We tested effects of bioactive lysophospholipids including lysophosphatidic acid (LPA), lysophosphatidylcholine (LPC), sphingosylphosphorylcholine (SPC), and sphingosine I-phosphate (S1P) on membrane potential in C6 glioma cells to understand action mechanism of the lysophospholipids. Membrane potential was estimated by measuring fluorescence change of DiBAC-loaded glioma cells. LPA largely increased membrane potential and the increase was gradually diminished. LPC also increased the membrane potential, however, the increase sustained. SPC induced smaller increase of membrane potential than LPC. SIP was not able to change the membrane potential. We tested effects of suramin and pertussis toxin on lysophospholipid-induced membrane potential increase. However, there wasn't any effect. The membrane potential increase was partially diminished in $Na^+$-free media, suggesting $Na^+$ influx as a component of membrane potential changes. Thus, involvement of $Na^+$ influx in the increase of membrane potential by lysophospholipids and independence of suramin-sensitive GPCRs and pertussis toxin-sensitive G proteins are found in this study.
Ha, Byung-Jhip;Kim, Suk-Joon;Park, Ji-Sook;Yoo, Ree-Ann;Lee, Dong-Eok;Yoo, Ook-Joon;Woo, Koo;Kim, Hyun-Su;Oh, Myung-Suk
BMB Reports
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v.30
no.5
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pp.315-319
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1997
It was discovered that monoclonal anti-erythropoietin (EPO) antibody CFC-6 can neutralize EPO-induced cell activation. To know the binding site of CFC-6, recombinant human erythropoietin (rhEPO) was digested with Glu-C, followed by a separation using high performance liquid chromato graphy (HPLC). Each HPLC fraction was blotted on the nitrocellulose membrane and the membrane was treated with anti-EPO antibody CFC-6 and anti-mouse antibody which is modified with peroxidase. Only one spot showed the color and the fraction was sequenced by Edman degradation. The results suggest that CFC-6 recognizes amino acid sequence V63-W-Q-G-L-A-L-L-S-E72 which is a part of helix II of the EPO molecule. Binding of CFC-6 to EPO may inhibit EPO binding to its receptor, which implies that the antibody binding site and the receptor binding site are close or overlapping.
Martinec, Jan;Feltl, Tomas;Nokhrina, Katerina;Zazimalova, Eva;Machackova, Ivana
Korean Journal of Plant Tissue Culture
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v.27
no.5
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pp.375-377
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2000
It is now generally accepted that a phosphoinositide cycle is involved in the transduction of a variety of signals in plant cells. In animal cells, the hydrolysis of phosphatidyl-4,5-bisphosphate catalysed by phosphatidylinositol - specific phospholipase C yields to D-myo-inositol - 1,4,5-trisphosphate and diacylglycerol, which are well known second messengers. The binding of InsP$_3$to a receptor located on the endoplasmic reticulum triggers a calcium release from the endoplasmic reticulum. We have detected and partially characterised key components of phosphoinositide signaling. First, tobacco microsomal fraction and plasma membrane PI-PLC. Consecutively, using a radioligand binding assay we have identified a $Ca^{2+}$ -dependent high affinity InsP$_3$binding site in microsomal membrane fraction vesicle preparation and then we have measured inositol-1,4,5-trisphosphate induced calcium release from tobacco microsomal fraction. These findings suggest that phosphoinositide signaling system is present and operates in the tobacco suspension culture.e.
Plant genome analyses, including Arabidopsis thaliana showed a large gene family of plant receptor kinases with various extracellular ligand-binding domain. Now intensively studies to understand physiological and cellular functions for higher plant receptor kinases in diverse and complex biological processes including plant growth, development, ligands perception including steroid hormone and plant-microbe interactions. Brassinosteroids (BRs) as a one of well know steroid hormone are plant growth hormones that control biomass accumulation and also tolerance to many biotic and abiotic stress conditions and hence are of relevance to agriculture. BRI1 receptor kinase, which is localized in plasma membrane in the cell sense BRs and it bind to a receptor protein known as BRASSINOSTEROID INSENSITIVE 1 (BRI1). Recently, we reported that BRI1 and its co-receptor, BRI1-ASSOCIATED KINASE (BAK1) autophosphorylated on tyrosine residue (s) in vitro and in vivo and thus are dual-specificity kinases. Other plant receptor kinases are also phosphorylated on tyrosine residue (s). Post-translational modifications (PTMs) can be studied by altering the residue modified by directed mutagenesis to mimic the modified state or to prevent the modification. These approaches are useful to not only characterize the regulatory role of a given modification, but may also provide opportunities for plant improvement.
Several lines of evidence indicate that physiological activity of N-methyl-D-aspartate (NMDA) receptor was blocked by physiological concentration of $Mg^{2+}$ (1.2 mM). However, the activity of NMDA receptor may not be blocked totally with this concentration of $Mg^{2+}$ under elevated membrane potential by kainate. Here, we described the effect of $Mg^{2+}$ on NMDA receptor and how much of NMDA receptor functions could be activated by kainate. Effects of NMDA receptor antagonist on kainate-induced elevation of intracellualr $Ca^{2+}$ levels $([Ca^{2+}]_i)$ and extracellular glutamate level were examined in cultured rat cerebellar granule neurons. kainate-induced elevation of $([Ca^{2+}]_i)$ was not affected by physiological concentration of $Mg^{2+}$. Kainate-induced NMDA-induced elevation was blocked by the same concentration of $MG^{2+}$Kainate-induced elevation of [$([Ca^{2+}]_i)$ was decreased by 32% in the presence of NMDA antagonists, MK-801 and CPP (3-[2-carboxypiperazine-4-yl]propyl-1-phosphonic acid), in $Mg^{2+}$ free buffer. Kainate receptor-activated gluamate release was also decreased (30%) by MK-801 or CPP. These resuts show that certain extent of elevations of intracellular $Ca^{2+}$ and extracellular glutamate by kainate is due to coativation of NMDA receptors.
Glutamate receptors are important components of synaptic transmission in the nervous system. Especially, ${\alpha}$-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazole propionic acid (AMPA) receptors mediate most abundant excitatory synaptic transmission in the brain. There is elaborate mechanism of regulation of AMPA receptors including protein synthesis/degradation, intracellular trafficking, exocytosis/endocytosis and protein modification. In recent studies, it is revealed that functional dysregulation of AMPA receptors are related to major psychiatric disorders. In this review, we describe the structure and function of AMPA receptors in the synapse. We will introduce three steps of mechanism involving trafficking of AMPA receptors to neuronal membrane, lateral diffusion into synapses and synaptic retention by membrane proteins and postsynaptic scaffold proteins. Lastly, we will describe recent studies showing that regulation of AMPA receptors is important pathophysiological mechanism in psychiatric disorders.
Transport study of horseradish peroxidase and transferrin-horseradish peroxidase conjugate was performed using an in vitro Caco-2 cell cultured monolayer grown on a polycarbonate membrane of $Transwell^{\circledR}$, Horseradish peroxidase was not transported across Caco-2 cell monolayer. Transferrin-horseradish peroxidase conjugate was transported through Caco-2 cell monolayer. The apparent membrane permeability coefficient $(P_{app})$ of transferrin horseradish peroxidase conjugate was $6.54{\times}10^{-7}\;cm/sec$. The $P_{app}$ value of transferrin-horseradish peroxidase conjugate across Caco-2 cell monolayer was increased to $11.9{\times}10^{-7}\;cm/sec$ in the presence of $50\;{mu}g/ml$ brefeldin-A. These results suggest the transferrin receptor mediated transcytosis of transferrin-horseradish peroxidase conjugate across Caco-2 cell monolayer.
Nitric Oxide (NO) is an important signaling molecule in the nociceptive process. Our previous study suggested that high concentrations of sodium nitroprusside (SNP), a NO donor, induce a membrane hyperpolarization and outward current through large conductances calcium-activated potassium ($BK_{ca}$) channels in substantia gelatinosa (SG) neurons. In this study, patch clamp recording in spinal slices was used to investigate the sources of $Ca^{2+}$ that induces $Ca^{2+}$-activated potassium currents. Application of SNP induced a membrane hyperpolarization, which was significantly inhibited by hemoglobin and 2-(4-carboxyphenyl) -4,4,5,5-tetramethylimidazoline-1-oxyl-3-oxide potassium salt (c-PTIO), NO scavengers. SNP-induced hyperpolarization was decreased in the presence of charybdotoxin, a selective $BK_{Ca}$ channel blocker. In addition, SNP-induced response was significantly blocked by pretreatment of thapsigargin which can remove $Ca^{2+}$ in endoplasmic reticulum, and decreased by pretreatment of dentrolene, a ryanodine receptors (RyR) blocker. These data suggested that NO induces a membrane hyperpolarization through $BK_{ca}$ channels, which are activated by intracellular $Ca^{2+}$ increase via activation of RyR of $Ca^{2+}$ stores.
To analyze vasopressin-induced $Ca^{2+}$ increase in liver cells, rat hepatocytes were isolated and attached to collagen-coated cover slips. Using fura-2, a $Ca^{2+}$-sensing dye, changes in intracellular $Ca^{2+}$ concentration by vasopressin were monitored. Results in this communication suggested that vasopressin-induced $Ca^{2+}$ increase were composed of both $Ca^{2+}$ release from internal $Ca^{2+}$ stores and influx from the plasma membrane. The $Ca^{2+}$ influx consisted of two distinguishable components. One was dependent on the presence of vasopressin and the other was not. SK&F96365 blocked vasopressin-induced $Ca^{2+}$ influx in a dose-dependent manner. Vasopressin-induced $Ca^{2+}$ release from internal stores diminished in a primary culture of hepatocytes according to the culture time. However, changes in vasopressin-induced $Ca^{2+}$ influx across the plasma membrane differed from changes in the $Ca^{2+}$ release from internal stores, suggesting two separate signalings from receptor activation to internal stores and to the plasma membrane.
Increased intracellular levels of $Ca^{2+}$ are generally thought to negatively regulate lipolysis in mature adipocytes, whereas store-operated $Ca^{2+}$ entry was recently reported to facilitate lipolysis and attenuate lipotoxicity by inducing lipophagy. Transient receptor potential mucolipin1 (TRPML1), a $Ca^{2+}$-permeable non-selective cation channel, is mainly expressed on the lysosomal membrane and plays key roles in lysosomal homeostasis and membrane trafficking. However, the roles of TRPML1 in lipolysis remains unclear. In this study, we examined whether the channel function of TRPML1 induces lipolysis in mature adipocytes. We found that treatment of mature adipocytes with ML-SA1, a specific agonist of TRPML1, solely upregulated extracellular glycerol release, but not to the same extent as isoproterenol. In addition, knockdown of TRPML1 in mature adipocytes significantly reduced autophagic flux, regardless of ML-SA1 treatment. Our findings demonstrate that the channel function of TRPML1 partially contributes to lipid metabolism and autophagic membrane trafficking, suggesting that TRPML1, particularly the channel function of TRPML1, is as therapeutic target molecule for treating obesity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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