Early-onset epileptic encephalopathies are one of the most severe early onset epilepsies that can lead to progressive psychomotor impairment. These syndromes result from identifiable primary causes, such as structural, neurodegenerative, metabolic, or genetic defects, and an increasing number of novel genetic causes continue to be uncovered. A typical diagnostic approach includes documentation of anamnesis, determination of seizure semiology, electroencephalography, and neuroimaging. If primary biochemical investigations exclude precipitating conditions, a trial with the administration of a vitaminic compound (pyridoxine, pyridoxal-5-phosphate, or folinic acid) can then be initiated regardless of presumptive seizure causes. Patients with unclear etiologies should be considered for a further workup, which should include an evaluation for inherited metabolic defects and genetic analyses. Targeted next-generation sequencing panels showed a high diagnostic yield in patients with epileptic encephalopathy. Mutations associated with the emergence of epileptic encephalopathies can be identified in a targeted fashion by sequencing the most likely candidate genes. Next-generation sequencing technologies offer hope to a large number of patients with cryptogenic encephalopathies and will eventually lead to new therapeutic strategies and more favorable long-term outcomes.
Malformations of cortical development (MCD) cover a broad spectrum of developmental disorders which cause the various clinical manifestations including epilepsy, developmental delay, and intellectual disability. MCD have been clinically classified based on the disruption of developmental processes such as proliferation, migration, and organization. Molecular genetic studies of MCD have improved our understanding of these disorders at a molecular level beyond the clinical classification. These recent advances are resulted from the development of massive parallel sequencing technology, also known as next-generation sequencing (NGS), which has allowed researchers to uncover novel molecular genetic pathways associated with inherited or de novo mutations. Although an increasing number of disease-related genes or genetic variations have been identified, genotype-phenotype correlation is hampered when the biological or pathological functions of identified genetic variations are not fully understood. To elucidate the causality of genetic variations, in vivo disease models that reflect these variations are required. In the current review, we review the use of NGS technology to identify genes involved in MCD, and discuss how the functions of these identified genes can be validated through in vivo disease modeling.
With the development of next-generation sequencing (NGS), a cutting-edge technology, genotype-by-sequencing (GBS) became available at a low cost per sample. GBS makes it possible to customize the process of library preparation to obtain high-quality single nucleotide polymorphisms (SNPs) in the most efficient way. However, a GBS library is hard to construct due to fine-tuning of concentration of each reagent and set-up. The major reason for this is the presence of undigested genomic DNA (gDNA) owing to the efficiency of different restriction enzymes for different species with unknown reasons. Therefore, this proof-concept study is to demonstrate the unpredictable patterns of enzyme digestion from various plants in order to make the reader aware of the caution needed when choosing restriction enzymes for their GBS library preparations. Indeed, no pattern was found for the digestibility of gDNA samples and restriction enzymes in the current study. We suggest that more data should be accumulated on this matter to help researchers who want to apply GBS technologies in a variety of genetic approaches.
Na, Hee Sam;Yu, Yeuni;Kim, Si Yeong;Lee, Jae-Hyung;Chung, Jin
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.48
no.4
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pp.574-581
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2020
Next generation sequencing is commonly used to characterize the microbiome structure. MiSeq is commonly used to analyze the microbiome due to its relatively long read length. However, recently, Illumina introduced the 250x2 chip for HiSeq 2500. The purpose of this study was to compare the performance of MiSeq and HiSeq in the context of oral microbiome samples. The MiSeq Reagent Kit V3 and the HiSeq Rapid SBS Kit V2 were used for MiSeq and HiSeq 2500 analyses, respectively. Total read count, read quality score, relative bacterial abundance, community diversity, and relative abundance correlation were analyzed. HiSeq produced significantly more read sequences and assigned taxa compared to MiSeq. Conversely, community diversity was similar in the context of MiSeq and HiSeq. However, depending on the relative abundance, the correlation between the two platforms differed. The correlation between HiSeq and MiSeq sequencing data for highly abundant taxa (> 2%), low abundant taxa (2-0.2%), and rare taxa (0.2% >) was 0.994, 0.860, and 0.416, respectively. Therefore, HiSeq 2500 may also be compatible for microbiome studies. Importantly, the HiSeq platform may allow a high-resolution massive parallel sequencing for the detection of rare taxa.
Park, Sehhoon;Lee, Chung;Ku, Bo Mi;Kim, Minjae;Park, Woong-Yang;Kim, Nayoung K.D.;Ahn, Myung-Ju
BMB Reports
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v.54
no.7
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pp.386-391
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2021
Owing to rapid advancements in NGS (next generation sequencing), genomic alteration is now considered an essential predictive biomarkers that impact the treatment decision in many cases of cancer. Among the various predictive biomarkers, tumor mutation burden (TMB) was identified by NGS and was considered to be useful in predicting a clinical response in cancer cases treated by immunotherapy. In this study, we directly compared the lab-developed-test (LDT) results by target sequencing panel, K-MASTER panel v3.0 and whole-exome sequencing (WES) to evaluate the concordance of TMB. As an initial step, the reference materials (n = 3) with known TMB status were used as an exploratory test. To validate and evaluate TMB, we used one hundred samples that were acquired from surgically resected tissues of non-small cell lung cancer (NSCLC) patients. The TMB of each sample was tested by using both LDT and WES methods, which extracted the DNA from samples at the same time. In addition, we evaluated the impact of capture region, which might lead to different values of TMB; the evaluation of capture region was based on the size of NGS and target sequencing panels. In this pilot study, TMB was evaluated by LDT and WES by using duplicated reference samples; the results of TMB showed high concordance rate (R2 = 0.887). This was also reflected in clinical samples (n = 100), which showed R2 of 0.71. The difference between the coding sequence ratio (3.49%) and the ratio of mutations (4.8%) indicated that the LDT panel identified a relatively higher number of mutations. It was feasible to calculate TMB with LDT panel, which can be useful in clinical practice. Furthermore, a customized approach must be developed for calculating TMB, which differs according to cancer types and specific clinical settings.
Choi, Sungmi;Shin, Su-Kyoung;Jeong, Gilsang;Yi, Hana
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.9
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pp.1410-1416
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2015
Wolbachia is an obligate symbiotic bacteria that is ubiquitous in arthropods, with 25-70% of insect species estimated to be infected. Wolbachia species can interact with their insect hosts in a mutualistic or parasitic manner. Sequence types (ST) of Wolbachia are determined by multilocus sequence typing (MLST) of housekeeping genes. However, there are some limitations to MLST with respect to the generation of clone libraries and the Sanger sequencing method when a host is infected with multiple STs of Wolbachia. To assess the feasibility of massive parallel sequencing, also known as next-generation sequencing, we used pyrosequencing for sequence typing of Wolbachia in butterflies. We collected three species of butterflies (Eurema hecabe, Eurema laeta, and Tongeia fischeri) common to Korea and screened them for Wolbachia STs. We found that T. fischeri was infected with a single ST of Wolbachia, ST41. In contrast, E. hecabe and E. laeta were each infected with two STs of Wolbachia, ST41 and ST40. Our results clearly demonstrate that pyrosequencing-based MLST has a higher sensitivity than cloning and Sanger sequencing methods for the detection of minor alleles. Considering the high prevalence of infection with multiple Wolbachia STs, next-generation sequencing with improved analysis would assist with scaling up approaches to Wolbachia MLST.
Microbial pathogens are responsible for most of the rapidly-spreading deadly infectious diseases against humans. Thus, there is an urgent need for efficient and rapid detection methods for infectious microorganisms. The detection methods should not only be targeted and specific, but they have to be encompassing of potential changes of the pathogen as it evolves and mutates quickly during an epidemic or pandemic. The existing diagnostics such as the antibody-based ELISA immunoassay and PCR methods are too selective and narrowly focused; they are insufficient to capture newly evolved mutant strains of the pathogen. Here, we introduce a fresh perspective on some new technologies, including aptamers and next generation sequencing for pathogen detection. These technologies are not in their infancy; they are reasonably mature and ready, and they hold great promise for unparalleled applications in pathogen detection.
In recent years, genomic resources and information have accumulated at an ever increasing pace, in many plant species, through whole genome sequencing, large scale analysis of transcriptomes, DNA markers and functional studies of individual genes. Well-characterized species within key plant taxa, co-called "model systems", have played a pivotal role in nucleating the accumulation of genomic information and databases, thereby providing the basis for comparative genomic studies. In addition, recent advances to "Next Generation" sequencing technologies have propelled a new wave of genomics, enabling rapid, low cost analysis of numerous genomes, and the accumulation of genetic diversity data for large numbers of accessions within individual species. The resulting wealth of genomic information provides an opportunity to discern evolutionary processes that have impacted genome structure and the function of genes, using the tools of comparative analysis. Comparative genomics provides a platform to translate information from model species to crops, and to relate knowledge of genome function among crop species. Ultimately, the resulting knowledge will accelerate the development of more efficient breeding strategies through the identification of trait-associated orthologous genes and next generation functional gene-based markers.
Hye Sook Jeon;Min Seock Do;Jung A Kim;Yoonjee Hong;Chae Eun Lim;Jae-Hwa Suh;Junghwa An
Journal of Species Research
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v.13
no.2
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pp.127-130
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2024
The first complete mitogenome sequence of the Red-tongue Pit Viper (Gloydius ussuriensis) from Korea was characterized using next-generation sequencing. The mitogenome is a circular molecule (17,209 bp) with a typical vertebrate mitogenome arrangement, which consists of 2 ribosomal RNA genes (rRNA), 22 transfer RNA genes (tRNA), two non-coding regions (D-loop), and 13 protein-coding genes (PCGs). The base composition of the mitogenome is 32.7% of A, 27.5% of C, 13.9% of G, and 25.9% of T, with a slight AT bias(58.6%). This phylogenetic analysis infers that G. ussuriensis is in the same group as the Chinese G. ussuriensis (Accession No. KP262412) and is closely related to G. blomhoffi and other species of the genus Gloydius. In our study, the complete mitogenome sequence of Korean G. ussuriensis was characterized and we provided basic genetic information on this species.
Nanopore DNA sequencing is an emerging and promising technique that can potentially realize the goal of a low-cost and high-throughput method for analyzing human genome. Especially, solid-state nanopores have relatively high mechanical stability, simple surface modification, and facile fabrication process without the need for labeling or amplification of PCR (polymerized chain reaction) in DNA sequencing. For these advantages of solid-sate nanopores, the use of solid-state nanopores has been extensively considered for developing a next generation DNA sequencing technology. Solid-state nanopore sequencing technique can determine and count charged molecules such as single-stranded DNA, double-stranded DNA, or RNA when they are driven to pass through a membrane nanopore between two electrolytes of cis-trans chambers with applied bias voltage by measuring the ionic current which varies due to the existence of the charged particles in the nanopore. Recently, many researchers have suggested that nanopore-based sensors can be competitive with other third-generation DNA sequencing technologies, and may be able to rapidly and reliably sequence the human genome for under $1,000.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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