This study presents a method validation for extraction and quantitative analysis of trichothecene mycotoxins in nuts based on quick, easy, cheap, effective, rugged, and safe (QuEChERS) approach for extraction and enhanced matrix removal (EMR)-lipid-disperive-SPE (d-SPE) cleanup method, with detection and quantification by high-performance liquid chromatography coupled with tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) in positive- and negative-ion modes. Linearity, precision, and accuracy were validated for LC-MS/MS methods. Results obtained with LC-MS/MS were linear, with correlation coefficient ($R^2$) of 0.998. Limits of detection and quantification for mycotoxins were $0.41-3.57{\mu}g/kg$ and $1.23-10.82{\mu}g/kg$, respectively. Intra- and inter-day precisions (RSD, %) were 0.40-8.44% and 1.93-12.46%, respectively. Results indicated to be rapidly and accurately identifying trichothecene mycotoxins and may be used as a suitable safety management method for nuts and nuts related commodities.
This study was carried out to confirm analytical method of residual macrolides in livestock products by LC/MS. 1. Macrolides were analyzed by LC/MS on XTerra C$\sub$18/ column with 0.1% TFA(trifluoroacetic acid)-methanol in a gradient mode as mobile phase, and that were identified by positive chemical ionization with selective ion monitoring at 50~1000 mass range. 2. Residual macrolides were extracted from tissue with acetonitrile, and the extract is purified with a Sep-pak C$\sub$18/ cartridge, and elute macrolides with 0.1M methanolic ammonium acetate. 3. The procedure confirms the presence of each macrolide at 50$\mu\textrm{g}$/kg in spiked sample.
Kim, Kyeong-Yeol;Nam, Min-Ji;Nam, Bo-Ram;Ryu, Hee-Jung;Song, Jeong-Eon;Shim, Won-Bo;Lee, Soo-Hyung;Chung, Duck-Hwa
Journal of Environmental Health Sciences
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v.36
no.1
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pp.52-60
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2010
High performance liquid chromatography (HPLC) and liquid chromatography mass spectrometry (LC/MS) have been widely used to quantify aflatoxins in food, but these methods are expensive, time-consuming, unsuitable for analysis of the routine screening of large sample numbers and require derivatization and high level techniques to perform. The objective of this study is to detect aflatoxins in a large number of foods by a high efficient analytical system of combined enzyme linked immunosorbent assay (ELISA) for screening and LC/MS/MS for confirmation. The samples spiked individually with aflatoxin $B_1$ (0.5 and 1.0 ng/g) and total aflatoxins (10 ng/g) were analyzed by ELISA and LC/MS/ MS, and the recoveries for ELISA and LC/MS/MS were 71.8~119.2% and 70.8~135.3%, respectively. A total of 378 samples (grains, nuts, soybean and fermented soybean foods, pepper and fermented pepper foods) were purchased from the six major cities in Korea and analyzed by ELISA-LC/MS/MS system. Twenty two (5.8%; peanut: 11, pistachio: 2, walnut: 6, almond: 1, pepper powder: 1, pepper paste: 1) out of 378 samples were screened as aflatoxin B1 positive by ELISA, but, 4 (1.1%; peanut: 2, pistachio:1, pepper powder: 1) out of the 22 samples screened were confirmed as aflatoxins positive at levels of 1.02~52.79 ng/g by LC/MS/MS. ELISA-LC/MS/MS system provides a more rapid, accurate and cost-effective method for the detection of aflatoxins in large number of samples.
This study aimed to develop analytical method for 8-isoprostanes as biomarkers for oxidative stress with LC/MS/MS technique and to apply the method for human urine samples. Analyzed compounds for urinary oxidative stress markers were 7 stereo-isomers of prostaglandins and the internal standard (iso-$PGF_{2{\alpha}}-d_4$) was used to adjust the recovery rate. The method for determining urinary iso-$PGF_{2{\alpha}}$ consisted of solid phase extraction and LC/MS/MS detection. Separation of isomers of prostaglandins completed by porous graphitic carbon column and buffer solution. Detection limits for urinary markers of oxidative stress, iso-$PGF_{2{\alpha}}$ with LC/MS/MS were 0.01 ng/ml by S/N ratio 3 and 0.028 ng/ml by calculated as to FDA method. The recovery (92.8~101.9%) and precision (8.8~20.7%) of analysis were feasible for detecting iso-$PGF_{2{\alpha}}$ in real human urine samples. We detected 4 isomers of prostaglandins in human urine samples. Mean (standard deviation) of urinary iso-$PGF_{2{\alpha}}$ concentration were 0.231 (0.117) ng/mg creatinine for smoking group and 0.154 (0.082) ng/mg creatinine for non-smoking group.
Kim, So-Hee;Yoo, Hye Hyun;Cha, Eun-Ju;Jeong, Eun Sook;Kim, Ho Jun;Kim, Dong Hyun;Lee, Jaeick
Mass Spectrometry Letters
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v.4
no.3
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pp.47-50
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2013
An ultra-fast generic LC-MS/MS method was developed for high-throughput quantification of discovery pharmacokinetic (PK) samples and its reliability was verified. The method involves a simple protein precipitation for sample preparation and the analysis by ultra-fast generic LC-MS/MS with the ballistic gradient program and selected reaction monitoring (SRM) mode. Approximately 290 new chemical entities (NCEs) (over 10,000 samples) from 5 therapeutic programs were analyzed. The calibration curves showed good linearity in the concentration range of 1, 2 or 5 to 2000 ng/mL. No significant ion suppression was observed in the elution region of all the NCEs. When approximately 300 plasma samples were continuously analyzed, the peak area of internal standard was constant and reproducible. In the repeated analysis of samples, the plasma concentrations and the area under the curve (AUC) were consistent with the results from the first analysis. These results showed that the present ultra-fast generic LC-MS/MS method is reliable in terms of selectivity, sensitivity, and reproducibility and could be useful for high-throughput quantification and other bioanalysis in drug discovery.
Park, Boreum;Lee, Sun Hee;Eom, Kwonyong;Noh, Eunyoung;Moon Han, Kyoung;Hwang, Jinwoo;Kim, Hyungil;Baek, Sun Young
Journal of Food Hygiene and Safety
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v.37
no.2
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pp.46-54
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2022
Known for its effectiveness in weight loss and diabetes prevention, Gymnema sylvestre products can be found in the US, Japanese, and Indian markets. However, the recommended dosage or safety of these products has not yet been proven. Therefore, development of an analytical method for detecting the content of Gymnema sylvestre in food products is required. Accordingly, this study proposes an analysis method that can examine Gymnema sylvestre in food using LC-ESI-MS/MS and KASP (Kompetitive Allele-Specific PCR) markers. In LC-ESI-MS/MS, a simultaneous analysis method for gymnemic acid and deacylgymnemic acid was optimized using negative ionization mode, and its validation test was completed for solid and liquid samples. In addition, KASP markers were prepared by finding the specific SNP of G. sylvestre in ITS2 and matK through DNA barcodes. The two KASP markers returned positive FAM fluorescence result when combined with G. sylvestre, and this aspect was confirmed in raw G. sylvestre as well. The applicability of the method was tested on 21 different food and healthy functional products containing G. sylvestre purchased on the internet. As a result, although there was a difference in the ratios of gymnemic acid and deacylgymnemic acid in LC-ESI-MS/MS, the index component was detected in all 21 products samples. In the KASP analysis, 9 products returned positive FAM result, and the rest of the products were found to be containing G. sylvestre extract. This study is the first study to use the dual system of LC-ESI-MS/MS and KASP for the analysis of G. sylvestre. The study has confirmed that these two methods are applicable to the examine G. sylvestre content in food products.
A sensitive and easy high performance liquid chromatograph (HPLC) / electrospray ionization (ESI)-mass spectrometric (MS) method has been developed for the quantitative and qualitative analyses of acarbose and its metabolites. After plasma samples were simply filtered with a syringe filter, the filtered plasma was analyzed by LC/MS. The standard calibration curve for acarbose was linear ($r^2=0.9963$) over the concentration range $0.1{\sim}10{\mu}g/m{\ell}$ in plasma. The metabolite component-I and II, which were metabolized by the ${\alpha}$-amylase and ${\beta}$-amylase, were found also by in vitro incubation. The developed method can be utilized to study acarbose and the other carbohydrates.
Liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) method has been developed and validated for the quantitative determination of lercanidipine in human plasma. After addition of internal standard (amlodipine), plasma was precipitated with acetonitrile and the supernatant was evaporated. The residues were dissolved in 50 % acetonitrile and analyzed by LC-MS/MS. Using MS/MS with multiple reaction monitoring(MRM) mode, lercanindipine were selectively detected without severe interference from human plasma. The standard calibration curve for lercanidipine was linear (r = 0.9994) over the concentration range 0.05-20.0 ng/mL in human plasma. The intra- and inter-day precision over the concentration range of lercanidipine was lower than 11.7 % (correlation of variance, CV), and accuracy was between 94.4-114.8 %. This method has been successfully applied to the pharmacokinetic study of lercanidipine in human plasma.
Streptomycin, which is one of aminoglycoside antibiotics, has been widely used in the rearing of food-producing animals to prevent and treat diseases in cattle, pigs and poultry. Although not licensed in South Korea, streptomycin has also been used for the treatment of bacterial honeybee disease, such as European foulbrood in Third World countries. A reliable and effective method using liquid chromatography-tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) was developed for the determination of streptomycin in honey. A established method was optimized the clean-up and extraction procedure for the trace determination, good precision and accuracy. And the chromatographic and tandem mass spectrometric parameters were also optimized. The precision (RSD) and accuracy (bias) in the concentration range of 5.0~50.0 ug/kg were 5.5~14% and -10.0~8.0%, respectively. Limit of detection was 0.75 ug/kg and recovery of streptomycin spiked at level of 10 ug/kg in honey was 74%. The established and validated method was applied to determine streptomycin in honey which was on the market.
Recently, mass spectrometry coupled with liquid chromatography (LC/MS) has been a preferred technique for determination of organic compounds in complex matrixes. LC/MS provides a high degree sensitivity and specificity of the compounds of interest. The purpose of this study was to confirm analytical method of residual 6 benzimidazoles (thiabendazole, oxfendazole, mebendazole, albendazole, flubendazole and fenbendazole) in meat by LC/MS. Benzimidazoles were analyzed by LC/MS on XTerra $C_{18}$ column with 0.01% trifluoroacetic acid-acetonitrile (TFA) in a gradient mode as mobile phase, and that were identified by electrospray ionization with selected ion recording mode at 150-350 amu mass range. Residual benzimidazoles were extracted from tissue with ethylacetate, and elute benzimidazoles with $50\%$ acetonitrile. In the LC/MS analysis of benzimidazoles, signal to noise ratio was showed relatively high in the positive mode and special ion in the quality analysis was determined via $[M+H]^+$ and Fragment ions. A spectrum of benzimidazoles was showed from all 6 benzimidazoles
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[게시일 2004년 10월 1일]
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