Hybrid Poplar(Poplar nigra var. betulifollia X Poplar trichorcarpa)의 잎절편을 목본실물 배양배지에서 배양하면서 기관분화를 위한 배양조건과 분화과정 중 부정아의 분화와 auxib(NAA)과 cytokinin(BA)과의 상호관계에 대해서 연구하여 다음고 같은 결과를 얻었다. 1. Poplar잎절편으로부터 부정아의 분화는 식물호르몬의 조성이 NAA $0.01mg/\ell$, BA$0.2mg/\ell$일 때 배양후 13일정도에서 기부 절단면으로부터 부정아가 효과적으로 유도되었다. 2. RNA와 단백질의 함량은 단부가 기부보다 높았으며 기부가 4일에서 10일까지의 상대적이 수치에서는 단부보다 높았다. 3. RNA와 단백질의 함량은 식물호르몬의 조성이 NAA,$0.01mg/\ell$;BA,$0.2mg/\ell$일 때 배양후 7일정도에서 가장 높았다. 4. 표준 WPM에 조직 절편을 배양하였을 때 기부에서 배양시기가 경과함에 따라 특이한 단백질이 형성 되었다.
Eurycoma longifolia is an important rare medicinal plant that contains valuable bioactive compounds. In the present study, cell suspension culture of E. longifolia was established for the production of biomass and phenolic compounds. Various medium parameters, such as concentration of auxin, salt strength of the medium, and sucrose and nitrogen concentrations, were optimized for the production of biomass at the flask-scale level. Full strength Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with $3.0mg{\cdot}L^{-1}$ naphthaleneacetic acid (NAA), 3% (w/v) sucrose, 0:60 $NH{_4}^+:NO{_3}^-$ was found suitable for biomass accumulation. Based on the optimized flask-scale parameters, cell suspension cultures were established in balloon-type bubble bioreactors, and bioprocess parameters such as inoculum density and aeration rate were optimized. Inoculum density of $50g{\cdot}L^{-1}$ and increasing aeration rate from 0.05 to 0.3 vvm, with increases every 7 days, were suitable for the accumulation of both biomass and phenolic compounds. With the optimized conditions, $14.70g{\cdot}L^{-1}$ dry biomass, $10.33mg{\cdot}g^{-1}$ DW of phenolics and $3.89mg{\cdot}g^{-1}$ DW of flavonoids could be achieved. Phenolics isolated from the cell biomass showed optimal free radical scavenging activity.
Min Sung-Ran;Kim Young-Hoe;Jeong Won-Joong;Han Su-Kyung;In Don-Su;Liu Jang R.
Journal of Plant Biotechnology
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제5권4호
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pp.221-224
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2003
Leaf explants of Ixeris sonchifolia produced adventitious shoots at a frequency of 100% when cultured on MS medium supplemented with combinations of various concentrations of 6-benzyladenine (BA) (0.44, 4.44, or 8.87 ${\mu}M$) and 0.54 ${\mu}M$ NAA, or MS medium supplemented with 22.19 ${\mu}M$ BA and 2.69 ${\mu}M\;\alpha$-naphthaleneacetic acid (NAA) after four weeks of culture. Each explants (approximately $3{\times}6mm$) produced greater than 70 shoots at a combination of 0.44 ${\mu}M$ BA and 0.54 ${\mu}M$ NAA. Leaf explants produced shoots at a frequency of greater than 80% even at as low as 0.13 ${\mu}M$ BA as the sole growth regulator. Upon transfer to one-third strength MS with 0.54 ${\mu}M$ NAA, excised adventitious shoots were rooted at a frequency of 100%. Regenerated plantlets were transplanted to potting soil and grown to maturity in a greenhouse. The competence of I. sonchifolia for plant regeneration via organogenesis appears to be greater than the competence of tobacco, currently the best model plant for organogenesis.
Bhuiyan, Mohammed Shafi Ullah;Min, Sung-Ran;Choi, Kwan-Sam;Lim, Yong-Pyo;Liu, Jang-Ryol
Journal of Plant Biotechnology
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제36권2호
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pp.137-143
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2009
An efficient system for high frequency plant regeneration was established through investigating various factors such as plant growth regulator combinations, explant types and ages, and addition of $AgNO_3$ influenced on shoot regeneration in Brassica juncea L. cv. BARI sarisha-10. Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 0.1 mg/L NAA (1-naphthaleneacetic acid) and 1 mg/L BA (6-benzyladenine) showed the maximum shoot regeneration frequency (56.67%) among the different combinations of NAA and BA. Explant type, explant age, and addition of $AgNO_3$ also significantly affected shoot regeneration. Of the four type of explants (cotyledon, hypocotyl, root, and leaf explants)- cotyledon explants produced the highest shoot regeneration frequency and hypocotyls explants produced the highest number of shoots per explant, whereas root explants did not produce any shoot. The cotyledonary explants from Four-day-old seedlings showed the maximum shoot regeneration frequency and number of shoots per explant. Shoot regeneration frequency increased significantly by adding $AgNO_3$ to the medium. Two mg/L $AgNO_3$ appeared to be the best for shoot regeneration with the highest shoot regeneration frequency (86.67%) and number of shoots per explant (7.5 shoots). Considerable variation in shoot regeneration from cotyledonay explants was observed within the B. juncea L. genotypes. The shoot regeneration frequency ranged from 47.78% for cv. Shambol to 91.11% for cv. Rai-5. In terms of the number of shoots produced per explant, B. juncea L. cv. Daulot showed the maximum efficiency. MS medium supplemented with 0.1 mg/L NAA showed the highest frequency of rooting. The regenerated plantlets were transferred to pot soil and grown to maturity in the greenhouse. All plants were fertile and morphologically identical with the source plants.
We describe culture conditions for a high-efficiency in vitro regeneration system of Papaver nudicaule through somatic embryogenesis and secondary somatic embryogenesis. The embryogenic callus induction rate was highest when petiole explants were cultured on Murashige and Skoog (MS) medium containing 1.0 mg $1^{-1}$${\alpha}$-naphthaleneacetic acid (NAA) and 0.1 mg $1^{-1}$ 6-benzyladenine (BA) (36.7%). When transferred to plant growth regulator (PGR)-free medium, 430 somatic embryos formed asynchronously from 90 mg of embryogenic callus in each 100-ml flask. Early-stage somatic embryos were transferred to MS medium containing 1.0 mg $1^{-1}$ BA and 1.0 mg $1^{-1}$ NAA to germinate at high frequency (97.6%). One-third-strength MS medium with 1.0% sucrose and 1.0 mg $1^{-1}$$GA_3$ had the highest frequency of plantlet conversion from somatic embryos (91.2%). Over 90% of regenerated plantlets were successfully acclimated in the greenhouse. Secondary somatic embryos were frequently induced directly when the excised hypocotyls of the primary somatic embryos were cultured on MS medium without PGRs. Sucrose concentration significantly affected the induction of secondary embryos. The highest induction rate (89.5) and number of secondary somatic embryos per explant (9.3) were obtained by 1% sucrose. Most secondary embryos (87.2-94.3%) developed into the cotyledonary stage on induction medium. All cotyledonary secondary embryos were converted into plantlets both in liquid and on semisolid 1/3-strength MS medium with 1.0% sucrose.
미류나무의 잎절편들을 fructose를 첨가한 WPM에서 배양하였으나, TDZ와 BA 그리고 NAA의 여러 농도와의 조합에서 다른 형태의 기관들(뿌리나 줄기)이 관찰되었으며, 체세포 배와 유사한 기관들의 형태도 관찰되었다. 3계통 미류나무들의 잎절편들을 사이토카이닌(BA 또는 TDZ)와 오옥신(NAA)를 첨가한 WPM 배지에서 접종시켜, 재분화를 유도한 결과, BA (05 mg/L)나 TDZ (0.01 mg/L)와 NAA (0.05 mg/L 또는 0.1 mg/L)의 조합에서 재분화 율은 각각 63%에서 100%이고, 재분화 개체 수는 잎절편당 평균 2.5부터 20개, 그리고 부정줄기 형성체군(organogenic site) 들은 평균 1.8에서 4.5개로 높게 나타났다. 또한 세 계통의 미류나무들은 각기 유사한 처리 조합에서 높은 재분화율을 나타내었다.
In the present study, a simple one medium formulation protocol for callus culture, somatic embryogenesis and in vitro production of ${\beta}-carboline$ alkaloids and diosgenin in Tribulus terrestris L. was developed. Extensive callus induction and proliferation was obtained in leaf explant on Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with $5.0{\mu}M$ 6 benzyl adenine (BA) and $2.5{\mu}M$${\alpha}-naphthaleneacetic$ acid (NAA). The embryogenic callus was maintained on subculture to fresh parental medium at 4-week intervals over a period of 28 months. The frequency of embryo formation was at a maximum ($18.1{\pm}0.9$ per g of callus) on MS medium containing $5.0{\mu}M$ BA and $2.5{\mu}M$ NAA together with $75mg\;1^{-1}$ casein hydrolysate. Globular embryo developed into torpedo stage embryo under the influence of starvation. The accumulation of ${\beta}-carboline$ alkaloids (harmaline and harmine) and steroidal saponin (diosgenin) in non-embryogenic and embryogenic callus culture derived from leaf explant was compared with root, leaf, stem, and fruit of the mother plant. The embryogenic callus accumulated equivalent amounts of harmaline ($66.4{\pm}0.5{\mu}g/g$ dry weight), harmine ($82.7{\pm}0.6{\mu}g/g$ dry weight), and diosgenin ($170.7{\pm}1.0{\mu}g/g$ dry weight) to that of the fruit of T. terrestris. The embryogenic callus culture of this species might offer a potential source for production of important pharmaceuticals.
Martin, Kottackal Poulose;Zhang, Chun-Lai;Hembrom, Manoj Emanuel;Slater, Adrian;Madassery, Joseph
Plant Biotechnology Reports
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제2권2호
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pp.163-169
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2008
Roots of Ophiorrhiza prostrata D. Don serve as a rich source of camptothecin (CPT), an anticancer drug. Because of the large-scale collection of its roots, the plant has become a threatened species. The present study accomplishes the induction of adventitious roots as a means for the production of CPT as well as for the large-scale propagation of this anticancer drug plant using leaf and internode explants. The biomass yield and CPT content of adventitious roots induced from different explants were compared to roots developed on ex vitro rooted stem cuttings. Adventitious roots were produced on half-strength Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with $10.74{\mu}M$${\alpha}-naphthaleneacetic$ acid and $2.32{\mu}M$ kinetin at mean fresh weights of 0.753, 0.739 and 0.748 g roots from leaf, internode and shoot, respectively. CPT yield from in vitro derived roots after 50, 80 and 120 days of incubation (0.028, 0.06 and 0.1% dry weight, respectively) was not significantly different from those harvested at the same age from ex vitro rooted (0.03, 0.06 and 0.13%, respectively) stem cuttings. CPT from subcultured roots derived from solid (0.08%) medium was lower than from suspension culture medium (0.12%). Subsequent cultures of the adventitious roots showed a stable production of CPT (0.16%). The yield of CPT from 360-day-old plant-derived roots was 0.19%. Elicitation using methyl jasmonate and acetyl salicylic acid exhibited no enhancement in CPT yield. In vitro propagation through direct shoot regeneration was achieved from the adventitious roots upon transfer to MS medium with $8.87{\mu}M$$N^6-benzyladenine$ (BA) and $2.46{\mu}M$ indole-3-butyric acid (IBA) with a mean of 21.2 shoots per culture in 50 days. The shoots upon subculture on medium having the same level of BA and IBA underwent rapid proliferation. The shoots transferred to field conditions after in vitro rooting exhibited 95% survival. Adventitious root induction, from leaf and internode explants, enables the feasible production of CPT as well as the large-scale rapid propagation of this species which can safeguard it from extinction.
This experiments were carried out to find out the effects of different explant materials, kinds and concentration of plant growth regulators, and total nitrogen and sucrose contents on the in vitro regeneration of Abeliophyllum distichum Nakai. The effects of growth regulators on regeneration from 3 explant sources (leaf, internode and node) were more or less same. Leaf explants produced only callus with 2ip (Isopentenyladenine) and NAA (Naphthaleneacetic acid) treatment and other regulators had no effects. Test with internode explants yielded about same results but callus was obtained with 2,4-D (2,4-Dichlorophenoxyacetic acid). Node explants resulted in shoot regeneration by all regulator treatment except NAA and 2,4-D, but control also showed similar results. Callus formation from internode and node explants was vigorous by 2ip, zeatin, and 2,4-D treatments and high NAA concentration resulted in higher callus formation. In this experiment, various mixed treatment of growth regulators were also employed, using node as explant material. Shoot regeneration was obtained with BA (Benzyl adenine) + NAA treatments but the results were comparable with control. Generally shoot and root regeneration was poor with all combined treatment except 2ip + NAA and 2,4-D + NAA. However, callus was formed readily with all treatments. In this experiment, combined treatments of regulators were applied on the callus derived from singular regulator treatment. The results showed no shoot and root regeneration with any combination of 2,4-D, IAA (Indoleacetic acid) and NAA, but soft milky white callus was formed in all the treatments. No shoot and root regeneration was observed with any combination of 2iP, NAA and IAA, but somewhat hard, light green callus was formed in all the treatments. Callus formation decreased with high kinetin concentration in case of kinetin + NAA treatment. The experiments with total nitrogen content of media showed that low concentrations of 15 and 30mM were effective for the shoot and root regeneration. Sucrose experiment demonstrated shoot regeneration with 1${\sim}$4% concentration, and root and callus formation with 2${\sim}$4%. No root and callus formation was observed with 0 and 1% sucrose.
본 연구의 목적은 배 '원황'의 효율적인 재분화 조건을 규명하기 위해 NAA 0.01, 0.05, 0.1, 0.5 mg/L과 BA 3, 5, 10 mg/L을 조합하여 처리한 결과, NAA 0.05 mg/L, BA 3 mg/L의 조성에 plant agar 8 g/L와 sucrose 30 g/L의 MS 배지에서 재분화율이 13.3%로 나왔다. 기존의 '신고'와 '황금배'의 발근에 사용하였던 배지 조성과 '배연3호'의 발근 배지조성에서는 '원황' 품종의 발근이 전혀 이뤄지지 않았다. 식물생장조절물질이 '원황'의 발근에 미치는 영향을 알아보기 위하여 NAA 0.5, 1.0 mg/L, IBA 0.3, 0.5, 1.0 mg/L을 조합하여 처리한 결과 IBA 1.0 mg/L와 NAA 1.0 mg/L의 조합에 1/4 LS vitamin이 포함된 배지에서 발근률이 24%로 나타났으며 효율적인 '원황'의 발근을 위해서는 탄소원으로 glucose 7.5 g/L가 사용되었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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