Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.28
no.5
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pp.1022-1028
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1999
The solvent extracts of Ulmi cortex, which were extracted by using several solvents with different polarities, were prepared for utility as a natural preservatives. The antimicrobial activities and cell growth inhibitions were investigated to each strain with the different concentrations of Ulmi cortex extracts. Methanol extract showed the highest antimicrobial activity. The methanol extract was represented the broad antimicrobial activities for the gram positive and negative strains. Minimum inhibitory concentrations (MIC) for each strains were appeared to around 0.3mg/ml at each of Bacillus cereus, Bacillus subtilis, and Staphylococcus aureus. The cell growth inhibitions were not shown on Lactobacillus bulgaricus, Lac tobacillus plantarum, and Bifidobacterium bifidum, but greatly on the Clostridium butyricum. The meth anol extracts were further reextracted sequentially with hexane, chloroform, ethyl acetate, and butanol for purifying crude methanol extracts. The extract, which was reextracted by butanol, showed the highest antimicrobial activity.
Alginate lyase from Streptomyces violaceoruber was purified by DEAE sephacel chromatography and SP sepharose chromatography. The specific activity of the purified enzyme was 14.6 units/mg protein, representing a 40.6-fold purification of the crude extract. The final preparation thus obtained showed a single band on Tricine-SDS polyacrylamide gel electrophoresis whose molecular weight was determined to be 23.3 kDa. The polyMG block of sodium alginate was hydrolyzed by the purified alginate lyase and then separated by activated carbon column chromatography and bio gel P-2 gel filtration. The main hydrolysates were composed of hetero type M/G-oligosaccharides with the degrees of polymerization (D.P.) being 6 and 8. To investigate the effects of hetero type M/G-oligosaccharides from the sodium alginate on the growth of some intestinal bacteria, cells were cultivated individually on the modified-MRS medium containing D.P. 6 and 8 M/G-oligosaccharides. B. longumgrew 4.25-fold and 6.44-fold more effectively by the treatment of D.P. 6 and 8 M/G-oligosaccharides compared with those of standard MRS medium. In addition, B. bifidumgrew 3.3-fold and 5.4-fold more effectively by the treatment of D.P. 6 and 8 M/G-oligosaccharides. In conclusion, D.P. 8 was more effective than D.P. 6 hetero M/G-oligosaccharides as regards the growth of Bifidobacteriumspp. and Lactobacillus spp.
Anaerobic growth-inhibiting and acaricidal activities of 2'-hydroxy-5'-methoxyacetophenone derived from Cyanachum paniculatum oil and its derivatives against five intestinal bacteria (Bifidobacterium bifidum, B. longum, Clostridium pefringens, Escherichia coli and Lactobacillus casei) and Haemaphysalis longicornis were examined. In the packet test against the larvae of H. longicornis, none of the C. paniculatum oil exhibited acaricidal activity, while the C. paniculatum oil showed only antimicrobial activity against five intestinal bacteria in the disc diffusion method. Based on the inhibition zones and MIC values, 2',4'-dimethoxyacetophenone, 2',5'-dimethoxyacetophenone, 2'-hydroxy-4'-methoxyacetophenone, 2'-hydroxy-5'-methoxyacetophenone, 2'-methoxyacetophenone, and 4'-methoxyacetophenone, containing a methyl group on the acetophenone skeleton, possessed growthinhibiting activities against C. perfringens and E. coli. However, acetophenone, 2'-hydroxyacetophenone, 4'-hydroxyacetophenone, 2',4'-hydroxyacetophenone and 2',5'-hydroxyacetophenone, which contained a hydroxyl group on the acetophenone skeleton, had no growth-inhibiting activity against intestinal bacteria. These results indicated that 2'-hydroxy-5'-methoxyacetophenone and its derivatives could potentially be developed as natural antimicrobial agents to specific control of C. perfringens and E. coli.
The growth responses of Ruta chalepensis leaf-derived materials toward human intestinal bacteria were examined. The biologically active constituent of the R. chalepensis extract was characterized as quinoline-4-carboxaldehyde($C_{10}H_{7}NO$). The growth responses varied depending on the bacterial strain, chemicals, and dose tested. At 0.25 and 0.1 mg/disk, quinoline-4-carboxaldehyde strongly inhibited the growth of Clostridium perfringens and weakly inhibited the growth of Escherichia coli without any adverse effects on the growth of three lactic acid bacteria. Furthermore, at 0.05 and 0.025 mg/disk, this isolate showed moderate activity against C. perfringens. In comparison, chloramphenicol at as low as 0.01 mg/disk significantly inhibited the growth of all bacteria tested, and cinnamaldehyde at 0.25 mg/disk did not inhibit Bifidobacterium bifidum, B. longum, E. coli, and Lactobacillus acidophilus, with the exception of C. perfringens. The structure-activity relationship revealed that quinoline-3-carboxaldehyde had strong growth inhibition against C. perfringens, but quinoline, quinoline-3-carboxylic acid, and quinoline-4-carboxylic acid did not inhibit the growth of B. bifidum, B. longum, C. perfringens, E. coli, and L. acidophilus. These results indicate that the carboxyl aldehyde functional group of quinolines seems to be required for growth-inhibiting activity against C. perfringens, thus indicating at least one of the pharmacological actions of R. chalepensis leaf.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.33
no.7
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pp.1186-1191
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2004
Bacillus sp. $\beta$-mannanase was purified by DEAE-sephadex ion exchange column chromatography. The partially purified P-mannanase exhibited maximum activity at pH 6.0 and 5$0^{\circ}C$, and was stable at a pH range of 5.5 to 7.0, and at temperature between 30 to 5$0^{\circ}C$. Konjac glucomannan was hydrolyzed by the purified $\beta$-mannanase, and then hydrolysates separated by 1st activated carbon column chromatography and 2nd sephadex G-25 gel filtration. The main hydrolysates were composed of D.P 5 and 7 glucomannooligosaccharides by TLC and FACE method. To investigate the effects of guar gum glucomannooligosaccharides on the in vitro growth of B. longum, B. bifidum, B. infantis, B. adolescentis, B. animalis, and B. breve, Bifidobacterium spp. were cultivated individually on the modified-MRS medium containing carbon SOUTce such as D.P 5, and D.P 7 glucomannooligosaccharides, respectively. B. longum grew up 4.6-fold and 5.3-fold more effectively by the replacement of D.P 5 and 7 glucomannooligosaccharides as the carbon source in a comparasion of standard MRS. Also, B. breve and B. animalis slightly grew up by the treatment of D.P 5 glucomannooligosaccharide.
Kim, Byoung-Kook;Choi, In Suk;Kim, Jihee;Han, Sung Hee;Suh, Hyung Joo;Hwang, Jae-Kwan
Food Science of Animal Resources
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v.37
no.6
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pp.906-916
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2017
To investigate the effects of a single bacterium and a mixture of bacteria as probiotics in loperamide-treated animal models, loperamide (3 mg/kg) was administered to SD rats to induce constipation. The individual lactic acid bacterial doses, Enterococcus faecium (EF), Lactobacillus acidophilus (LA), Streptococcus thermophilus (ST), Bifidobacterium bifidum (BB), Bifidobacterium lactis (BL), Pediococcus pentosaceus (PP), and a mixture of the bacteria were orally administered to loperamide-induced constipated rats at a concentration of $10^8CFU/kg$ for 14 days. The weights and water contents of their stools were found to be significantly higher in PP, CKDB (mixture of 5 strains except PP), and CKDBP (CKDB+PP) groups than in the normal (constipation not induced) and the control (constipation-induced) groups (p<0.05). The intestinal transit ratio was significantly higher in all probiotic-treated groups than in the control group, and was the highest in the CKDBP group (p<0.05). The mucosal length and mucus secretion were significantly improved in all probiotic-treated-groups, as compared to that in the control group, and the CKDBP group was found to be the most effective according to immunohistochemistry (IHC) staining and total short chain fatty acid content analysis (p<0.05). Lastly, PP, CKDB, and CKDBP showed relatively higher Lactobacillus sp. ratios of 61.94%, 60.31% and 51.94%, respectively, compared to the other groups, based on metagenomic analysis.
Kim, Ki-Hwan;Shin, Won-Cheol;Park, Young-Seo;Yoon, Sung-Sik
Food Science and Biotechnology
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v.16
no.1
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pp.99-103
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2007
The purpose of this study was to develop a simple detection method, possibly at the species-level, that allows for large-scale screening of bifidobacteria. Human fecal samples were plated on MRS-raffinose agar containing cysteine and neomycin sulfate, serving as selective pressure for bifidobacteria, and 0.003%(w/v) bromocresol green. All of the test strains grew well on this medium at $37{\pm}1^{\circ}C$, forming white colonies surrounded by yellow halos, which presented a sharp contrast against the green background. In this disc assay, the required incubation time to develop a yellowish zone varied with the species of Bifidobacterium that was tested, allowing for differential counts and easy identification at the species-level: 10-14 hr for B. bifidum, 20-22 hr for B. catenulatum and B. infantis. and 24-25 hr for B. longum and B. breve. No apparent color was observed for B. angulatum and B. adolescentis 28 hr after inoculation. To evaluate the results of pH indicator-based identification, individual isolates were subjected to a colony-PCR experiment with genus-specific primers. The amplified products from the isolates were in good accordance with those from the reference strains at a level of 95% agreement. These results suggest that the present method could be conveniently applied to cell counts, as well as to the preliminary identification of bifidobacteria from a variety of sample types including human feces, dairy products, and commercial probiotic supplements.
Kim, Moo-Key;Park, Byeoung-Soo;Kim, Byung-Su;Lee, Hoi-Seon
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.44
no.4
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pp.185-189
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2001
Essential oils of 21 herb plant samples, using spectrophotometric and paper disc agar diffusion methods under anaerobic conditions, were tested in vitro for their growth-inhibiting activities against Bifidobacterium bifidum, B. longum, Lactobacillus casei, Clostridium perfringens, and Escherichia coli. The responses varied with bacterial strains and plant oils. At 10 mg/disk, all essential oils did not inhibit beneficial intestinal bacteria, except for the oil of Alpinia officinarum and Melaleuca alternifolia against L. casei. Due to their strong growth-inhibitory activities against C. perfringens, E. coli, and L. casei, the activites of nine oils were evaluated at low concentrations. In test with C. perfringens at 1 mg/disk, the oils of Amyris balsamifera, Curcuma longa, M. alternifolia, and Trachyspermum ammi showed moderate activities. Moderate activities against E. coli were observed with the oils of M. alternifolia and T. ammi. These results may be indications of at least one of the pharmacological actions of the four herb plants.
The present study assessed the effects of an aqueous extract of Acanthopanax koreanum root (AE) and of AE following fermentation by lactic acid bacteria (Lactobacillus plantarum and Bifidobacterium bifidum) (AEF) on human skin fibroblast HS68 cells exposed to ultraviolet B (UVB) irradiation and oxidative stress. AEF effectively antagonized the senescence-associated β-galactosidase staining and upregulation of p53 and p21Cip1/WAF1 induced by UVB or H2O2 treatment in HS68 cells. It also exhibited excellent antioxidant activities in radical scavenging assays and reduced the intracellular level of reactive oxygen species induced by UVB or H2O2 treatment. The antioxidant and antisenescent activities of AEF were greater than those of nonfermented A. koreanum extract. AEF significantly repressed the UVB- or H2O2-induced activities of matrix metalloproteinase (MMP)-1 and -3, overexpression of MMP-1, and nuclear factor κB (NF-κB) activation. This repression of NF-κB activation and MMP-1 overexpression was attenuated by a mitogen-activated protein kinase activator, suggesting that this AEF activity was dependent on this signaling pathway. Taken together, these data indicated that AEF-mediated antioxidant and anti-photoaging activities may produce anti-wrinkle effects on human skin.
In order to develop new functional yogurts using mulberries and mulberry leaves, which were cultivated in Hwasun-gun, Jeonnam Province, Korea, the nutritional compositions, fermentation conditions, sensory properties, and storage stabilities of the yogurts were analyzed. The mulberry powder yogurt contained 87.96% moisture, 3.21% carbohydrate, 4.52% protein, 3.63% lipid, and 0.68% ash, and the mulberry leaf yogurt contained 86.36% moisture, 4.13% carbohydrate, 4.87% protein, 3.79% lipid, and 0.85% ash. A yogurt base was fermented for 13 h with 0.01% ABT-5 starter inoculum at $40^{\circ}C$. To prepare the mulberry jam and mulberry leaf yogurts, a variety of mulberry jam and mulberry leaf samples were added to the yogurt base. The sensory evaluation results of the yogurts containing the mulberry jam and mulberry leaves indicated that a product made with 15% mulberry jam was more strongly preferred than other samples. When the mulberry jam and mulberry leaf yogurts were stored at $4^{\circ}C$ for 15 d, there were no significant changes in pH, titratable acidity, or viable cell numbers of lactic acid bacteria and Bifidobacterium bifidum.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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