Using recombinant Vaccinia virus(vSC8) that express ${\beta}$-galactosidase, a model heterologous protein, conditions for virus and protein production were investigated in tissue culture flask. As host animal cells HeLa and HeLa S3 were used. It was demonstrated that cells infected during the exponential growth phase gave higher protein yield than those infected during the stationary growth phase and calf serum concentration after virus infection did not significantly alter protein yield. Pretreatment of cell layer with hypotonic solution enhanced the virus infectivity. Optimum cell growth and recombinant protein production was achieved at $37^{\circ}C$. But, during 2 hours of virus infection period incubation temperature must be lowered to 20∼$30^{\circ}C$ for maximum recombinant protein yield. To enhance virus replication, the effects of adrenal glucocorticoid hormone (Dexamethasone) and silkworm hemolymph were evaluated. Only dexamethasone increased about 20% of ${\beta}$-galactosidase yield in HeLa S3 cells when added with 10-7∼10-5M concentration 24 hours before infection.
Sporulation mutants of Bacillus subtilis were developed for overproduction of heterologous proteins. The strains spoOJ spoIIG, and spoOJ spoIIG double mutant were constructed from two pretense-delfted mutant (DB104). The vector containing aprE gene was integrated in the chromosome of each strain, then the morphology of each strain was observed by TEM (trasmission electron microscopy). The morphology of spoOJ mutant and spoIIG mutant coincides with the description of the previous reports, respectively. The sporulating cells of spoOJ SpoIIG double mutation resemble spoIIG mutant more similarly, but with a little rougher cell wall membrane. The spoOJ mutation in B. subtilis gives negative effect on aprE activity with only a decreased sporulation frequency. On the contrary spoIIG mutation increases the aprE activity twice with an undetectable sporulation frequency. In the case of spoOJ and spolIG, i. e. double mutation, the effect of spoOJ on aprE activity seems to be relieved and the double mutant shows more or less the same aprE activity compared to spoIIG mutant.
One of the major drawbacks associated with the high-level expression of the recombinant proteins in Escherichia coli is the formation of insoluble inclusion bodies in the cytoplasm. Production of recombinant protein at reduced temperature has proven effective in improving the solubility of a number of structurally and functionally unrelated proteins, but a major limitation of using low temperatures for recombinant protein production in E. coli is the reduced rate of synthesis of the heterologous protein caused by the significant reduction of cell growth rate. Here we investigated the effect of co-expression of CspA, a cold-shock protein known to be RNA chaperone at low temperature, on the productivity of recombinant protein at various temperatures by using green fluorescence protein (GFP) as a model recombinant protein. We could observe that the co-expression of CspA enhanced the productivity of GFP at $15^{\circ}C$ by accelerating the growth of E. coli at the temperature. On the other hand, the CspA coexpression didn't affect the cell growth rate as well as the specific GFP production rate at other tested temperatures, $20^{\circ}C$, $25^{\circ}C$, and $37^{\circ}C$.
In this study, the cellulase of Monochamus saltuarius (MsGHF45) gene was introduced in Kluyveromyces lactis, successfully. The molecular weight of recombinant enzyme was determined by SDS-PAGE and western blotting. The enzymatic activity was confirmed by native-PAGE containing carboxymethyl cellulose as a substrate. The optimul pH and temperature of recombinant MsGHF45 was pH5 and $40^{\circ}C$. The barium ($Ba^{2+}$) and ferrous ($Fe^{2+}$) enhanced enzyme activity, and the mercuty ($Hg^{2+}$) inhibited its activity.
A human gene has been reported that may encode the enzyme acetohydroxyacid synthase. Previously this enzyme was thought to be absent from animals although it is present in plants and many microorganisms. In plants, this enzyme is the target of a number of commercial herbicides and the use of these compounds may need to be reassessed if the human enzyme exists and proves to be susceptible to inhibition. Here we report the construction of several plasmid vectors containing the cDNA sequence for this protein, and their expression in Escherichia coli. High levels of expression were observed, but most of the protein proved to be insoluble. The small amounts of soluble protein contained little or no acetohydroxyacid synthase activity. Attempts to refold the insoluble protein were successful insofar as the protein became soluble. However, the refolded protein did not gain any acetohydroxyacid synthase activity. In vivo complementation tests of an E. coli mutant produced no evidence that the protein is active. Incorrect folding, or the lack of another subunit, may explain the data but we favor the interpretation that this gene does not encode an acetohydroxyacid synthase.
The sprT gene encoding Streptomyces griseus trypsin (SGT) was introduced into Streptomyces lividans TK24 and Streptomyces lividans 1326 to study which strain would be better to overexpress the extracellular proteinase. Various media with different compositions were also used to maximize the productivity of SGT in heterologous hosts. The SGT productivity was best when the transformants of S. lividans TK24 and 1326 were cultivated in R2YE medium, and their relative trypsin activity of the culture broth measured with an artificial chromogenic substrate, N-${\alpha}$-benzoyl-DL-arginine-${\rho}$-nitroanilide, were 382 units/ml and 221 units/ml, respectively. They produced high levels of SGT in GYE medium but relatively lower than those in R2YE medium, and negligible amount of SGT was produced in Ferm, RASF, LIVID, and NDSK media. Considering non-SGT associated activity in Pronase powder, it was estimated that the transformant of S. lividans TK24 can produce SGT in R2YE 3.5 times more than the amount by S. griseus 10137 from which the sprT gene had been originated. The growth of S. lividans reached the maximum level of cell mass at 5 d of culture, but SGT production started in the stationary phase of cell growth and kept increasing until the ninth day of culture in R2YE medium, but in GYE media the productivity reached at the maximum level at 7 d of cultivation.
Lee, Sang Min;Hoang, My Hanh Thi;Han, Hay Ju;Kim, Ho Soo;Lee, Kyunghee;Kim, Kyung Eun;Kim, Doh Hoon;Lee, Sang Yeol;Chung, Woo Sik
Molecules and Cells
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v.27
no.3
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pp.321-327
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2009
Voltage-dependent anion channels (VDACs) are reported to be porin-type, ${\beta}$-barrel diffusion pores. They are prominently localized in the outer mitochondrial membrane and are involved in metabolite exchange between the organelle and the cytosol. In this study, we have investigated a family of VDAC isoforms in Arabidopsis thaliana (AtVDAC). We have shown that the heterologous expression of AtVDAC proteins can functionally complement a yeast mutant lacking the endogenous mitochondrial VDAC gene. AtVDACs tagged with GFP were localized to mitochondria in both yeast and plant cells. We also looked at the response of AtVDACs to biotic and abiotic stresses and found that four AtVDAC transcripts were rapidly up-regulated in response to a bacterial pathogen.
Kim, Sun-Jung;Yu, Dae-Yeul;Lee, Ko-Woon;Cho, Yong-Yeon;Lee, Chul-Sang;Han, Yong-Mahn;Lee, Kyung-Kwang
BMB Reports
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v.28
no.1
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pp.57-61
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1995
The expression of a recombinant human lactoferrin is reported in mouse HC11 mammary epithelial cells. Expression of human lactoferrin (hLF) was achieved by placing its cDNA under the control of the bovine ${\beta}$-casein gene. To improve the hLF expression level in a cell culture system, two artificial introns were also introduced to construct expression vectors. One intron was a hybrid-splice signal consisting of bovine ${\beta}$-casein intron 1 and rabbit ${\beta}$-globin intron II. The other intron was a DNA fragment spanning intron 8 of the bovine ${\beta}$-casein gene. The hybrid intron moderately elevated hLF expression, whereas intron 8 alone did not express any detectable amount of hLF as judged by Northem and Western blot analyses. When the two introns were used together they contributed to a synergistic elevation of hLF expression. These data indicate that artificial introns on both sides of the hLF cDNA were necessary to increase expression of cDNA.
Cytochrome P450 3As such as 3A4 and 3A5 metabolize a wide range of pharmaceutical compounds. The vectors for the expression of fusion protein containing an N-terminal human P450 3A4 or P450 3A5 sequences and a C-terminal rat NADPH-cytochrome P450 reductase moiety were constructed. These plasmids were used to express the fusion protein in Escherichia coli DH5$\alpha$ cells. High levels of expression were achieved (100~200 nmol/liter) and the expressed fusion protein in E. coli membranes were catalytically active for nifedipine oxidation, a typical enzymatic activity of P450 3A4. The NADPH-P450 reductase activities of these fusion protein were also determined by measuring reduction of cytochrome c. To fine a specific Inhibitor of P450 3A4 from naturally occurring chemicals, a series of isothiocyanate compounds were evaluated for the inhibitory activity of P450 using the fusion proteins in E. coli membranes. Of the five isothiocyanates (phenethyl isothiocyanate, phenyl isothiocyanate, benzol isothiocyanate, benzoyl isothiocyanate and cyclohexyl isothiocyanate) tested, benzoyl isothiocyanate showed a strong inhibition of P450 3A4 with an $IC_{50}$value of 2.8 $\mu\textrm{M}$. Our results indicate that the self-sufficient fusion protein will be very useful tool to study the drug metabolism and benzyl isothiocyanate may be valuable for characterizing the enzymatic properties of P450 3A4.
Proceedings of the Korean Society of Applied Pharmacology
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2001.11a
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pp.99-99
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2001
The acid-labile subunit (ALS) associates with insulin-like growth factor (IGF)-I or -II and IGF binding protein-3 (IGFBP-3) to form a 150-kD complex in the circulation. This complex is thought to regulate the serum IGFs by restricting them in the vascular system and promotes their endocrine actions. Little is known about how ALS binds to IGFBP3, which connects the IGFs to ALS. Xenopus oocyte was utilized to study the function of ALS in assembling IGFs into the ternary complexes. Xenopus oocyte was shown to correctly translate in vitro transcribed mRNAs of ALS and IGFBP3. IGFBP3 and ALS mRNAs were injected in mixture and their products were immunoprecipitated by antisera against ALS and IGFBP3. Contrary to the traditional reports that ALS interacts only with IGF-bound IGFBP3, this study shows that ALS is capable of forming a binary complex with IGFBP3 in the absence of IGF. When cross-linked by disuccinimidyl substrate, band representing ALS-IGFBP3 complex was evident on the PAGE. IGFBP3 movement was monitored according to the distribution between the hemispheres. Following a localized translation in the vegetal hemisphere, IGFBP3 was shown to remain in the vegetal half in the presence of ALS. Different from wild type IGFBP3, however, mutant IGFBP3 freely diffused into the animal half despite the presence of ALS. Taken together, this study suggests that ALS may play an important role in sequestering IGFBP3 polypeptides via the intermolecular aggregation. Studies using this heterologous model will lead to a better understanding of the IGFBP3 and ALS assembling into the ternary structure and circulating IGF system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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