Kim Kwang-Soo;Kim Hye-Jung;Oh Deok-Kun;Cheong Jong-Joo;Rhee Sang-Kee
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.16
no.4
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pp.647-650
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2006
D-Psicose 3-epimerase (DPE) catalyzes the interconversion of D-fructose to D-psicose by epimerizing the carbon-3 position. The DPE from Agrobacterium tumefaciens was cloned and expressed in Escherichia coli. The expressed enzyme was purified by affinity chromatography on an IMAC, gel filtration chromatography on a Sephacryl S-300 HR, and anion-exchange chromatography on a RESOURCE Q. The molecular mass of the purified enzyme was estimated to be about 135 kDa by Superdex 200 gel filtration chromatography, corresponding to a homotetramer. The enzyme produced crystals suitable for X-ray diffraction to a $2.0{\AA}$ resolution at 100 K. The crystals were found to belong to the orthorhombic space group $P2_12_12_1$, with unit-cell parameters a=102.4, b=113.0, and $c=131.8{\AA}$. In addition, the calculated packing parameter $(V_m)$ was $2.79{\AA}^3/Da$, the solvent content was 55.92%, and an asymmetric unit consisted of four monomers.
Polyphenol oxidase isoforms were purified from the lotus roots using 50% acetone precipitation, conventional chromatographies of Q-Sepharose and hydrophobic interaction, and high performance liquid chromatographies of Mono-Q and Superdex 75 gel-filtration. Molecular mass of a purified PPO isoform (LPIII-2) was determined to be 56 kDa using gel-filtration chromatography. The active form of LPIII-2 appeared to bea heterodimer, as purified LPIII-2 on SDS-PAGE gel showed two bands that were determined to be 28 kDa and 26 kDa. To further characterize PPO, partially purified PPO isoforms (LP-II, LP-III) were obtained from Q-Sepharose anion-exchange chromatography. In substrate specificity, the partially purified PPO isoform LP-II showed a high affinity to catechol, while LP-III showed a high affinity to pyrogallol. The optimum pH of LP-II and LP-III was pH 7.0. Interestingly, the partially purified PPO isoforms showed high activities at low temperatures $(0{\sim}5^{\circ}C)$, and as temperatures rose, the activities decreased. Both PPO isoforms were stable at $40^{\circ}C$ and were inactivated by incubation at $60^{\circ}C$ for 40 min.
The effects of CRP purified from human ascites fluid on phagocytic activity of the human macrophage were investigated. CRP was purified using affinity chromatography including absorption on p-diazonium phosphocholine or C-polysaccharide coupled sepharose 4B and gel filtration on hydroxylapatite column chromatography. Macrophage was separated ficoll hypaque gradient density and absorption method, and then was confirmed phagocytic uptake test using latex method. CRP was able either to inhibit or to enhance phagocytic activity of human macrophage against bacteria in vitro. The effects of CRP on phagocytic activity of human macrophage were in time and dose-dependent manners. The additional sequence of reaction mixture against bacteria in vitro shows a threshold stimulus on the activation of phagocytic response upon the CRP.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.6
no.2
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pp.151-155
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2003
Using gel filtration chromatography, high molecular silk fibroin with high purity was obtained and silk flbroin microsphere particles (SFMP) could be simply made by spray dryer method. Also, some of the physicochemical properties of SFMP and morphology were investigated. The average molecular weight of pure silk fibroin protein dissolved in calcium chloride is about 61,500g/㏖ as measured by gel permeation chromatography. SFMP was spherical in shape, and particles, sized average of 2 ${\pm}$ 10 ${\mu}$, were observed by SEM and particle analyzer, respectively. Obtaining microspheres particles by spray dryer method accelerated the transition from the random coil to the $\beta$-sheet structure during spray dryer treatment. It was identified by the basic fourier transform infrared spectroscopy of SFMP. The swelling ratio of SFMP is majorly dependent on the pH of the solution, not on the occurred gelation. The characteristic structure, which might be applicable to immobilization of drugs is superior to other matrix materials for the use of biomaterials with skin affinity.
Ascorbate oxidizing enzyme from the crude extract of Pleurotus ostreatus was purified by ammonium sulfate precipitation, preparative polyacrylamide gel electrophoresis, DEAE Sepharose CL-6B ion exchange chromatography and Sephadex G-150 gel filtration chromatography. The molecular weight of the enzyme estimated by Sephadex G-150 gel filtration chromatography was 140,000 and that of its subunit by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis 66,000. The optimum pH for the maximum activity of the enzyme was 5.2 and the isoelectric point of the enzyme was 6.0 Km values for L-ascorbic acid and D-isoascorbic acid were both 2.2.$\mu$M, which indicates that the enzyme has the asme affinity towards both substrates.
L-Ascorbic acid-producing enzyme in Neurospora crassa was found to exist in mitochondria and the activity of this enzyme was increased by the addition of D-fluconno-${\gamma}$-lactone or L-gulono-${\gamma}$-lactone in the media. L-Ascorbic acid-producin enzyme in N. crassa has been purified with ammonium sulfate precipitation. DEAE Sepharose CL-6B ion exchange chromatography. Sephacryl S-200 gel filtration chromatography and Reactive yellow 3-agarose dye affinity column chromatography. The specific activity of this enzyme was increased to 239.6 fold and the yield was 2.1%. The molecular weight of the native enzyme was 150.000 dalton when it was estimated with Sephacryl S-200 gel filtration chromatography. Its molecular weight appeared as 75.000 dalton by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. which suggested that this enzyme was consisted with two identical subunits. The optimal pH for this enzyme was 9.0 and the $K_m$ value for D-galactono-${\gamma}$-lactone was 0.073 mM.
Xylose reductase (alditol: $NADP^+$ 1-oxidoreductase, EC 1.1.1.21) from the xylose-fermenting yeast, Candida sp. BT001, was purified via salt fractionation, ion-exchange, gel filtration and affinity chromatography, and its properties were characterized. The enzyme from the yeast was active with both NADPH and NADH as coenzyme. The xylose reductase activity with NADH was approximately 51% of that with NADPH and the specific activities of purified enzyme with NADPH and NADH were 11.78 U/mg and 6.01 U/mg, respectively. Molecular weight of the purified enzyme was 31,000 on SDS-PAGE and 61,000 on gel filtration. The Km for D-xylose, NADPH, and NADH was $94.2{\times}10^{-3}M,\;0.011{\times}10^{-3}M\;and \;0.032{\times}10^{-3}M$, respectively. The purified xylose reductase had relatively higher substrate affinity for L-arabinose than other aldoses tested. The optimal pH was 6.2 and the optimal reaction temperature was $45^{\circ}C$. The thermal stability of the enzyme was for 20 minutes at $30^{\circ}C$.
This study was conducted to efficiently separate the Ig from Korean native cattle colostrum and to utilize them as an immunogen for the production of antibodies aginst rabbit. The results obtained were as follows : 1. About 84% of Ig G could be separated from Korean native cattle colostrum by·gel filtration using Superose 12 column on HPLC. The separation profile of Korean native cattle colostral immunoglobulin was similar that of Holstein colostral Ig. 2. Separation of Korean native cattle colostral Ig by anion exchange chromatography using Mono Q column on HPLC was poor resolution chromatographic pattern. 3. Hi-Trap Protein G column showed better results than the Protein A Sepharose CL-4B column in the Ig G binding capacity from Korean native cattle colostral Ig. 4. Protein G Sepharose Fast Flow system resulted in higher Ig g binding capacity as the industrial size scale-up approach. 5. Sufficient titer reaction of antibody to Korean native cattle colostral Ig G was confirmed by ELISA.
A purification technique of glucose oxidase was developed. Using the gluconyl-${\omega}$-aminohexyl Sepharose affinity chromatography, it was partially purified 14.6 folds with 79.7% yield. With the combination of the affinity chromatography and Sepharose 6B gel filtration, the enzyme was purified 27.2 folds from the broth with 74.1% yield. The final purified preparation showed 90.83 U of glucose oxidase activity per mg of protein and a single band by 7% polyacrylamide gel electrophoresis. The absorption spectrum and substrate specificity of the enzyme were studied and the fianal preparation showed the optimal pH between 5.6 and 6.0, the optimal temperature at $40^{\circ}C$, $8.5{\times}10^{-3}M$ of $K_m$ for D-glucose, and 3.43 kcal/mole of the activation energy.
Kim, Seul-Ki;Kang, Ho-Joon;Kim, Jae-Joon;Kim, Woo-Yeon
Horticultural Science & Technology
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v.29
no.3
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pp.255-259
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2011
Polyphenol oxidases (PPO) are copper-containing enzymes responsible for tissue browning in fruits and vegetables including potato, apple and pears. Although these enzymes have been studied for many years, their physiological roles in plants are not yet clear. Therefore, these enzymes need to be purified to characterize further from potato tubers. The classical methods used for the purification of PPO involve several steps. So in this study, we developed a one-step chromatography process for the potato tuber PPO purification. After removal of salts from dissolved ammonium sulfate precipitates of potato tuber extracts using Sephadex-G50 gel filtration, affinity chromatography was carried out on NHS-activated Sepharose 4B using p-aminobenzoic acid as a ligand. The purified enzyme was confirmed by silver staining and a zymogram. The optimum temperature and pH for the purified potato tuber PPO were $15^{\circ}C$ and pH 6.0, respectively. The results obtained in the present study will aid to evaluate PPO from various fruits and vegetables.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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