The interaction of mating pheromone and pheromone receptor from the B mating-type locus is the first step in the activation of the mushroom mating signal transduction pathway. The B mating-type locus of Lentinula edodes is composed of Bα and Bβ subloci, each of which contains genes for mating pheromone and pheromone receptor. Allelic variations in both subloci generate multiple B mating-types through which L. edodes maintains genetic diversity. In addition to the B mating-type locus, our genomic sequence analysis revealed the presence of a novel chromosomal locus 43.3 kb away from the B mating-type locus, containing genes for a pair of mating pheromones (PHBN1 and PHBN2) and a pheromone receptor (RCBN). The new locus (Bα-N) was homologous to the Bα sublocus, but unlike the multiallelic Bα sublocus, it was highly conserved across the wild and cultivated strains. The interactions of RcbN with various mating pheromones from the B and Bα-N mating-type loci were investigated using yeast model that replaced endogenous yeast mating pheromone receptor STE2 with RCBN. The yeast mating signal transduction pathway was only activated in the presence of PHBN1 or PHBN2 in the RcbN producing yeast, indicating that RcbN interacts with self-pheromones (PHBN1 and PHBN2), not with pheromones from the B mating-type locus. The biological function of the Bα-N locus was suggested to control the expression of A mating-type genes, as evidenced by the increased expression of two A-genes HD1 and HD2 upon the treatment of synthetic PHBN1 and PHBN2 peptides to the monokaryotic strain of L. edodes.
Two phosphorylated proteins having molecular weights of 57kD and 72kD were detected from the slubilized membrane protein fraction of mating type a cells of Rhodosporidium toruloides which belongs to heterobasidiomycetous yeast. The phosphorylation of the protein was inhibited by a sexual pheromone, Rhodotorucine A (Rh. A), which is secreted from mating type a cells. On the other hand, counterpart mating type A cells and M-39 strain which is a styerile mutant derived from a cells, had also the same two phosphorylated proteins, However, the phosphorylation of the protein from A cells, and M-39 strain were not inhibited by the Rh. A. It suggests that inhibition of the phosphorylation reaction by the Rh. A in mating type a cells is a mating-type-specific reaction that relate to transduction mechanism of sexual pheromone signaling.
The mating type a of yeast, Saccharomyces cerevisiae mutant with hmla2-102 and sir3-8ts was changed to type alpha by changing the growth temperature from 25C to 35C. A temperature-sensitive expression vector system was constructed using mating factor alpha1 (Mfalpha1) gene encoding alpha factor which is expressed in the type alpha cells. Vectors with different copy numbers were constructed by joining the promoter and pre or prepro-secretion single sequence of Mfalpha1 to promoterless PHO5' gene as a reporter gene.
The action of phospholipid on the rhodotorucine A(RH.A) acceptance by heterbasidiomyceteous yeast Rhodosporidium toruloides mating type a cells and the effect of medium composition during sexual differentiation were investigated. Activation of trigger peptidase(TPase)was very sensitive to the originated phospholipid from R. toruloides and was more sensitive to phospholipid liposome made up of phospholipi. Phospholopod present on the membrance of mating type a cells consists of phospatidylglycerol(PG), phosphatidylethanolamine(PE), phospatidylcholine(PC), phospatidylinositol(PI), and phosphatidylserine(PS) of 12.9, suprisingly 45.4, 11.0, and 13.9%, respectively. As the result of using C-1 and N-1 mediums which limited C and N sources capable of inhibiting the synthesis of phospholipid, it resulted inhibiting sexual dlfferentiation and production of Rh.A from mating type Acells.
When mating type A and a cells of heterobasidiomycetous yeast Rhodosporidium toruloides were mix-cultured, both of the mating type cells have shown strong agglutination. But this agglutination was not detactable when the A and a cell were cultured separately. From reagglutination made just after the result of disassembling the agglutination by sonication, we knew that the agglutination was sexual-agglutination, not simple physical cell agglutination. The sexual agglutination was progressed actively on logarithmic phase and, in addition, progressed faster on mating type a cell treated with rhodotorucine A. These sexual agglutination have been inhibited by several protease such as trypsin, pronase, chymotrpysin and thermolysin and inhibited by 5 mM DTT as well.
[$\gamma$-$^{32}$P]ATP was used to test phosphorylation of membrane proteins of mating type a cells of heterobasidiomycetous yeast Rhodosporidium toruloides separated by non-denaturing electrophoresis. The phosphoprotein was observed in the membrane proteins. The phosphorylation was inhibited by the pheromone rhodotorucine A (Rh. A) secreted by mating type A of the yeast. Rh. A didn't inhibit the phosphorylation in the presence of a trigger peptidase (TPase) inhibitor, antipain. Partially digested Rh. A by trypsin maintained the phosphorylation inhibitory activity. These results show that TPase activity plays an important role in the transduction of pheromone signal in the yeast.
When the membrane protein fraction of mating type a cells of heterobasidiomycetous yeast R. toruloides was phosphorylated in vitro, two phosphorylated proteins of 72Kd and 57Kd were detected on SDS-polyacryamide gel. The phosphorylation reaction was inhibited by rhodotorucine A(Rh. A) which is a sexual pheromone secreted by mating type A cells. The inhibition of phosphorylation by Rh. A was dependent on $Ca^{2+}$, and independent on $Mg^{2+}$ or calmodulin. When adding trigger peptidase(TPase) inhibitor, antipain, no inhibition of phosphory was observed. Also, by adding the trysin-digested product of Rh. A, the phosphorylation was inhibited as the action of Rh. A. From these results, it is expected that the inhibition of membrane protein phosphorylation should be caused by the digested product of Rh. A with TPase.
We have studied the relation between Ca$^{2+}$-ATPase and trigger peptidase(TPase) which are membeane protein well known as their significant role for signal transduction of mating pheromone in heterobasidiomycetous yeast. Rhodosporidium toruloides. We found out that there were Ca $^{2+}$-ATPase and TPase together in isolated calmodulim binding protein(CBP), usion calmodulin affinity column chromatography after solubilization of mation type a cell membrane protein, and that the dependence of enzyme activity of both the enzymes on Ca$^{2+}$, phospholipid and nonionic detergent are similar. However, Ca$^{2+}$-ATPase hed quite absolute dependence on calmodulin and, on the other hand, TPase didn't have any dependence. Judging from the fact that there are both enzymes in CBP which the dependence of calmodulin are quite different, we found out that both enzymes were made to their compound and existed in mating type a cell membrane.
In order to elucidate and characterize the signal transduction pathway(s) whereby yeast cells respond to mating pheromone, we have isolated mutants which are able to conjugate in the absence of the alpha-factor receptor. Sixty-one suppressors of a ste2-deletion mutation which also confer a ts conditional "start" arrest phenotypw have been subjected to genetic analysis. The mutants could be assigned to three complementation groups designated CDC70, CDC72 and CDC73, which are unlinked to each other as well as to the previously identified start genes. Quantitation of mating ability of the cdc70, cdc72 and cdc73 mutations in a ste2-deletion background gives levels ranging from 0.1% to 0.3% of wild type, depending on the allele and the gene. The results indicate that the signals from mating pheromone might be mediated by the CDC70, CDC72 and CDC73 products. products.
Transcriptional gene silencing is regulated by the chromatin structure, which is by various factors including histones. Saccharomyces cerevisiae contains transcriptionally silenced regions such as telomeric regions and hidden mating (HM) loci. The positively-charged amino acids on the histone H4 tail were reported to be critical for the telomeric silencing in yeast, by interacting with Dot1, a specific methyltransferase for the $79^{th}$ lysine on histone H3. However, Dot1 did not affect gene silencing within HM loci, but whether the positively-charged amino acids on the H4 tail affect HM silencing has not been defined. To elucidate the function of the H4 tail on HM silencing, we created several MATa-type yeast strains bearing the substitution of arginine with alanine or lysine on the histone H4 tail and checked the sensitivity of MATa-type yeast to alpha pheromone. The arginine point mutants substituted by alanine (R17A, R19A, and R23A) did not show sensitivity to alpha pheromone, but only two arginine mutants substituted by lysine (R17K and R19K) restored the sensitivity to alpha pheromone-like wild type. These data suggested that the basic property of arginine at $17^{th}$ and $19^{th}$ positions in the histone H4 tail is critical for maintaining HM silencing, but that of the $23^{rd}$ arginine is not. Our data implicated that the positive charge of two arginine residues on the histone H4 tail is required for HM silencing in a manner independent of Dot1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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