To investigate the effect of boning time and storage temperature on meat quality of duck breast, a total of thirty duck breasts were designed in frozen-thawed, chilled-storage, and cold-boning samples. No significant differences were found among pH of all samples. However, cold-boning samples showed significantly (p<0.05) lower cooking loss than the other samples. Frozen-thawed samples showed significantly (p<0.05) higher lightness ($L^*$) and yellowness($b^*$), shorter sarcomere length and higher shear force values compared to the other samples. The result speculated that muscle shortening was affected by lower temperature (frozen) hence tenderness was decreased. Sarcoplasmic protein solubility showed no significant differences among samples, whereas cold-boning samples showed significantly (p<0.05) higher myofibrillar and total protein solubility than the other samples. The result of sodium dodecyl sulphate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) patterns, chilled-storage and cold-boning samples showed degradation at high molecular protein (nebulin), which was not observed in frozen-thawed samples. Therefore, this data suggested that muscle shortening, tenderness and protein degradation are not affected by boning time rather affected by rapid change of temperature in frozen-thawed samples.
Youn, Kyoung Won;Choi, Kyoung Young;Lee, Sun Ah;Min, Hyuk Ki;Kim, Jaehyun
The Korean Journal of Blood Transfusion
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v.29
no.3
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pp.291-300
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2018
Background: The use of a functionally closed system for the glycerolization and deglycerolization of red blood cells (RBCs) allows for prolonged post-thaw storage for more than 24 hours. The aim of this study was to assess glycerolization and deglycerolization processing for RBCs using a high glycerol method in the automated, closed system provided by Haemonetics ACP 215. Methods: Thirty-five packed RBCs were glycerolized using the ACP 215 to a final concentration of 40% (wt/vol). The units were either frozen as such (n=30) or excess glycerol was removed (n=5) before freezing. After storage at $-80^{\circ}C$, the units were thawed, deglycerolized and resuspended in SAG-M. The frozen-thawed RBCs were stored at $4^{\circ}C$, and analyzed for their stability and in vitro quality. Results: No prefreeze excess glycerol removal units showed significantly less potassium leakage during post-thaw storage compared to the prefreeze excess glycerol removal units. All measurements of the stability and in vitro quality of thawed RBCs prepared from frozen RBCs without the prefreeze removal of excess glycerol during post-thaw storage at $4^{\circ}C$ for 7 days were acceptable to the American Blood Bank Association's standards and European standards. Conclusion: RBCs frozen without prefreeze removal of excess glycerol and the ACP 215 simplifies cryopreservation procedure and increases the stability of frozen-thawed RBCs. This increases the practical applicability of cryopreserved RBCs in blood transfusion practice.
Journal of the Korean Society of Fisheries and Ocean Technology
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v.52
no.1
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pp.36-41
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2016
Changes in target strength (TS) values of sandfish when sandfish was alive and dead were investigated using ex-situ at 120 kHz. TS values measured by tilt angles with -50~+50 degrees showed ranges from -71.0 to -53.3 dB for live sandfish, -63.1~-46.3 dB for thawed sandfish, and -70.0~-50.4 dB after 24 hours from thawed, respectively. It was shown that while TS values were similar between the case of live and the case of after 24 hours from thawed, mean TS values were higher by approximately 5 dB in the case of immediate thawed sandfish. It was also seen that TS values were similar between the case of thawed sandfish and the case of after 21 hours from live. The results showed that TS values of live sandfish were different from those of frozen sandfish. It implies that when estimating TS of frozen fish, the influx of bubbles and changes of body should be considered.
This study explored the effects of water or brine (2% NaCl, w/v) immersion thawing combined with ultrasound treatment (40 kHz, 150 W) on the quality characteristics of pork. Ultrasound treatment of pork was conducted in two cold media (at $4^{\circ}C$), water and 2% (w/v) brine, respectively. Because the ultrasound treatment caused temperature increase in the media from $4^{\circ}C$ to $16^{\circ}C$, the qualities of pork thawed by ultrasound were compared with those thawed by immersion either in water or brine where the temperature was being maintained at either $4^{\circ}C$ (low temperature control) or $17^{\circ}C$ (high temperature control). The ultrasound treatment resulted in rapid thawing of pork where the thawing rate was similar to those thawed in the $17^{\circ}C$ media. For quality characteristics, ultrasound-treated pork in brine had an advantage of less cooking losses when comparing to the control. In particular, ultrasound treatment in brine exhibited the lowest shear force (or highest tenderness) among the freezing/thawing treatments. Although the ultrasound processing in brine caused discoloration of the pork, this thawing technique had potential to be applied as a commercial thawing technology for frozen foods.
The efficient cryopreservation of embryos requires optimal times of dehydration and rehydration This study was carried out to investigate the effect of various times of dehydration and rehydration The effects were evaluated through testing morphological normality and developmental ability of 1 cell mouse embryos which were ultrarapidly frozen and thawed. The 1 cell embryos were dehydrated for 1.5, 3, 5, and 10 minutes using mPBS-BSA containing 3.SM DMSO and 0.25M sucrose on cooling chamber or on ice. After ultrarapidly frozen and thawed, they were rehydrated for 0, 0.5 and 5 minutes with mPBS-BSA containing 0.25M sucrose at room temperature. The results obtained were as follows: The embryos that were rehydrated for 0.5 minutes showed higher normality than the embryos for 0 and 5 minutes did. The embryos that were dehydrated for 10 minutes showed higher normality than the embryos for 1.5, 3, and 5 minutes did. The developmental ability of normal thawed-embryos was high in 10 minute dehydration treatment compared to other treatments. However, it was not affected by cooling methods (on ice and on cooling chamber) for embryo dehydration.
This study was to examine whether the in vitro friability, motility and intact acrosome of frozen-thawed bovine and human sperm can be improved by adding Pentoxifylline (PF) or Fertilization Promoting Peptide (FPP). Human semen was frozen ultra-rapidly using Test yolk-buffer (TYB) freezing medium. Additive (PF, FPP) effects in frozen-thawed bovine and human sperm were analyzed by microscopic count for sperm motility and coomassie brilliant blue staining method f3r sperm acrosome intact. The in vitro motility of frozen-thawed bovine sperm with 5 mM PF treatment group (50.0%) was significantly higher than that of control (34.0%) (P<0.05). In the frozen-thawed bovine sperm was examined, the intact acrosome rate of 50 nM FPP treatment (49.0%) was significantly higher than those of control (30.0%) and 25 nM FPP (38.0%) treatment groups (P<0.01). In human semen, when in vitro motility of sperm with PF addition prior to freezing was examined, the result of 5 mM treatment group (51.0%) was significantly higher than those of control and 2.5 mM treatment group (39.0, 40.0%) (P<0.01). In addition, 50 nM (75.5%) FPP adding in all treatment procedures for human semen freezing (before freezing, freezing and after thawing) was significant effect on maintenance of the sperm intact acrosome percentage (control: 45.0; 25 nM: 53.0; 100 nM: 68.0%) (P<0.01). Also, the intact acrosome rate of human sperm with FPP (65.0%) was significantly higher than that with PF (43.0%) (P<0.05), although sperm motility was slightly higher in PF treatment group. These results suggest that improved sperm motility and intact acrosome of frozen thawed bovine and human sperm can be obtained by addition of PF or FPP, and that the enhanced in vitro viability, motility and intact acrosome can be obtained by addition of FPP in all semen freezing procedures.
Kim, Sang-Woo;Lee, Jae-Ik;Kim, Mi-Kyung;Lee, Young-Ah;Lee, Kyu-Sup;Yoon, Man-Soo
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.27
no.2
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pp.191-200
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2000
Objective: This study was carried out to compare the effects of the stepwise exposure treatments on the morphological normality, fertilization and blastocyst formation rate of the frozen-thawed mouse mature oocytes by vitrification or ultra-rapid freezing and to use as a fundamental data for the cryopreservation of human oocytes. Materials and Methods: The morphological normality and fertilization rates of the vitrified and ultra-rapid frozen mouse mature oocytes after three-stepwise exposure treatments (1step, 3step and 5step) were observed. After choosing the 3step exposure treatment groups, we observed the morphological normality and fertilization, blastocyst formation rate of the vitrified and ultra-rapid frozen mouse mature oocytes. Results: The morphological normality and fertilization rates of the vitrified mouse mature oocytes after three-stepwise exposure treatments (1step, 3step and 5step) were 75%, 85%, 88% and 58%, 61 %, 54% respectively. There were no significant differences among treatments(p>0.05). The morphological normality and fertilization rate of the control was 92% and 65%. There were no significant differences in fertilization rate among control and treatments (p>0.05). The morphological normality and fertilization rates of the ultra-rapid frozen mouse mature oocytes after three-stepwise exposure treatments (1step, 3step and 5step) were 83%, 83%, 84% and 75%, 63%, 56% respectively. There were no significant differences among treatments (p>0.05). The morphological normality and fertilization rate of the control was 95% and 67%. There were no significant differences among control and treatments (p>0.05). The morphological normality and fertilization rate of the vitrified or ultra-rapid frozen mouse mature oocytes after 3step exposure treatment were 69% and 75%, respectively. The blastocyst formation rate was 60% and 57%. The results did not differ significantly between vitrification and ultra-rapid freezing (p>0.05). Conclusion: As known in the above results, there were no significant differences in the fertilization and blastocyst formation rate of the frozen-thawed mouse mature oocytes by vitrification or ultra-rapid freezing among the control and treatments. It is suggested that vitrification and ultra-rapid freezing method were effective for the cryopreservation of mouse mature oocytes.
Park, Yong-Seog;Lee, Hyoung-Song;Song, Sang-Jin;Kim, Jeong-Wook;Kang, Inn-Soo;Seo, Ju-Tae
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.27
no.3
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pp.267-273
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2000
Objectives: We have previous reported that thawed testicular sperm and sperm extracted from seminiferous tubule could achieved optimal fertilization and pregnancy in azoospermic patients. However, thawed testicular sperm did not show motility in many cases. Therefore we studied viability of immotile sperm extracted from frozen-thawed seminiferous tubule using hypo-osmotic swelling (HOS) test and eosin-Y test. Materials and Methods: After sperm extraction using for ICSI, the remained sections of seminiferous tubules were frozen with a computerized freezer. For thawing and preparation of testicular sperm, the seminiferous tubules were thawed by removing from $LN_2$ and letting them at room temperature for 10 min followed by %37^{\circ}C$ water bath for 10 min. The prepared samples were washed for free of preservation medium and sperm preparation method described previous. Sperm was suspended in 0.1 ml hypoosmotic solution. After 30 minutes, the type of distally coiled sperm were assessed. Results: In 44 cases of cryopreservation of seminiferous tubules in obstructive azoospennic patients, the fertilization rates with 2PN were 71.4% and pregnancy rates were 34.1%. The presence of motile spermatozoa on subsequent post-thaw testicular sperm remarked 15.1% and were increased to 77.3% just before ICSI. After sperm extracted from frozen-thawed seminiferous tubule, 3 hrs later in in vitro culture, the cases of presence of motile sperm, reaction of hypo-osmotic swelling test and viable sperm were 63.6% (28/44), 93.2% (41/44), and 77.3% (34/44), respectively. Conclusions: Just after post-thawed testicular sperm did not showed motility. Although motility was gained after in vitro culture, many cases showed non-motile sperm until optimal insemination time. However, HOS test showed positive reaction in non-motile sperm. Therefore, HOS test is an alternative method for the selection of viable sperm for ICSI.
Glass wool filtration and swim-up method resulted in inreasing to 58.3% and 62.7% of the progressive motility in frozen-thawed boar sperm, compared to 34.2% in the untreated sperm. Glass wool filtration tended to be more successful than swim-up method for the survival sfter incubation of 38.5$^{\circ}C$ for 3h. Sperm recovered by both the swim-up method and the glass wool filtration method were tested in an in vitro fertilization to determine which of the two techniques would yield sperm with high fertilizing capacity. The results indicated that there was a significantly(p
This experiment was carried out to investigate the developmental ability of bovine embryos matured and fertilized in vitro to the gastrulation stage. The bovine oocytes were collected from 2∼5mm follicles, matured for 20∼24hrs in 5% CO2 incubator and then fertilized with frozen-thawed semen. On day 9 after IVF and after freezing and thawing the hatching abilities of expanding blastocysts were examined. Cleavage rate and production rate to expanding blastocysts were 59.7%(955/1604) and 20.7%(333/1604), respectively. Hatching rate of day-9 expanding blastocysts was 54%(40/74), that after freezing and thawing was 56%(79/141). Also, developmental ability of hatched blastocysts to the primitive streak stage was 26%(6/23).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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