Rice blast, caused by the fungal pathogen Magnaporthe oryzae, is one of the most destructive diseases of rice worldwide. The rice - M. oryzae pathosystem has become a model in the study of plant - fungal interactions due to its economic importance and accumulating knowledge. During the evolutionary arms race with M. oryzae, rice plants evolved a repertoire of Resistance (R) genes to protect themselves from diseases in a gene-for-gene fashion. M. oryzae secretes a battery of small effector proteins to manipulate host functions for its successful infection, and some of them are recognized by host R proteins as avirulence effectors (AVR), which turns on strong immunity. Therefore, the analysis of interactions between AVRs and their cognate R proteins provide crucial insights into the molecular basis of plant - fungal interactions. Rice blast resistance genes Pik, Pia, Pii comprise pairs of protein-coding ORFs, Pik-1 and Pik-2, RGA4 and RGA5, Pii-1 and Pii-2, respectively. In all three cases, the paired genes are tightly linked and oriented to the opposite directions. In the AVR-Pik/Pik interaction, it has been unraveled that AVR-Pik binds to the N-terminal coiled-coil domain of Pik-1. RGA4 and RGA5 are necessary and sufficient to mediate Pia resistance and recognize the M. oryzae effectors AVR-Pia and AVR1-CO39. A domain at the C-terminus of RGA5 characterized by a heavy metal associated domain was identified as the AVR-binding domain of RGA5. Similarly, physical interactions among Pii-1, Pii-2 and AVR-Pii are being analyzed.
Tests were made to find new non-mercurious seed disinfectants that were best for rice seeds. For these experiments four seed samples carr)?ing natural infection of Pyricularia oryzae, Helminthosporium oryzae, and Fusarium moniliforme were used and the following fungicides were used; Zinc Omadine, Sodium Omadine, Panoctine, Tecto-F, Benlate-T, Homai, Sisthane, $P_{242}$, Busan 30, Tecto-Wp and Terracoat Zn. Blotter method and water agar plate method used in the laboratory and growing-on test used in greenhouse. Results have shown that Sisthane, $P_{242}$ and Sodium Omadine have equal or superior effect to organic mercury compound against P. oryzae, H. oryzae, and F. moniliforme. Benlate T and Homai are effective against blast and Bakanae disease, but are inferior to organic mercury compound against brown spot disease. Busan 30 and Panoctine are effective against blast and brown spot disease, but have moderately inferior effects against F. monilifome. It is considered that the recommendable testing methods of seed treatment were blotter method for P. oryzae and water agar plate method for H, oryzae and F. moniliforme according to the experimental results obtained. No phytotoxicity against seed germination and seedling growth were observed when treated with disinfectants before germination of seeds.
Lee, So Eui;Gupta, Ravi;Jayaramaiah, Ramesha H.;Lee, Seo Hyun;Wang, Yiming;Park, Sang-Ryeol;Kim, Sun Tae
The Plant Pathology Journal
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v.33
no.5
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pp.458-466
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2017
Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo), the causative agent of bacterial blight, is a major threat to rice productivity. Here, we performed RNA-Seq based transcriptomic analysis of Xoo transcripts isolated under in planta growth (on both susceptible and resistant hosts) and in vitro culture conditions. Our in planta extraction method resulted in successful enrichment of Xoo cells and provided RNA samples of high quality. A total of 4,619 differentially expressed genes were identified between in planta and in vitro growth conditions. The majority of the differentially expressed genes identified under in planta growth conditions were related to the nutrient transport, protease activity, stress tolerance, and pathogenicity. Among them, over 1,300 differentially expressed genes were determined to be secretory, including 184 putative type III effectors that may be involved in Xoo pathogenicity. Expression pattern of some of these identified genes were further validated by semi-quantitative RT-PCR. Taken together, these results provide a transcriptome overview of Xoo under in planta and in vitro growth conditions with a focus on its pathogenic processes, deepening our understanding of the behavior and pathogenicity of Xoo.
The phytopathogenic fungus Magnaporthe oryzae is a major limiting factor in rice production. To understand the genetic basis of M. oryzae pathogenic development, we previously analyzed a library of T-DNA insertional mutants of M. oryzae, and identified ATMT0879A1 as one of the pathogenicity-defective mutants. Molecular analyses and database searches revealed that a single TDNA insertion in ATMT0879A1 resulted in functional interference with an annotated gene, MGG00056, which encodes a short-chain dehydrogenase/reductase (SDR). The mutant and annotated gene were designated as $MoSDR1^{T-DNA}$ and MoSDR1, respectively. Like other SDR family members, MoSDR1 possesses both a cofactor-binding motif and a catalytic site. The expression pattern of MoSDR1 suggests that the gene is associated with pathogenicity and plays an important role in M. oryzae development. To understand the roles of MoSDR1, the deletion mutant ${\Delta}Mosdr1$ for the gene was obtained via homology-dependent gene replacement. As expected, ${\Delta}Mosdr1$ was nonpathogenic; moreover, the mutant displayed pleiotropic defects in conidiation, conidial germination, appressorium formation, penetration, and growth inside host tissues. These results suggest that MoSDR1 functions as a key metabolic enzyme in the regulation of development and pathogenicity in M. oryzae.
Previously, we identified the 20S proteasome ${\alpha}$-subunit of Magnaporthe oryzae (M. oryzae) induced during appressorium formation, and detected an increase in multiple protein ubiquitination during the early appressorium formation process (Kim et al., 2004). In this study, we further attempted to determine whether the proteasome is involved in the appressorium formation of M. oryzae both in vitro and in planta, using proteasome inhibitors. A significant increase in 20S proteasome during fungal germination and appressorium formation was observed using Western blot analysis with 20S proteasome antibody, demonstrating that proteasome-mediated protein degradation was involved in appressorium formation. Pharmacological analysis using proteasome inhibitors, MG-132, proteasome inhibitor I (PI) and proteasome inhibitor II (PII) revealed that germination and appressorium formation were delayed for 4 to 6 h on rice leaf wax-coated plates. Similarly, the treatment of proteasome inhibitors with fungal conidia on the rice leaf surface delayed appressorium formation and host infection processes as well. Additionally, fungal pathogenicity was strongly reduced at 4 days' postfungal infection. These data indicated that the fungal 20S proteasome might be involved in the pathogenicity of M. oryzae by the suppression of germination and appressorium formation.
1. L-Tyrosine-${\alpha}$-ketoglutaric transaminase and p-hydroxyphenylpyruvic acid oxidase are distributed in Aspergillus oryzae. 2. L-Tyrosine oxidation in extracts of acetone powder, cell free extract and culture liquid of Aspergillus oryzae cultivated in the shaking culture are considerably accelerated by the addition of ${\alpha}$-ketoglutaric acid and then formation of glutamic acid was identified by chromatography method. 3. The roles of ${\alpha}$-ketoglutaric acid and pyridoxal phosphate have been shown to be an amino group acceptor in a transamination reaction. 4. Enzyme systems of an extracts of acetone powder and cell free extract also rapidly oxidized L-tyrosine and p-hydroxyphenlpyruvic acid to homogentisic acid. 5. The optimum pH for L-tyrosine-${\alpha}$-ketoglutaric acid transaminase was pH values of 6.0 and 6.5, and that for p-hydroxyphenylpyruvic acid oxidase was at pH values of 7.5.
Aspergillus oryzae is generally recognized as safe, but it is closely related to A. flavus in morphology and genetic characteristics. In this study, we tested the aflatoxigenicity and genetic analysis of nine commercial A. oryzae strains that were used in Korean soybean fermented products. Cultural and HPLC analyses showed that none of the commercial strains produced detectable amount of aflatoxins. According to the molecular analysis of 17 genes in the aflatoxin (AF) biosynthetic pathway, the commercial strains could be classified into three groups. The group I strains contained all the 17 AF biosynthetic genes tested in this study; the group II strains deleted nine AF biosynthetic genes and possessed eight genes, including aflG, aflI, aflK, aflL, aflM, aflO, aflP, and aflQ; the group III strains only had six AF biosynthetic genes, including aflG, aflI, aflK, aflO, aflP, and aflQ. With the reverse transcription polymerase chain reaction, the group I A. oryzae strains showed no expression of aflG, aflQ and/or aflM genes, which resulted in the lack of AF-producing ability. Group II and group III strains could not produce AF owing to the deletion of more than half of the AF biosynthetic genes. In addition, the sequence data of polyketide synthase A (pksA) of group I strains of A. oryzae showed that there were three point mutations (two silent mutations and one missense mutation) compared with aflatoxigenic A. flavus used as the positive control in this study.
A gene encoding a putative alanine racemase in Xanthomonas. oryzae pv. oryzae was cloned, expressed and characterized. Expression of the cloned gene was performed in Escherichia coli BL21(DE3)pLys using a pET-21(a) vector harbouring $6{\times}histidine$ tag. Purification of the recombinant alanine racemase by affinity chromatography resulted in major one band by sodium dodecyl sulfate polyacryl amide gel electrophoresis analysis, showing about 45 kDa of molecular weight. The alanine racemase gene, cloned in this experiment, appears to be constitutively expressed in X. oryzae, as analyzed by reverse transcriptase polymerase chain reaction. The enzyme was the most active toward L-alanine and secondly D-alanine, showing a racemic reaction, thus the enzyme is considered as an alanine racemase. The enzyme was considerably activated by addition of pyridoxal-5-phosphate (PLP), showing that 75% increase in activity was observed at 0.3 mM, compared with control. D-Cysteine as well as L-cysteine significantly inhibited the enzyme activity. The inhibitions by cysteines were more prominent in the absence of PLP, showing 9 and 5% of control activity at 2 mM of addition, respectively. The enzyme was the most active at pH 8.0 and more stable at alkaline pHs than acidic pH condition.
The studies on the color improvement of the Doenjang (two types of fermented soybean paste : soybean Doenjang and modified Doenjang) using various Aspergillus oryzae strains (6 strains : A, B, C, D, E, F) were conducted with the series of experiments of enzymatic activities (pretense, $\alpha$-and $\beta$-amylase), browning color formation (Lovibond color), major chemical components (amino nitrogen, reducing sugar and others) and sensory evaluation (color, taste and odor). Aspergillus oryzae 2157 (C strain) had a high potential for the color improvement of Doenjang products and was identified as non-browning strain during Doenjang fermentation and storage period. And also this strain was appeared to be in good enzyme activities and flavor characteristics.
Li, Shu Bin;Xu, Shi Ru;Zhang, Rui Ning;Liu, Yuan;Zhou, Ren Chao
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.26
no.4
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pp.748-756
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2016
In the present study, a lipopeptide (named AXLP14) antagonistic to Xanthomonas oryzae pv. oryzae (Xoo) was obtained from the culture supernatant of Bacillus amyloliquefaciens B014. Matrix-assisted laser desorption/ionization time-of-flight mass spectrometry analysis demonstrated that AXLP14 consisted of surfactin homologs. The minimum inhibition concentration and minimum bactericidal concentration of AXLP14 against Xoo were determined to be 1.25 and 2.50 mg/ml, respectively. At a concentration of 0.613 mg/ml, AXLP14 strongly inhibited the formation of Xoo biofilm. AXLP14 also inhibited the motility of Xoo in a concentration-dependent manner. Applying AXLP14 to rice seedlings significantly reduced the incidence and severity of disease caused by Xoo. In Xoo-infected rice seedlings, AXLP14 strongly and continuously up-regulated the expression of both OsNPR1 and OsWRKY45. In addition, AXLP14 effectively inhibited the Xoo-induced up-regulation of the expression of the abscisic acid biosynthesis gene OsNECD3 and the abscisic acid signalingresponsive gene OsLip9, indicating that AXLP14 may protect rice against Xoo-induced disease by enhancing salicylic acid defense and interfering with the abscisic acid response to virulence.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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