, in protecting against a vesicular stomatitis virus (VSV) infection has not been firmly elucidated. Thus, it was investigated utilizing the human promyelocytic leukemia HL-60 cells which do not express ICSBP. Methods: HL-60 cells were stably transfected with plasmid containing cDNA for either ICSBP or DNA binding domain (DBD) and tested for their VSV-susceptibilities. The susceptibility of each transfectant group to a VSV infection was determined by a plaque assay at 1 h, 24 h, and 48 h post-infection in the presence (500 IU/ml) or absence of interferon ${\alpha}$ ($IFN{\alpha}$). Results: In the absence of $IFN{\alpha}$, the three groups showed similar sensitivities to a VSV infection. However, when pre-treated with IFN, the viral titers in both the ICSBP and control clones steadily decreased over 48 h of incubation, indicating the existence of $IFN{\alpha}$-mediated protection against VSV infection. The $IFN{\alpha}$-treated ICSBP clones appeared to be more resistant to infection compared with the control clones, although the difference was not great. On the contrary, the viral titers in the $IFN{\alpha}$-treated DBD clones increased at 24 h then decreased by 48 h. Conclusion: The expression of truncated ICSBP (DBD) does not appear to underlie the impaired protection against a VSV infection in the DBD clones, since even the control clones lacking ICSBP were protected from a VSV infection. This suggests that ICSBP does not play a critical role in the $IFN{\alpha}$- mediated anti-VSV response of HL-60 cells, although it appears to confer some resistance to a VSV infection.
Background: Toll-like receptor 3 (TLR3) recognizes double-stranded RNA (dsRNA) and induces inflammation. In this study we attempted to ascertain if there are endogenous host molecules controlling the production of cytokines and chemokines. Two candidates, ribosomal protein L19 and L22, were analyzed to determine if they influence cytokine production followed by TLR3 activation. In this study we report that L19 acts upon production of IP-10 or IL-8 differently in glioblastoma cells. Methods: L19 or L22 was transfected into HEK293-TLR3, A549 or A172 cells. After treatment with several inhibitors of NF-${\kappa}B$, PI3K, p38 or ERK, production of IL-8 or IP-10 was measured by ELISA. siRNA was introduced to suppress expression of L19. After Vesicular stomatitis virus infection, viral multiplication was measured by western blot. Results: L19 increased ERK activation to produce IL-8. In A172 cells, in which TLR3 is expressed at endosomes, L19 inhibited interferon regulatory factor 3 (IRF3) activation and IP-10 production to facilitate viral multiplication, whereas L19 inhibited viral multiplication in A549 cells bearing TLR3 on their cell membrane. Conclusion: Our results suggest that L19 regulates TLR3 signaling, which is cell type specific and may be involved in pathogenesis of autoimmune diseases and chronic inflammatory diseases.
Gene expression in HIV-1 is regulated by the promoters in 5' long-terminal repeat (LTR) element, which contain multiple DNA regulatory elements that serve as binding sites for cellular transcription factors. YY1 could repress HIV-1 gene expression and latent infection. Here, however, we observed that virus production can be increased by YY1 over-expression and decreased under YY1 depleted condition by siRNA treatment. To identify functional domain(s) of YY1 activation, we constructed a number of YY1 truncated mutants. Our data show that full-length YY1 enhances the viral transcription both through U3 and U3RU5 promoters. Moreover, the C-terminal region (296-414 residues) of YY1 is responsible for the transcriptional upregulation, which could be enhanced further in the presence of the viral Tat protein. The central domain of YY1 (155-295 residues) does not affect LTR activity but has a negative effect on HIV-1 gene expression. Taken together, our study shows that YY1 could act as a transcriptional activator in HIV-1 replication, at least in the early stages of infection.
Bacterial infection and smoking are an important risk factors involved in the development and progression of periodontitis. However, the signaling mechanism underlying the host immune response is not fully understood in periodontal lesions. In this study, we determined the expression of janus kinase (JAK)/signal transducer and activator of transcription (STAT) on Porphyromonas gingivalis lipopolysaccharide (LPS)- and nicotine-induced cytotoxicity and the production of inflammatory mediators, using osteoblasts. The cells were cultured with 5 mM nicotine in the presence of $1{\mu}g/ml$ LPS. Cell viability was determined using MTT assay. The role of JAK on inflammatory mediator expression and production, and the regulatory mechanisms involved were assessed via enzyme-linked immunosorbent assay, reverse transcription-polymerase chain reaction, and Western blot analysis. LPS- and nicotine synergistically induced the production of cyclooxgenase-2 (COX-2) and prostaglandin $E_2$ ($PGE_2$) and increased the protein expression of JAK/STAT. Treatment with an JAK inhibitor blocked the production of COX-2 and $PGE_2$ as well as the expression of pro-inflammatory cytokines, such as tumor necrosis factor-${\alpha}$, interleukin-$1{\beta}$ ($IL-1{\beta}$), and IL-6 in LPS- and nicotine-stimulated osteoblasts. These results suggest that JAK/STAT is closely related to the LPS- and nicotine-induced inflammatory effects and is likely to regulate the immune response in periodontal disease associated with dental plaque and smoking.
Jo, Hyundong;Jang, Ha Young;Youn, Gi Soo;Kim, Donggyu;Lee, Chae Yeon;Jang, Jae Hee;Choi, Soo Young;Jun, Jong-Gab;Park, Jinseu
BMB Reports
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제51권8호
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pp.394-399
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2018
Human immunodeficiency virus-1 (HIV-1) transactivator of transcription (Tat) is an important viral factor in neuro-inflammation. Hindsiipropane B, present in Celastrus hindsii, possesses various biological mechanisms including anti-inflammatory activity. In this report, we explored the regulatory activity of hindsiipropane B on HIV-1 Tat-mediated chemokine production and its mode of action in astrocytes. Hindsiipropane B significantly alleviated HIV-1 Tat-mediated production of inflammatory chemokines, CCL2, CXCL8, and CXCL10. Hindsiipropane B inhibited expression of HDAC6, which is important regulator in HIV-1 Tat-mediated chemokine production. Hindsiipropane B diminished HIV-1 Tat-mediated reactive oxygen species (ROS) generation and NADPH oxidase activation/expression. Furthermore, hindsiipropane B inhibited HIV-1 Tat-mediated signaling cascades including MAPK, $NF-{\kappa}B$, and AP-1. These data suggest that hindsiipropane B exerts its inhibitory effects on HIV-1 Tat-mediated chemokine production via down-regulating the HDAC6-NADPH oxidaseMAPK-$NF-{\kappa}B$/AP-1 signaling axis, and could serve as a therapeutic lead compound against HIV-1 Tat-associated neuro-inflammation.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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