Among the therapeutic strategies in cancer immunotherapy-such as immune-modulating antibodies, cancer vaccines, or adoptive T cell transfer-T cells have been an attractive target due to their cytotoxicity toward tumor cells and the tumor antigen-specific binding of their receptors. Leveraging the unique properties of T cells, chimeric antigen receptor-T cells and T cell receptor (TCR)-T cells were developed through genetic modification of their receptors, enhancing the specificity and effectiveness of T cell therapy. Adoptive cell transfer of chimeric antigen receptor-T cells has been successful for the treatment of hematological malignancies. To expand T cell therapy to solid tumors, T cells are modified to express defined TCR targeting tumor associated antigen, which is called TCR-T therapy. This review discusses anti-tumor T cell therapies, with a focus on engineered TCR-T cell therapy. We outline the characteristics of TCR-T cell therapy and its clinical application to non-hematological malignancies.
The advent of the major histocompatibility complex (MHC) multimer technology has led to a breakthrough in the quantification and analysis of antigen-specific T cells. In particular, this technology has dramatically advanced the measurement and analysis of CD8 T cells and is being applied more widely. In addition, the scope of application of MHC multimer technology is gradually expanding to other T cells such as CD4 T cells, natural killer T cells, and mucosal-associated invariant T cells. MHC multimer technology acts by complementing the T-cell receptor-MHC/peptide complex affinity, which is relatively low compared to antigen-antibody affinity, through a multivalent interaction. The application of MHC multimer technology has expanded to include various functions such as quantification and analysis of antigen-specific T cells, cell sorting, depletion, stimulation to replace antigen-presenting cells, and single-cell classification through DNA barcodes. This review aims to provide the latest knowledge of MHC multimer technology, which is constantly evolving, broaden understanding of this technology, and promote its widespread use.
Background: In addition to TCR and costimulatory signals, cytokine signals are required for the differentiation of activated CD8 T cells into memory T cells and their survival. Previously, we have shown that IL-12 priming during initial antigenic stimulation significantly enhanced the survival of activated CD8 T cells and increased the memory cell population. In the present study, we analyzed the mechanisms by which IL-12 priming contributes to activation and survival of CD8 T cells. Methods: We observed dramatically decreased expression of CD43 in activated CD8 T cells by IL-12 priming. We purified $CD43^{lo}$ and $CD43^{hi}$ cells after IL-12 priming and analyzed the function and survival of each population both in vivo and in vitro. Results: Compared to $CD43^{hi}$ effector cells, $CD43^{lo}$ effector CD8 T cells exhibited reduced cytolytic activity and lower granzyme B expression but showed increased survival. $CD43^{lo}$ effector CD8 T cells also showed increased in vivo expansion after adoptive transfer and antigen challenge. The enhanced survival of $CD43^{lo}$ CD8 T cells was also partly associated with CD62L expression. Conclusion: We suggest that CD43 expression regulated by IL-12 priming plays an important role in differentiation and survival of CD8 T cells.
Chimeric antigen receptor T (CAR-T) cell therapy is one of the promising anticancer treatments. It shows a high overall response rate with complete response to blood cancer. However, there is a limitation to solid tumor treatment. Additionally, this currently approved therapy exhibits side effects such as cytokine release syndrome and neurotoxicity. Alternatively, bispecific antibody is an innovative therapeutic tool that simultaneously engages specific immune cells to disease-related target cells. Since programmed death ligand 1 (PD-L1) is an immune checkpoint molecule highly expressed in some cancer cells, in the current study, we generated αCD3xαPD-L1 bispecific antibody (BiTE) which can engage T cells to PD-L1+ cancer cells. We observed that the BiTE-bound OT-1 T cells effectively killed cancer cells in vitro and in vivo. They substantially increased the recruitment of effector memory CD8+ T cells having CD8+CD44+CD62Llow phenotype in tumor. Interestingly, we also observed that BiTE-bound polyclonal T cells showed highly efficacious tumor killing activity in vivo in comparison with the direct intravenous treatment of bispecific antibody, suggesting that PD-L1-directed migration and engagement of activated T cells might increase cancer cell killing. Additionally, BiTE-bound CAR-T cells which targets human Her-2/neu exhibited enhanced killing effect on Her-2-expressing cancer cells in vivo, suggesting that this could be a novel therapeutic regimen. Collectively, our results suggested that engaging activated T cells with cancer cells using αCD3xαPD-L1 BiTE could be an innovative next generation anticancer therapy which exerts simultaneous inhibitory functions on PD-L1 as well as increasing the infiltration of activated T cells having effector memory phenotype in tumor site.
Cell-cell adhesion managed by various adhesion molecules plays an important role in regulating functional activation of cells. This event mediates attachment of inflammatory cells to endothelial cells, interaction of antigen-presenting cells with T cells and metastatic adherence of cancer cells to epithelial tissue cells. Therefore, this cellular response is considered as one of therapeutic target to treat various cancers and inflammatory diseases. To develop proper model for evaluation of functional activation of adhesion molecules, the ability of U937 and Jurkat T cells responsive to various adhesion inducers such as phorbal-12-myristate-13-acetate (PMA), staurosporin and monoclonal antibodies to CD29, CD43 and CD98 was investigated using quantitative cell-cell adhesion assay. U937 cells made more cell-cell clusters by the treatment of antibodies to CD29 and CD43 than Jurkat T cells, while Jurkat T cells exhibited increased cell-cell adhesion ability in CD98 antibody treatment. In agreement, the surface levels of CD29 and CD98 were highly observed in U937 and Jurkat T cells, respectively. Therefore, our data suggest that Jurkat T and U937 cells can be used for model system to evaluate functional activation of adhesion molecules such as CD29 and CD98.
CD4 and CD8 T cells are key players in the immune response against both pathogenic infections and cancer. CD4 T cells provide help to CD8 T cells via multiple mechanisms, including licensing dendritic cells (DCs), co-stimulation, and cytokine production. During acute infection and vaccination, CD4 T cell help is important for the development of CD8 T cell memory. However, during chronic viral infection and cancer, CD4 helper T cells are critical for the sustained effector CD8 T cell response, through a variety of mechanisms. In this review, we focus on T cell responses in conditions of chronic Ag stimulation, such as chronic viral infection and cancer. In particular, we address the significant role of CD4 T cell help in promoting effector CD8 T cell responses, emerging techniques that can be utilized to further our understanding of how these interactions may take place in the context of tertiary lymphoid structures, and how this key information can be harnessed for therapeutic utility against cancer.
Follicular helper T cells (Tfh) play a significant role in providing T cell help to B cells during the germinal center reaction, where somatic hypermutation, affinity maturation, isotype class switching, and the differentiation of memory B cells and long-lived plasma cells occur. Antigen-specific T cells with IL-6 and IL-21 upregulate CXCR5, which is required for the migration of T cells into B cell follicles, where these T cells mature into Tfh. The surface markers including PD-1, ICOS, and CD40L play a significant role in providing T cell help to B cells. The upregulation of transcription factor Bcl-6 induces the expression of CXCR5, which is an important factor for Tfh differentiation, by inhibiting the expression of other lineage-specific transcription factors such as T-bet, GATA3, and RORγt. Surprisingly, recent evidence suggests that CD4 T cells already committed to Th1, Th2, and Th17 cells obtain flexibility in their differentiation programs by downregulating T-bet, GATA3, and RORγt, upregulating Bcl-6 and thus convert into Tfh. Limiting the numbers of Tfh within germinal centers is important in the regulation of the autoantibody production that is central to autoimmune diseases. Recently, it was revealed that the germinal center reaction and the size of the Tfh population are also regulated by thymus-derived follicular regulatory T cells (Tfr) expressing CXCR5 and Foxp3. Dysregulation of Tfh appears to be a pathogenic cause of autoimmune disease suggesting that tight regulation of Tfh and germinal center reaction by Tfr is essential for maintaining immune tolerance. Therefore, the balance between Tfh and Tfr appears to be a critical peripheral tolerance mechanism that can inhibit autoimmune disorders.
Aims: Dysfunction of the host immune system in cancer patients can be due to a number of factors, including lymphocyte apoptosis. Several studies showed that $Foxp3^+T$ cells take part in inducing this process by expressing FasL in tumor patients. However, the relationship between apoptosis, $CD8^+T$ cells and $Foxp3^+T$ cells in HCC patients is still unclear. The present study was designed to investigate the correlation between apoptosis levels and Fas/FasL expression in $CD8^+T$ lymphocytes and $Foxp3^+T$ cells in patients with HCC. Methods: $CD8^+T$ cells and $CD3^+Foxp3^+T$ cells were tested from peripheral blood of HCC patients and normal controls and subjected to multicolor flow cytometry. The expression of an apoptosis marker (annexin V) and the death receptor Fas in $CD8^+T$ cells and FasL in $CD3^+Foxp3^+T$ cells were evaluated. Serum TGF-${\beta}1$ levels in patients with HCC were measured by enzyme-linked immunosorbent assay. The relationship between apoptosis and Fas expression, as well as FasL expression in $CD3^+Foxp3^+T$ cells was then evaluated. Results: The frequency of $CD8^+T$ cells binding annexin V and Fas expression in $CD8^+T$ cells, were all higher in HCC patients than normal controls and the proportion of apoptotic $CD8^+T$ cells correlated with their Fas expression. Serum TGF-${\beta}1$ levels correlated inversely with $CD3^+Foxp3^+T$ cells. Conclusions: Fas/FasL interactions might lead to excessive turnover of $CD8^+T$ cells and reduce anti-tumor immune responses in patients with HCC. Further investigations of apoptosis induction in $Fas^+CD8^+T$ cells in vitro are required.
Kim, Min Ki;Lee, Ara;Hwang, Yu Kyeong;Kang, Chang-Yuil;Ha, Sang-Jun
IMMUNE NETWORK
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제14권4호
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pp.207-218
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2014
Chronic virus infection leads to the functional impairment of dendritic cells (DCs) as well as T cells, limiting the clinical usefulness of DC-based therapeutic vaccine against chronic virus infection. Meanwhile, B cells have been known to maintain the ability to differentiate plasma cells producing antibodies even during chronic virus infection. Previously, ${\alpha}$-galactosylceramide (${\alpha}GC$) and cognate peptide-loaded B cells were comparable to DCs in priming peptide-specific $CD8^+$ T cells as antigen presenting cells (APCs). Here, we investigated whether B cells activated by ${\alpha}GC$ can improve virus-specific T cell immune responses instead of DCs during chronic virus infection. We found that comparable to B cells isolated from naïve mice, chronic B cells isolated from chronically infected mice with lymphocytic choriomeningitis virus (LCMV) clone 13 (CL13) after ${\alpha}GC$-loading could activate CD1d-restricted invariant natural killer T (iNKT) cells to produce effector cytokines and upregulate co-stimulatory molecules in both naïve and chronically infected mice. Similar to naïve B cells, chronic B cells efficiently primed LCMV glycoprotein (GP) 33-41-specific P14 $CD8^+$ T cells in vivo, thereby allowing the proliferation of functional $CD8^+$ T cells. Importantly, when ${\alpha}GC$ and cognate epitope-loaded chronic B cells were transferred into chronically infected mice, the mice showed a significant increase in the population of epitope-specific $CD8^+$ T cells and the accelerated control of viremia. Therefore, our studies demonstrate that reciprocal activation between ${\alpha}GC$-loaded chronic B cells and iNKT cells can strengthen virus-specific T cell immune responses, providing an effective regimen of autologous B cell-based therapeutic vaccine to treat chronic virus infection.
Although there are many reports on the splenic (systemic) T cell response after Toxoptasma gondii infection, little information is available regarding the local T cell responses of peritoneal exudate cells (PEC) and gut intraepithelial Iymphocytes (IEL) following peroral infection with bradyzoites. Mice were infected with 40 cysts of the 76K strain of T. gondii, and then sacrificed at days 0, 1, 4, 7 and 10 postinfection (PI). The cellular composition and T cell responses of PEC and IEL were analyzed. The total number of PEC and IEL per mouse increased after infection, but the ratio of increase was higher in IEL. Lymphocytes were the major component of both PEC and IEL. The relative percentages of PEC macrophages and neutrophils/eosinophils increased signiflcantly at day 1 and 4 PI, whereas those of IEL did not change significantly. The percentage of PEC NK1.1 and ${\gamma\delta}T$ cells peaked at day 4 PI (p < 0.0001), and CD4 and $CD8{\alpha}T$ cells increased continuously after infection. The percentages of IEL $CD8{\alpha}$ and ${\gamma\delta}T$ cells decreased slightly at first, and then increased. CD4 and NK1.1 T cells of IEL did not change significantly after infection. $IFN-{\gamma}-producing$ PEC NK1.1 T cells increased significantly from day 1 PI, but the other T cell subsets produced $IFN-{\gamma}$ abundantly thereafter. The proportion of IEL $IFN-{\gamma}-producing$$CD8{\alpha}$ and ${\gamma\delta}T$ cells increased significantly after infection, while IEL NK1.1 T cells had similar $IFN-{\gamma}$ production patterns. Taken together, CD4 T cells were the major phenotype and the important $IFN-{\gamma}$ producing T cell subsets in PEC after oral infection with T. gondii whereas $CD8{\alpha}T$ cells had these roles in IEL. These results suggest that PEC and IEL comprise different cell differentials and T cell responses, and according to infection route these factors may contribute to the different cellular immune responses.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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