In this study, we investigated the protective effects of Ulva lactuca methanol extracts against ultraviolet B (UVB)-induced DNA damage in HaCaT cells. First, the contents of general and antioxidative nutrient contents of Ulva lactuca were measured. The moisture, carbohydrate, crude protein, crude fat and ash were 14.01%, 44.80%, 23.19%, 3.10% and 14.90%, respectively. Magnesium that acts as DNA repair enzyme cofactor was the most abundant mineral followed by Ca, P and Fe. The total phenolic and anthocyanoside contents of Ulva lactuca were 2.69 mg/g and 0.13 mg/g, respectively. Cells treated with Ulva lactuca methanol extracts for 24 hours post UVB exposure increased cell viability in a concentration-dependent manner compared to the non-treated control. Also, Ulva lactuca methanol extracts decreased the levels of UVB-induced DNA damage such as cyclobutane pyrimidine dimer and DNA damage response (DDR) proteins such as p-p53 and p21. These results suggest that Ulva lactuca methanol extracts comprising physiological active substances such as Mg, polyphenols and anthocyanosides promote DNA repair by regulating genes related with DDR.
Kim, Chung-Hee;Kim, Jong-Soo;Van Cuong, Dang;Kim, Na-Ri;Kim, Eui-Yong;Han, Jin
Journal of Life Science
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v.13
no.3
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pp.241-247
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2003
While the DNA-protein kinase (DNA-PK) complex, comprised of DNA-PKcs and Ku80, is primary involved in the repair of DNA double-strand breaks, it is also believed to participate in additional cellular processes. Here, treatment of embryo fibroblasts (MEFs) derived from either wild-type (Wt) or DNA-PKcs-null (DNA-$PKcs^{-/-}$) mice with various stress inducing agents revealed that adriamycin was markedly more cytotoxic for $Ku80^{-/-}MEFs$ and led to their long-term accumulation in the $G_2$/M phase. This differential response was not due to differences in DNA repair, since adrimycin-triggered DNA damage was repaired with comparable efficiency in both Wt and $Ku80^{-/-}MEFs$, but was associated with differences in the expression of important cell cycle regulatory genes. Our results support the notion that Ku80-mediated cytoprotection and $G_2$/M-progression are not only dependent on the cell's DNA repair but also may reflect Ku80's influence on additional cellular processes such as gene expression.
The RAD4 gene of Saccharomyces cerevisiae is essential for the incision step of UV-induced excision repair. A yeast RAD4 gene has been previously isolated by functional complementation. In order to identify the RAD4 homologous gene from fungus Coprinus cinereus, we have constructed cosmid libraries from electrophoretically separated chromosomes of the C. cinereus. The 13 C. cinereus chromosomes were resolved by pulse-field gel electrophoresis, hybridized with S. cerevisiae RAD4 DNA, and then isolated homologous C. cinereus chromosome. Here, we report the cloning and characterization of fungus C. cinereus homolog of yeast RAD4 gene. Southern blot analysis confirmed that C. cinereus contains the sequence homologous DNA to RAD4 gene and this gene exists as a single copy in C. cinereus genome. When total RNA isolated from C. cinereus cells was hybridized with the 3.4 kb BglII DNA fragment of the S. cerevisiae RAD4 gene, a 2.5 kb of transcript was detected. The isolated gene encodes a protein of 810 amino acids.
The present study intends to characterize the DNA damage-inducible responses in Caenorhabditis elegans. To study UV-inducible responses in C. elegans, two UV-inducible cDNA clones were isolated from C. elegans by using subtration hybridization method. To investigate the expression of isolated genes, UV100 and UV150, the cellular levels of the transcript were determined by Northern blot analysis after UV-irradiation. The transcripts of isolated gene increased rapidly and reached maximum accumulation after UV-irradiation. Compared to the message levels of control, the levels of maximal increase were approximately 2 folds to UV-irradiation. These results implied that the effects of damaging agents are complex and different regulatory pathways exist for the induction of these genes. To study the function of UV100 and UV150 gene in response to UV irradiation, we carried out a RNAi experiment and investigated the UV sensivity. This result indicated that UV100 gene involved in stage-specific repair pathway or regulated by development.
The cells of metazoans respond to DNA damage by either arresting their cell cycle in order to repair the DNA, or by undergoing apoptosis. This response is highly conserved across species, and many of the genes involved in this DNA damage response have been shown to be inactivated in human cancers. This suggests the importance of DNA damage response with regard to the prevention of cancer. The DNA damage checkpoint responses vary greatly depending on the developmental context, cell type, gene expression profile, and the degree and nature of the DNA lesions. More valuable information can be obtained from studies utilizing whole organisms in which the molecular basis of development has been well established, such as Drosophila. Since the discovery of the Drosophila p53 orthologue, various aspects of DNA damage responses have been studied in Drosophila. In this review, I will summarize the current knowledge on the DNA damage checkpoint response in Drosophila. With the ease of genetic, cellular, and cytological approaches, Drosophila will become an increasingly valuable model organism for the study of mechanisms inherent to cancer formation associated with defects in the DNA damage pathway.
Proceedings of the Zoological Society Korea Conference
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1998.10b
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pp.113-113
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1998
In Saccharomyces cerevisiae UV irradiation and a variety of chemical DNA -damaging agents induce the transcription of specific genes, including several involved in DNA repair. One of the best characterized of DNA -damage inducible genes is PHRI, which encodes the apoenzyme for DNA photolyase. Basal-level and damage-induced expression of PHRI require an upstream activation sequence, UASPHRI. Here we report the identification of the UlvIE6 gene of S. cerevisiae as a regulator of UASPHRl activity. Surprisingly, the effect of deletion of UME6 is growth phase dependent. In wild-type cells PHRI is induced in late exponential phase, concomitant with the initiation of glycogen accumulation that precedes the diauxic shift. Deletion of UNIE6 abolishes this induction, decreases the steady-state concentration of photolyase molecules and PHRI mRNA, and increases the UV sensitivity of a rad2 mutant. The results suggest that UM E6 contributes to the regulated expression of a subset of damage-responsive genes in yeast. Furthermore, the upstream repression sequence, URSPHRI, is required for repression and damage-induced expression of PHRl. Here we show identification of YER169W and YDR096W as putative regulators acting through $URS_{PHRI}$. These open reading frames were designated as RPHI (YERl69W) and RPH2 (YDR096W) indicating regulator of PHRI. Simultaneous disruption of both genes showed a synergistic effect, producing a four-fold increase in basal level expression and a similar decrease m the induction ratio following treatment of methyl methanesulfonate(MMS). Mutation of the sequence ($AG_4$) bound by Rphlp rendered the promoter of PHRI insensitive to changes in RPHI or RPH2 status. The data suggest that RPHI and RPH2 act as damage-responsive negative regulators of PHRI. Surprisingly, the sequence bound by Rphlp in vitro is found to be $AG_4$ which is identical to the consensus binding site for the regulators Msn2p and Msn4p involved in stress-induced expression. Deletion of MSN2 and MSN4 has little effect on the induction$.$ ratio following DNA damage. However, all deletions led to a significant decrease in basal-level and induced expression of PHRI. These results imply that MSN2 and MSN4 are positive regulators of P HRI but are not required for DNA damage repression. [Supported by grant from NIH]om NIH]
Proceedings of the Korean Society for Bioinformatics Conference
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2001.10a
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pp.29-44
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2001
DNA damage by physical insult including UV and g-radiation might provoke genetic alterations in cells, which is followed by either acute cell death or tumorigenesis. The responsiveness to g-radiation depends on cellular context of target cells. To understand the mechanisms of checkpoint control, repair and cell death following genotoxic stimu]i, cDNA microarray can provide the gene expression profile. To make a profile of gene expression in irradiated Jurkat T cells, we hybridized the cDNA microarray using cDNA from g-irradiated Jurkat T cells. Jurkat T cells were exposed to 4Gy to 16Gy, and total RNA were extracted at 4 to 24 hrs after irradiation. The hybridization of the microarray to fluorescence-labeled cDNA from treated and untreated cells was analyzed by bioinformatic analysis to address relative changes in expression levels of the genes present in the array. Responses varied widely in different time points, suggesting acute stress response and chronic restoration or cell death. From these results we could select 384 genes related to radiation response in Tcells, and radiation response might be different in various types of cells. Using Radchip, we could separate "the exposed" from control PBMCs. We propose that Radchip might be useful to check the radiation research as well as radiation carcinogenesis.
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