This study was conducted to evaluate the effects of different preparation methods on the recovery and quantification of ginsenosides in raw Korean ginseng (Panax ginseng C.A. Meyer). Eight major ginsenosides ($Rb_1$, $Rb_2$, $Rb_3$, Rc, Rd, Re, Rf, and $Rg_1$) were analyzed by high performance liquid chromatography (HPLC), after which the recovery and repeatability of the extraction of those ginsenosides using 3 different preparation methods were compared [A. direct extraction (DE) method, hot MeOH extraction/evaporation/direct dissolution; B. solid phase extraction (SPE) method, hot MeOH extraction/evaporation/dissolution/$C_{18}$ cartridge adsorption/MeOH elution; C. liquid-liquid extraction (LLE) method, hot MeOH extraction/evaporation/dissolution/n-BuOH fractionation]. Use of the DE method resulted in a significantly higher recovery of total ginsenosides than other methods and a relatively clear peak resolution. Use of the SPE and LLE methods resulted in clearer peak resolution, but lower ginsenoside recovery than the DE method. The LLE method showed the lowest ginsenoside recovery and repeatability among the 3 methods. Given that the DE method employed only extraction, evaporation, and a dissolution step (avoiding complicate and time consuming purification), this technique may be an effective method for the preparation and quantification of ginsenosides from raw Korean ginseng.
Toluene, xylene and styrene are volatile organic solvents that are commonly used in mixtures in many industries. Because these solvents are metabolized and then excreted in urine, their urinary metabolites are thought to be biomarkers of occupational exposure to these solvents. Therefore, a simple, rapid, and yet reliable analytical method for determining the metabolites is required for accurate biological monitoring. In the present study, a simple and rapid HPLC-UV method was developed for the simultaneous determination of eight major metabolites of toluene, xylene and styrene: hippuric acid (HA), mandelic acid (MA), o-, m- and p-methylhippuric acids (o-, m- and p-MHAs), and o-, m- and p-cresols. A monolithic column was employed as the stationary phase and several conditions, including flow rate, composition of mobile phase and column temperature, were variables for the optimization of the chromatographic resolution. All eight metabolites were successfully resolved within 5 minutes in 10% aqueous ethanol containing 0.3% acetic acid and 1.6% $\beta$-cyclodextrin, using a flow rate gradient of 1.0 - 5.0 mL/min at 25 ${^{\circ}C}$. The performance of this method was validated by linearity, intra- and inter-day accuracy, and precision. The linearity was observed with correlation coefficients of 0.9998 for HA, 0.9999 for MA, 0.9989 for o-MHA, 0.9998 for m-MHA, 0.9991 for p-MHA, 0.9997 for o-cresol, 0.9998 for m-cresol, and 0.9986 for p-cresol. The intra- and inter-day precision of the method were less than 5.89% (CV) and the accuracy ranged from 92.95 to 106.62%. The validity was further confirmed by analysis of reference samples that were prepared by the inter-laboratory quality assurance program of the Korea Occupational Safety and Health Agency (KOSHA, Seoul, Korea). All measured concentrations of the analytes agreed with the certified values.
A rapid, selective and sensitive reverse-phase HPLC methods for the determination of atenolol and chlorthalidone in human serum and whole blood were validated, and applied to the pharmacokinetic study of atenolol and chlorthalidone combination therapy. Atenolol and an internal standard, pindolol, were extracted from human serum by liquid-liquid extraction, and analyzed on a $\mu$-Bondapak C18 $10-{\mu}$ column in a mobile phase of methanol-0.01 M potassium dihydrogenphosphate(30:70, v/v, adjusted to pH 3.5) and fluorescence detection(emission: 300 nm, excitation: 224 nm). Chlorthalidone and an internal standard, probenecid, were extracted form human whole blood by liquid-liquid extraction, and analyzed on a Luna C18 $5-{\mu}$ column in a mobile phase of acetonitrile containing 77% 0.01 M sodium acetate and UV detection at 214 nm. These analysis were performed at three different laboratories using the same quality control(QC) samples. The chromatograms showed good resolution, sensitivity, and no interference by human serum and whole blood, respectively. The methods showed linear responses over a concentration range of 10-1,000 ng/mL for atenolol and 0.05-20 ${\mu}g/mL$ for chlorthalidone, with correlation coefficients of greater than 0.999 at all the three laboratories. Intra- and inter-day assay precision and accuracy fulfilled international requirements. Stability studies(freeze-thaw, short-, long-term, extracted sample and stock solution) showed that atenolol and chlorthalidone were stable. The lower limit of quantitation of atenolol and chlorthalidone were 10 ng/mL and 0.05 ${\mu}g/mL$, respectively, which was sensitive enough for pharmacokinetic studies. These methods were applied to the pharmacokinetic study of atenolol and chlorthalidone in human volunteers following a single oral administration of Hyundai $Tenoretic^{\circledR}$ tablet(atenolol 50 mg and chlorthalidone 12.5 mg) at three different laboratories.
오존처리의 소독 부산물인 알데하이드류를 HPLC로 분석하는 최적 분석법을 확립하였다. 예비실험을 통하여 알데하이드류는 포름알데하이드, 아세트알데하이드, 아크롤레인, 프로피온알데하이드, 부틸알데하이드, 벤즈알데하이드 6종과 케톤류인 아세톤 1종 모두 7종을 대상 시료로 선정하였다. HPLC에 의한 알데하이드-DNPH 유도체를 최적화 하기 위해 시트르산 완충용액의 pH, 반응 온도, 반응 시간, DNPH 농도, 추출 용매의 종류 및 조성의 최적 조건을 구하였다. 그 결과 시트르산 완충 용액의 pH는 3.0, 반응 온도는 40$^{\circ}C$, 반응시간은 15분, DNPH의 농도는 0.012%에서 최적 반응 조건임을 알 수 있었으며, 반응이 완결된 알데하이드-DNPH 유도체를 $C_18$Sep-Pak 카트리지에 농축시켜 과량의 DNPH를 용리시킨 다음 탈착용매로서 THF/ACN=70/30의 혼합용매 2mL로 탈착하였을 때 87∼107% 범위의 회수율을 나타내었다. HPLC 분리 조건으로서 Nova-Pak $C_18$ 컬럼상에서 이동상의 초기 조건은 ACN/MeOH/Water=30/10/60 에서 최종 조건은 80% ACN으로 하는 기울기 용리를 수행하였을 때 7종의 알데하이드류가 20분 이내에 용리되면서 모두 거의 기준선 분리가 되었다. 본 실험에서 확립한 알데하이드-DNPH 유도체의 최적 분석 조건과 EPA Method 554와 회수율을 비교한 결과, 본 실험에서는 86∼103%, EPA Method 554로부터는 84∼103%으로 거의 일치한 결과를 나타내었다.
A new antagonistic strain of actinomycete, designated AP19-2, was isolated from the feces of giant pandas inhabiting the Foping National Nature Reserve in China. Cultural characteristic studies strongly suggested that this strain is a member of the genus Streptomyces. The nucleotide sequence of the 16S rRNA gene of strain AP19-2 evidenced profound similarity (97-99 %) with other Streptomyces strains. Two pure active molecules were isolated from a fermentation broth of Streptomyces sp. strain AP19-2 via extraction, concentration, silica gel G column chromatography, and HPLC. The chemical structures of the two related compounds (referred to as chromomycin $A_2$ and chromomycin $A_3$) were established on the basis of their Infrared spectra (IR), High Resolution Electrospray Ionization Mass Spectrometry (HR-ESI-MS), and Nuclear Magnetic Resonance (NMR) data, and by comparison with published data.
Comparative liquid chromatographic enantiomer separation of ${\alpha}$-amino acids, their esters and primary amino compounds was performed using two chiral stationary phases (CSPs) prepared by covalently bonding (+)-(18-crown-6)-2,3,11,12-tetracarboxylic acid (18-C-6-TA) of the same chiral selector. In general, the separation factors and resolution factors for these analytes on CSP 1 were greater than on CSP 2, while these capacity factors on CSP 2 were quite greater than on CSP 1. Except for leucine methyl ester and phenylalanine methyl ester, the elution orders of all analytes including ${\alpha}$-amino ${\alpha}$-alkyl acids and phenylglycine alkyl esters on CSP 1 are identical to those on CSP 2. This study showed that different connecting structures for these two CSPs might influence their ability to resolve the analytes depending on their structures related to the chiral recognition mechanism.
Studies were made to elucidate the cell growth and the production of camptothecin and its derivatives in cell cultures of Camptotheca acuminata. High resolution HPLC chromatograms to analyze camptothecin and 10-hydroxycamptothecin in lactone and carboxylate forms were obtained with a fluorescence detector. Calli inductions were optimized with the young stem of explant on Schenk and Hildebrandt (SH) medium supplemented with 5 mg/l $\alpha$-naphthaleneacetic acid (NAA), 0.2 mg/l 6-benzylamino purine (BAP), 2.0% sucrose, and 0.5% agar. The hybrid medium, a mixture of SH and Murashige and Skoog (MS) salts, was developed for homogeneous suspension cultures without large cell aggregates. The optimum phytohormone concentrations for successful suspension cultures were 1.0mg/l of 2,4-D and 0.5 mg/l of kinetin. The highest growth in suspension cultures was observed when 49.7% (w/w) of the cells was composed of small aggregates which were below 0.1 mm in diameter. Time course changes of cell growth and camptothecin production showed that camptothecin accumulation was started at the end of the growth phase and the maximum content was obtained 10 days after inoculation. Yeast extract elicitor increased camptothecin accumulation 4 times. Methyl jasmonate and jasmonic acid also increased camptothecin production 6 and 11 times, respectively.
A strain antagonistic to Fusarium solani, CHO104, was selected from approximately 100 microorganisms isolated from soil. Strain CHO104 was identified as Bacillus amyloliquefaciens and found to be Gram-positive based on the Biolog system and 16S rRNA methods. A culture broth of B. amyloliquefaciens CHO104 also exhibited antimicrobial activity against various microorganisms. As such, the EtOAc extract of the culture broth was isolated by various column chromatographic procedures and HPLC. The antimicrobial and antifungal substance was then characterized as macrolactin A $(C_{24}H_{34}O_5)$ using high-resolution EI-MS and NMR analyses, and found to be very effective in inhibiting the growth of Staphylococcus aureus, E. coli, and Botrytis cinerea, even when using a concentration of one-twentieth of the benzoic acid as the control compound.
Carvedilol is administered as a racemic mixture of the R(+)- and S(-)-enantiomers, although they exhibit different pharmacological effects. To investigate the stereoselective pharmacoki-netics, the enantiomeric separation of carvedilol in human plasma was undertaken using capil-lary electrophoresis (CE). Resolution of the enantiomers was achieved using 2-hydoxypropyl-$\beta$-cyclodextrin as the chiral selector. Phosphate buffer (50 mM, pH 4.0) containing 10 mM of 2-hydoxypropropyl-$\beta$-cyclodextrin was used as electrolytic buffer. Achiral separation was carried out with the same electrolytic buffer without chiral selector. Following a single oral administra-tion of 25-mg carvedilol to 11 healthy, male volunteers, stereoselective pharmacokinetic analy-sis was undertaken. The maximum plasma concentrations ( $C_{max}$) were 48.9 and 21.6 ng/mL for (R)-carvedilol and (S)-carvedilol, respectively, determined by the chiral method. The profiles of the plasma concentration of (RS)-carvedilol showed $C_{max}$ of 71.5, 72.2, and 73.5 ng/mL, as determined by the CE, HPLC/FD methods and calculations from the data of the chiral method, respectively.y.y.
In this study, ultrasound-assisted extraction was performed to extract ascorbic acid from rugosa rose (Rosa rugosa Thunb.) fruit. The optimal conditions were investigated by response surface methodology, using two variable including reaction time (16-44 min) and temperature (16-44℃). The ascorbic acid extraction was sensitive to the reaction time rather than the reaction temperature, and the optimal conditions for ascorbic acid extraction were 25℃ and 30 min. Ascorbic acid and gallic acid in the rugosa rose fruit extract were completely separated by HPLC, with a resolution factor of over 1.5 between the two. The correlation coefficient of the ascorbic acid was 0.999 in a linearity test for 50-150 ㎍/mL concentration of extract. The limit of detection and limit of quantification values were 0.16 ㎍/mL and 29.89 ㎍/mL, respectively. The relative standard deviations (RSD) for repeatability and reproducibility were determined, and each RSD showed good precision at less than 5% (N=6).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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