Bone morphogenetic proteins (BMPs), members of a large group of TGF-beta family, are important molecular regulators of morphogenesis of numerous tissues and organs, including bones and teeth. Most BMPs are capable of inducing bone formation in vivo and therefore are of considerable clinical interest for regenerating mineralized tissues. Recently, we have developed a method to culture cells from human cementum (human cementum-derived cells, HCDCs). HCDCs, when attached to synthetic hydroxyapatite/tricalcium phosphate (HA/TCP) ceramic and transplanted into immunodeficient mice, formed histologically identifiable cementum-like tissue. Since it is unclear to what extent BMPs are involved in cementogenesis, the aim of this study was to establish which BMPs are expressed by cementogenic HCDCs and whether the expression of BMPs is related to the degree of cellular differentiation in vitro. HCDCs were maintained in growth medium (DMEM/F12 supplemented with 10% FBS) until confluent (proliferation stage). Upon reaching confluence, cells were incubated in the differentiation medium (DMEM/F12 medium containing 10% FBS and 50 mg/ml ascorbic acid) for 14 days (differentiation stage). Next, HCDCs were incubated in mineralization medium (DMEM/F12, 50 mg/ml ascorbic acid, 2.5 mg/ml of ITS (insulin-transferrinselenium), 5 mM beta-glycerophosphate and $10^{-8}M$ dexamethasone) for another 14 days (mineralization stage). At the end of each differentiation stage, total RNA was isolated and evaluated for BMPs (2 through 8) expression by employing real time RT-PCR. HCDCs expressed most of BMPs examined except BMP-7 and BMP-8. Furthermore, on average, the highest levels of BMPs were expressed at the earlier differentiation stage, prior to the initiation of mineralization in vitro. These results indicate that several BMPs are expressed during cementoblastic differentiation and suggest that BMPs may be involved in the homeostasis of human cementum.
Porous scaffolds composed of gelatin and polysaccharides such as hyaluronic acid and $\beta$-glucan were prepared by using the freeze-drying method after cross-linking with l-ethyl-(3-3-dimethylaminopropyl) carbodiimide hydrochloride (EDC). The scaffold had an inter-connected pore structure with the sufficient pore size for use as a support for the growth of fibroblasts. Results for the contact angle and cell attachment confirmed that high gelatin content in a mixture was suitable for cellular attachment and distribution in two- or three-dimensional fibroblast cultures. However, the addition of polysaccharides aroused the synergistic effects of morphologic and mechanical property of gelatin-based scaffolds. To prepare the artificial dermis for the wound dressing to mimic the normal human dermal skin, fibroblasts were isolated from a child's foreskin, and cultured in gelatin-based scaffolds. An in vivo study showed that the artificial dermis containing the fibroblasts enhanced the wound healing rate and re-epithelialization of a full-thickness skin defect rather than the acellular scaffold after one week.
Kim, Dong Yeol;Kim, Han Rae;Kim, Kwang Kon;Park, Jeong Woo;Lee, Byung Ju
Molecules and Cells
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v.38
no.2
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pp.145-150
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2015
Continuous intra- and extracellular stresses induce disorder of $Ca^{2+}$ homeostasis and accumulation of unfolded protein in the endoplasmic reticulum (ER), which results in ER stress. Severe long-term ER stress triggers apoptosis signaling pathways, resulting in cell death. Neural epidermal growth factor-like like protein 2 (NELL2) has been reported to be important in protection of cells from cell death-inducing environments. In this study, we investigated the cytoprotective effect of NELL2 in the context of ER stress induced by thapsigargin, a strong ER stress inducer, in Cos7 cells. Overexpression of NELL2 prevented ER stress-mediated apoptosis by decreasing expression of ER stress-induced C/EBP homologous protein (CHOP) and increasing ER chaperones. In this context, expression of anti-apoptotic Bcl-xL was increased by NELL2, whereas NELL2 decreased expression of pro-apoptotic proteins, such as cleaved caspases 3 and 7. This anti-apoptotic effect of NELL2 is likely mediated by extracellular signal-regulated kinase (ERK) signaling, because its inhibitor, U0126, inhibited effects of NELL2 on the expression of anti- and pro-apoptotic proteins and on the protection from ER stress-induced cell death.
Many studies have been conducted to understand plant stress responses to salinity because irrigation-dependent salt accumulation compromises crop productivity and also to understand the mechanism through which some plants thrive under saline conditions. As mechanistic understanding has increased during the last decades, discovery-oriented approaches have begun to identify genetic determinants of salt tolerance. In addition to osmolytes, osmoprotectants, radical detoxification, ion transport systems, and changes in hormone levels and hormone-guided communications, the Salt Overly Sensitive (SOS) pathway has emerged to be a major defense mechanism. However, the mechanism by which the components of the SOS pathway are integrated to ultimately orchestrate plant-wide tolerance to salinity stress remains unclear. A higher-level control mechanism has recently emerged as a result of recognizing the involvement of GIGANTEA (GI), a protein involved in maintaining the plant circadian clock and control switch in flowering. The loss of GI function confers high tolerance to salt stress via its interaction with the components of the SOS pathway. The mechanism underlying this observation indicates the association between GI and the SOS pathway and thus, given the key influence of the circadian clock and the pathway on photoperiodic flowering, the association between GI and SOS can regulate growth and stress tolerance. In this review, we will analyze the components of the SOS pathways, with emphasis on the integration of components recognized as hallmarks of a halophytic lifestyle.
The objective of this study was to induce the production of isthmic organizer (IsO)-like cells capable of secreting fibroblast growth factor (FGF) 8 and WNT1 from human embryonic stem cells (ESCs). The precise modulation of canonical Wnt signaling was achieved in the presence of the small molecule CHIR99021 ($0.6{\mu}M$) during the neural induction of human ESCs, resulting in the differentiation of these cells into IsO-like cells having a midbrain-hindbrain border (MHB) fate in a manner that recapitulated their developmental course in vivo. Resultant cells showed upregulated expression levels of FGF8 and WNT1. The addition of exogenous FGF8 further increased WNT1 expression by 2.6 fold. Gene ontology following microarray analysis confirmed that IsO-like cells enriched the expression of MHB-related genes by 40 fold compared to control cells. Lysates and conditioned media of IsO-like cells contained functional FGF8 and WNT1 proteins that could induce MHB-related genes in differentiating ESCs. The method for generating functional IsO-like cells described in this study could be used to study human central nervous system development and congenital malformations of the midbrain and hindbrain.
The tazarotene-induced gene 1 (TIG1) protein is a retinoidinducible growth regulator and is considered a tumor suppressor. Here, we show that DnaJ heat shock protein family member C8 (DNAJC8) is a TIG1 target that regulates glycolysis. Ectopic DNAJC8 expression induced the translocation of pyruvate kinase M2 (PKM2) into the nucleus, subsequently inducing glucose transporter 1 (GLUT1) expression to promote glucose uptake. Silencing either DNAJC8 or PKM2 alleviated the upregulation of GLUT1 expression and glucose uptake induced by ectopic DNAJC8 expression. TIG1 interacted with DNAJC8 in the cytosol, and this interaction completely blocked DNAJC8-mediated PKM2 translocation and inhibited glucose uptake. Furthermore, increased glycose uptake was observed in cells in which TIG1 was silenced. In conclusion, TIG1 acts as a pivotal repressor of DNAJC8 to enhance glucose uptake by partially regulating PKM2 translocation.
The present work is aimed at providing additional new pure cultures of oxalate utilizing bacteria and its preliminary characterization for further work in the field of oxalate-metabolism and taxonomic studies. The taxonomy of 14 mesophilic, aerobic oxalotrophic bacteria isolated by an enrichment culture technique from soils rhizosphers, and the juice of the petiole/stem tissue of plants was investigated. Isolates were characterized with 95 morphological, biochemical and physiological tests. Cellular lipid components and carotenoids of isolates were also studied as an aid to taxonomic characterization. All isolates were Gram-negative, oxidase and catalase positive and no growth factors were required. In addition to oxalates, some of the strains grow on methanol and/or formate. The taxonomic similarities among isolates, reference strains or previously reported oxalotrophic bacteria were analysed by using the Simple Matching (S/ sub SM/) and Jaccard (S$\_$J/) Coefficients. Clustering was performed by using the unweighted pair group method with arithmetic averages (UPGMA) algorithm. The oxalotrophic strains formed five major and two single-member clusters at the 70-86% similarity level. Based on the numerical taxonomy, isolates were separated into three phenotypic groups. Pink-pigmented strains belonged to Methylobacterium extorquens, yellow-pigmented strains were most similar to Pseudomonas sp. YOx and Xanthobacter autorophicus, and heterogeneous non-pigmented strains were closely related to genera Azospirillum, Ancylobacter, Burkholderia and Pseudomonas. New strains belonged to the genera Pseudomonas, Azospirillum and Ancylobacter that differ taxonomically from other known oxalate oxidizers were obtained. Numerical analysis indicated that some strains of the yellow-pigmented and nonpigmented clusters might represent new species.
To avoid the intrinsic problem of aggregation associated with the traditional solution-phase refolding process, we propose a solid-phase refolding method integrated with expanded bed adsorption chromatography. The model protein used was a fusion protein of recombinant human growth hormone and a glutathione S transferase fragment. It was demonstrated that the EBA-mediated refolding technique could simultaneously remove cellular debris and directly renature the fusion protein inclusion bodies in the cell homogenate with much higher yields and less agregation. To demonstrate the applicability of the method, we successfully tested the three representative types of starting materials, i. e., rhGH monomer, washed inclusion bodies, and the E. coli homogenate. This direct and simplified refolding process could also reduce the number of renaturation steps required and allow refolding at a higher concentration, at approximately 2 mg fusion protein per ml of resin. To the best of our knowledge, it is the first approach that has combined the solid-phase refolding method with expanded bed chromatography.
The target of rapamycin (TOR) signaling pathway conserved from yeast to human plays critical roles in regulation of eukaryotic cell growth. It has been shown that TOR pathway is involved in several cellular processes, including ribosome biogenesis, nutrient response, autophagy and aging. However, due to the functional diversity of TOR pathway, we do not know yet some key effectors of the pathway. To find unknown effectors of TOR signaling pathway, we took advantage of a green fluorescent protein (GFP)-tagged collection of budding yeast Saccharomyces cerevisiae. We analyzed protein abundance changes by measuring the GFP fluorescence intensity of 4156 GFP-tagged yeast strains under inhibition of TOR pathway. Our proteomic analysis argues that 83 proteins are decreased whereas 32 proteins are increased by treatment of rapamycin, a specific inhibitor of TOR complex 1 (TORC1). We found that, among the 115 proteins that show significant changes in protein abundance under rapamycin treatment, 37 proteins also show expression changes in the mRNA levels by more than 2-fold under the same condition. We suggest that the 115 proteins indentified in this study may be directly or indirectly involved in TOR signaling and can serve as candidates for further investigation of the effectors of TOR pathway.
Iron plays a key role in host-pathogen interactions. Microbial pathogens require iron for survival and virulence, whereas mammalian hosts sequester and withhold iron as a means of nutritional immunity. We previously identified two paralogous genes, CFT1 and CFT2, which encode homologs of a fungal iron permease, Cft1 and Cft2, respectively, in the human fungal pathogen Cryptococcus neoformans. Cft1 was shown to play a role in the high-affinity reductive iron uptake system, and was required for transferrin utilization and full virulence in mammalian hosts. However, no role of Cft2 has been suggested yet. Here, we identified the third gene, CFT3, that produces an additional fungal iron permease homolog in C. neoformans, and we also generated the cft3 mutant for functional characterization. We aimed to reveal distinct functions of Cft1, Cft2 and Cft3 by analyzing phenotypes of the mutants lacking CFT1, CFT2 and CFT3, respectively. The endogenous promoter of CFT1, CFT2 and CFT3 was replaced with the inducible GAL7 promoter in the wild-type strain or in the cft1 mutant for gain-of-function analysis. Using these strains, we were able to find that CFT2 is required for growth in low-iron conditions in the absence of CFT1 and that overexpression of CFT2 compensates for deficiency of the cft1 mutant in iron uptake and various cellular stress conditions. However, unlike CFT2, no clear phenotypic characteristic of the cft3 mutant and the strain overexpressing CFT3 was observed. Overall, our data suggested a redundant role of Cft2 in the high-affinity iron uptake and stress responses in C. neoformans.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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