Seo, Hyun-Cheol;Kim, Sun-Mi;Lee, Sae-A;Rhim, Byung-Yong;Kim, Koanhoi
Journal of Life Science
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v.22
no.12
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pp.1637-1643
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2012
This study investigated the effects of PG on IL-$1{\beta}$ expression and determined cellular factors involved in PG-mediated IL-$1{\beta}$ up-regulation in mononuclear cells in order to understand the molecular mechanisms underlying inflammatory responses associated with bacterial pathogen-associated molecular patterns in the diseased artery. Exposure of human monocytic leukemia THP-1 cells to PG resulted in enhanced secretion of IL-$1{\beta}$ and also profound induction of the IL-$1{\beta}$ gene transcript. These effects were abrogated by OxPAPC, an inhibitor of TLR-2/4. Pharmacological inhibitors such as U0126, SP6001250, Akti IV, rapamycin, and DPI also significantly attenuated PG-mediated IL-$1{\beta}$ up-regulation. However, polymyxin B did not influence the IL-$1{\beta}$ expression. This study indicates that PG contributes to vascular inflammation in atherosclerotic plaques by up-regulating expression of IL-$1{\beta}$ via TLR-2, Akt, mTOR, MAPKs, and ROS.
The high mobility group box-1 (HMGB1) protein and NALP3 inflammasome have been identified to play important roles in inflammation and cancer pathogenesis, but the relationships between the two and cancer remain unclear. The current study investigated the relationship between HMGB1 and the NALP3 inflammasome in THP-1 macrophages. HMGB1 was found unable to activate the NALP3 inflammasome and failed to induce the release of the IL-$1{\beta}$ and IL-18 in THP-1 macrophages. HMGB1 was also found significantly enhanced the activity of ATP to induce IL-$1{\beta}$ and IL-18 by the induction of increased expression of pro-IL-$1{\beta}$ and pro-IL-18. This process was dependent on activation of RAGE, MAPK p38 and NF-${\kappa}B$ signaling pathway. These results demonstrate that HMGB1 promotes the synthesis of pro-IL-$1{\beta}$ and pro-IL-18 in THP-1 macrophages by the activation of p38 MAPK and NF-${\kappa}B$ through RAGE. HMGB1 likely plays an important role in the first step of the release of the IL-$1{\beta}$ and IL-18, preparing for other cytokines to induce excessive release of IL-$1{\beta}$ and IL-18 which promote inflammation and cancer progression.
Atherosclerosis is characterized by a chronic inflammatory disease, and chemokines play an important role in both initiation and progression of atherosclerosis development. Leukotactin-1 (Lkn-1/CCLl5), a new member of the human CC chemokine family, is a potent chemoattractant for leukocytes. Our previous study has demonstrated that Lkn-1/CCL15 plays a role in the initiation of atherosclerosis, however, little is currently known whether Lkn-1/CCL15 is associated with the progression of atherosclerosis. Matrix metalloproteinases (MMPs) in human coronary atherosclerotic lesions playa crucial role in the progression of atherosclerosis by altering the vulnerability of plaque rupture. In the present study, we examined whether Lkn-1/CCLl5 modulates MMP-9 release, which is a prevalent form expressed by activated macrophages and foam cells. Human THP-1 monocytic cells and/or human peripheral blood monocytes (PBMC) were treated with phorbol myristate acetate to induce their differentiation into macrophages. Foam cells were prepared by the treatment of THP-1 macrophages with human oxidized LDL. The macrophages and foam cells were treated with Lkn-1/CCL15, and the levels of MMP-9 release were measured by Gelatin Zymography. Lkn-1/CCL15 significantly enhanced the levels of MMP-9 protein secretion from THP-1 monocytic cells-derived macrophages, human PBMC-derived macrophages, as well as macrophage-derived foam cell in a dose dependent manner. Our data suggest that the action of Lkn-1/CCL15 on macrophages and foam cells to release MMP-9 may contribute to plaque destabilization in the progression of atherosclerosis.
Background Macrophages play a major role in wound healing and prevent infection from the outside. Polarization conversion of macrophages regulates aspects of inflammation, and two macrophages, M1 (classically activated) and M2 (alternatively activated), exist at both ends of broad-spectrum macrophage polarization. Thus, we aimed to investigate whether macrophage polarization can be artificially regulated. To this end, MgSO4 and small-interfering RNA (siRNA) targeting magnesium transport 1 (MAGT1) were used to investigate the effects of intracellular magnesium (Mg2+) concentrations on the differentiation of macrophages in vitro. Methods THP-1 derived macrophages maintained in a culture medium containing 5 mM MgSO4 and siRNA to inhibit the expression of MAGT1. As comparative groups, THP-1 derived macrophages polarized into M1 and M2 macrophages by treatment with M1, M2 inducer cytokine. The polarization status of each group of cells was confirmed by cell surface antigen expression and cytokine secretion. Results We found that MgSO4 treatment increased CD163 and CD206, similar to the effect noted in the M2 group. The expression of CD80 and HLA-DR was increased in the group treated with MAGT1 siRNA, similar to the effect noted in the M1 group. Functional assays demonstrated that the group treated with MgSO4 secreted higher levels of IL-10, whereas the MAGT1 siRNA-treated group secreted higher levels of IL-6 cytokines. Additionally, the conditional medium of the Mg2+ treated group showed enhanced migration of keratinocytes and fibroblasts. Conclusion Mg2+ can help to end the delay in wound healing caused by persistent inflammation in the early stages.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Resveratrol, a natural polyphenol, has multiple functions in cellular responses including apoptosis, survival, and differentiation. It also participates in the regulation of inflammatory response and oxidative stress. MicroRNA-Let-7A (miR-Let7A), known as a tumor suppressor miRNA, was recently reported to play a crucial role in both inflammation and apoptosis. Therefore, we examined involvement of miR-Let7A in the modulation of inflammation and cell survival/apoptosis regulated by resveratrol. MATERIALS/METHODS: mRNA expression of pro-/anti-inflammatory cytokines and sirtuin 1 (SIRT1), and protein expression of apoptosis signal-regulating kinase 1 (ASK1), p-ASK1, and caspase-3 and cleaved caspase-3 were measured, and cell viability and Hoechst/PI staining for apoptosis were observed in Lipopolysaccharide (LPS)-stimulated human THP-1 macrophages with the treatment of resveratrol and/or miR-Let7A overexpression. RESULTS: Pre-treatment with resveratrol ($25-200{\mu}M$) resulted in significant recovery of the reduced cell viabilities under LPS-induced inflammatory condition and in markedly increased expression of miR-Let7A in non-stimulated or LPS-stimulated cells. Increased mRNA levels of tumor necrosis $factor-{\alpha}$ and interleukin (IL)-6 induced by LPS were significantly attenuated, and decreased levels of IL-10 and brain-derived neurotrophic factor were significantly restored by resveratrol and miR-Let7A overexpression, respectively, or in combination. Decreased expression of IL-4 mRNA by LPS stimulation was also significantly increased by miR-Let7A overexpression co-treated with resveratrol. In addition, decreased SIRT1 mRNA levels, and increased p-ASK1 levels and PI-positive cells by LPS stimulation were significantly restored by resveratrol and miR-Let7A overexpression, respectively, or in combination. CONCLUSIONS: miR-Let7A may be involved in the inflammatory response and cell survival/apoptosis modulated by resveratrol in human THP-1 macrophages.
The expression of interleukin-1α (IL-1α) is elevated in monocytic cells, such as monocytes and macro-phages, within atherosclerotic arteries, yet the cellular molecules involved in cytokine upregulation remain unclear. Because peptidoglycan (PG), a major component of gram-positive bacterial cell walls, is detected within the inflammatory cell-rich regions of atheromatous plaques, it was investigated if PG contributes to IL-1α expression in monocytes/macrophages. Exposure of THP-1 monocytic cells to PG resulted in elevated levels of IL-1α gene transcripts and increased secretion of IL-1α protein. The transcription and secretion of IL-1α were abrogated by OxPAPC, an inhibitor of TLR2/4, but not by polymyxin B that inhibits lipopolysaccharide-induced TLR4 activation. To understand the molecular mechanisms of the inflammatory responses due to bacterial pathogen-associated molecular patterns (PAMPs) in diseased arteries, we attempted to determine the cellular factors involved in the PG-induced upregulation of IL-1α expression. Pharmacological inhibition of cell signaling pathways with LY294002 (a PI3K inhibitor), Akti IV (an inhibitor of Akt activation), rapamycin (an mTOR inhibitor), U0126 (a MEK inhibitor), SB202190 (a p38 MAPK inhibitor), SP6001250 (a JNK inhibitor), and DPI (a NOX inhibitor) also significantly attenuated the PG-mediated expression of IL-1α. These results suggest that PG induces the monocytic or macrophagic expression of IL-1α, thereby contributing to vascular inflammation, via multiple signaling molecules, including TLR2, PI3K/Akt/mTOR, and MAPKs.
It is debatable whether AMP-activated protein kinase (AMPK) activation is involved in anti-apoptotic or pro-apoptotic signaling. AICAR treatment increases AMPK-${\alpha}1$ phosphorylation, decreases intracellular reactive oxygen species (ROS) levels, and significantly increases Annexin V-positive cells, DNA laddering, and caspase activity in human myeloid cell. AMPK activation is therefore implicated in apoptosis. However, AMPK-${\alpha}1$-knockdown THP-1 cells are more sensitive to apoptosis than control THP-1 cells are, suggesting that the apoptosis is AMPK-independent. Low doses of AICAR induce cell proliferation, whereas high doses of AICAR suppress cell proliferation. Moreover, these effects are significantly correlated with the downregulation of intracellular ROS, strongly suggesting that AICAR-induced apoptosis is critically associated with the inhibition of NADPH oxidase by AICAR. Collectively, our results demonstrate that in AICAR-induced apoptosis, intracellular ROS levels are far more relevant than AMPK activation.
Monocytes are the major inflammatory cells that infiltrate most solid tumors in humans. The interaction of tumor cells with infiltrating monocytes and their adhesion to these monocytes play a significant role in altering the tumor to become more aggressive. Recently, exposure to lipopolysaccharide (LPS) was suggested to promote cancer cell adhesion to monocytes; however, little is known about the details of the signaling mechanism involved in this process. In this study, we found that LPS up-regulates ICAM-1 expression in MDA-MB-231 breast cancer cells, which facilitates their adhesion to THP-1 monocytes. In addition, we analyzed the signaling mechanism underlying the up-regulation of ICAM-1 and found that the siRNA-mediated depletion of BLT2 markedly suppressed the LPS-induced expression of ICAM-1 in MDA-MB-231 cells and the subsequent adhesion of these cells to THP-1 monocytes. Moreover, we demonstrated that myeloid differentiation primary response gene 88 (MyD88) lies downstream of LPS/TLR4 and upstream of BLT2 and that this 'MyD88-BLT2' cascade mediates ERK activation and subsequent ICAM-1 expression, which is critical for the adhesion of MDA-MB-231 cells to THP-1 monocytes. Taken together, our results demonstrate for the first time that LPS up-regulates ICAM-1 expression in breast cancer cells via a MyD88-BLT2-ERK-linked signaling cascade, leading to the increased adhesion of breast cancer cells to monocytes.
CD11c and costimulatory molecules such as CD80 and CD86 express mainly in dendritic cells (DCs). In this study, we investigated the biologic effects of recombinant Fms-like tyrosine kinase-3 (Flt-3) ligand on the expression of DC surface markers, including CD11c in leukemia cell lines, such as KG-1, HL-60, NB4, and THP-1 cells. The expression of the Flt-3 receptor was found in NB4 and HL-60 cells, as well as KG-1 cells, but not in THP-1 cells. When KG-1 cells were cultured in a medium containing Flt-3 ligand or granulocyte macrophage-colony stimulating factor (GM-CSF) plus tumor necrosis factor (TNF)-$\alpha$, cell proliferation was inhibited and the expression levels of CD11c, major histocompatibility complex (MHC)-I, and MHC-II were increased in the cells. Flt-3 ligand also increased the expression level of CD11c on HL-60 and NB4 cells, but not on THP-1 cells. In comparison with CD11c expression, the expression level of CD11b on KG-1 cells, but not on NB4 and HL-60 cells, was slightly increased by Flt-3 ligand. Flt-3 ligand induced phosphorylation of extracellular signal-regulated kinase-1/2 (ERK-1/2) and p38-mitogen-activated protein kinase (p38-MAPK) in KG-1 cells, and the up-regulation of CD11c expression by Flt-3 ligand in the cells was abrogated by PD98059, an inhibitor of MEK. The results suggest that Flt-3 ligand up-regulates DC surface markers on $CD34^+$ myelomonocytic KG-1 cells, as well as promyelocytic leukemia cells, and that the differentiation of the leukemia cells into DC-like cells by Flt-3 ligand is mediated by ERK-1/2 activity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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