The plant pathogen Fusarium graminearum causes Fusarium head blight in cereal crops and produces mycotoxins that are harmful to animals and humans. For the initiation and spread of disease, asexual and sexual reproduction is required. Therefore, studies on fungal reproduction contribute to the development of new methods to control and maintain the fungal population. Screening a previously generated transcription factor mutant collection, we identified one putative $C_2H_2$ zincfinger transcription factor, pcs1, which is required for both sexual and asexual reproduction. Deleting pcs1 in F. graminearum resulted in a dramatic reduction in conidial production and a complete loss of sexual reproduction. The pathways and gene ontology of pcs1-dependent genes from microarray experiments showed that several G-protein related pathways, oxidase activity, ribosome biogenesis, and RNA binding and processing were highly enriched, suggesting that pcs1 is involved in several different biological processes. Further, overexpression of pcs1 increased conidial production and resulted in earlier maturation of ascospores compared to the wild-type strain. Additionally, the vegetative growth of the overexpression mutants was decreased in nutrient-rich conditions but was not different from the wild-type strain in nutrient-poor conditions. Overall, we discovered that the pcs1 transcription factor positively regulates both conidiation and sexual reproduction and confers nutrient condition-dependent vegetative growth.
Background: Listeria monocytogenes is a gram-positive bacterium that causes listeriosis mainly in immunocompromised hosts. It can also cause foodborne outbreaks and has the ability to adapt to various environments. Peptide uptake in gram-positive bacteria is enabled by oligopeptide permeases (Opp) in a process that depends on ATP hydrolysis by OppD and F. Previously a putative protein Lmo2193 was predicted to be OppD, but little is known about the role of OppD in major processes of L. monocytogenes, such as growth, virulence, and biofilm formation. Objectives: To determine whether the virulence traits of L. monocytogenes are related to OppD. Methods: In this study, Lmo2193 gene deletion and complementation strains of L. monocytogenes were generated and compared with a wild-type strain for the following: adhesiveness, invasion ability, intracellular survival, proliferation, 50% lethal dose (LD50) to mice, and the amount bacteria in the mouse liver, spleen, and brain. Results: The results showed that virulence of the deletion strain was 1.34 and 0.5 orders of magnitude higher than that of the wild-type and complementation strains, respectively. The function of Lmo2193 was predicted and verified as OppD from the ATPase superfamily. Deletion of lmo2193 affected the normal growth of L. monocytogenes, reduced its virulence in cells and mice, and affected its ability to form biofilms. Conclusions: Deletion of the oligopeptide transporter Lmo2193 decreases the virulence of L. monocytogenes. These effects may be related to OppD's function, which provides a new perspective on the regulation of oligopeptide transporters in L. monocytogenes.
Minseok Cha;Jun-Ha Kim;Hyo-Jin Choi;Soo Bin Nho;Soo-Yeon Kim;Young-Lok Cha;Hyoungwoon Song;Won-Heong Lee;Sun-Ki Kim;Soo-Jung Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.33
no.10
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pp.1384-1389
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2023
This work aimed to evaluate the feasibility of biohydrogen production from Barley Straw and Miscanthus. The primary obstacle in plant biomass decomposition is the recalcitrance of the biomass itself. Plant cell walls consist of cellulose, hemicellulose, and lignin, which make the plant robust to decomposition. However, the hyperthermophilic bacterium, Caldicellulosiruptor bescii, can efficiently utilize lignocellulosic feedstocks (Barley Straw and Miscanthus) for energy production, and C. bescii can now be metabolically engineered or isolated to produce more hydrogen and other biochemicals. In the present study, two strains, C. bescii JWCB001 (wild-type) and JWCB018 (ΔpyrFA Δldh ΔcbeI), were tested for their ability to increase hydrogen production from Barley Straw and Miscanthus. The JWCB018 resulted in a redirection of carbon and electron (carried by NADH) flow from lactate production to acetate and hydrogen production. JWCB018 produced ~54% and 63% more acetate and hydrogen from Barley Straw, respectively than its wild-type counterpart, JWCB001. Also, 25% more hydrogen from Miscanthus was obtained by the JWCB018 strain with 33% more acetate relative to JWCB001. It was supported that the engineered C. bescii, such as the JWCB018, can be a parental strain to get more hydrogen and other biochemicals from various biomass.
The present study was performed to improve the reproductive disturbance as well as the elimination of microbiological contamination for animals bred under conventional conditions followed by in vitro fertilization and embryo transfer techniques including embryo and sperm freezing, using a mouse strain(M. m. molossinus-tt@Kist) showing the abnormal behavior disorder derived from Korean wild mice (Mus musculus molossinus). Moreover, hematological and serum biochemical analyses were also carried out to obtain the basic data of this mouse strain The results are summarized as follows: 1. In comparison with hematological data, the numbers of RBC and platelet of this mouse strain were appeared as the higher value those that of the same aged inbred strains such as BALB/c, DBA/2, C57BL/6 and C3H /Hen. However, no differences were found in values of WBC, Hb and Ht. Moreover, total cholesterol of this strain showed a low value but triglyceride, total protein and albumin values were similar as in inbred strains. 2. The average numbers of superovulated oocytes treated with 2.5/2.5 IU and 5.0/5.0 IU of PMSG/hCG were 11.6 and 12.7, respectively. The fertilization rates of 2.5/2.5 IU PMSG /hCG treatment(87.9%) was higher than 5.0/5.0 IU treatment(52.0%) (p<0.05) and the developmental rate of 2 cell stage embryos were 외 so appeared as higher value 99.0% and 90.6%, respectively. 3. The rates of in vitro fertilization treated with frozen sperm(24.8%) was significantly lower than of that fresh sperm(87.9%), (p<0.05). 4. The five, six and ten heads of offspring were obtained from frozen-thawed 2 cell embryos by in vitro fertilized, 2 cell embryos from in vitro fertilized by frozen-thawed spermatozoa. and 2 cell embryos by in vitro fertilization, respectively. These offspring developed the expected disease about 2 weeks after birth, which was confirmed that the disease character of this mutant mouse strain was reliably reproduced. 5. MHV(Mouse hepatitis virus) and Staphylococcus aureus were successfully eliminated from conventional animals by in vitro fertilization-embryo transfer and the use of SPF recipient animals.
Kim Il-Sup;Yun Hae-Sun;Choi Hye-Jin;Sohn Ho-Yong;Yu Choon-Bal;Kim Jong-Guk;Jin Ing-Nyol
Journal of Life Science
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v.16
no.3
s.76
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pp.454-458
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2006
HSF1 is the heat shock transcription factor in Saccharomyces cerevisiae. S. cerevisiae KNU5377 can ferment at high temperature such as $40^{\b{o}}C$. We have been the subjects of intense study because Hsf1p mediates gene expression not only to heat shock, but to a variety of cellular and environmental stress challenges. Basing these facts, we firstly tried to construct the hsf1 gene-deleted mutant. PCR-method for fast production of gene disruption cassette was introduced in a thermotolerant yeast S. cerevisiae KNU5377, which allowed the addition of short flanking homology region as short as 45 bp suffice to mediate homologous recombination to kanMX module. Such a cassette is composed of linking genomic DNA of target gene to the selectable marker kanMX4 that confers geneticin (G418) resistance in yeast. That module is extensively used for PCR-based gene replacement of target gene in the laboratory strains. We describe here the generation of hsf1 gene disruption construction using PCR product of selectable marker with primers that provide homology to the hsf1 gene following separation of haploid strain in wild type yeast S. cerevisiae KNU5377. Yeast deletion overview containing replace cassette module, deletion mutant construction and strain confirmation in this study used Saccharomyces Genome Deletion Project (http:://www-sequence.standard.edu/group/yeast_deletion_project). This mutant by genetic manipulation of wild type yeast KNU5377 strain will provide a good system for analyzing the research of the molecular biology underlying their physiology and metabolic process under fermentation and improvement of their fermentative properties.
Outer membrane proteins (OMPs) expressed in the Gram negative bacteria such as Salmonella play multiple functions including material transports, adhesive factors and reception of external signals. This study has been focused on an OmpW protein known as a protein required to form a hydrophobic porin in outer membrane. We have constructed a S. typhimurium CK10 mutant deleting an ompW gene on chromosome. The CK10 strain was more tolerant to SDS than the wild-type strain did. As increase of salt concentration in the culture media, significantly decreased amount of OmpW protein in cells were detected. The maximum OmpW protein was expressed in the absence of salt supplement. However, the growth of CK10 strain was indistinguishable compared to that of the wild-type strain at the variable osmotic conditions. The biological role of differential OmpW expression in response to osmotic conditions remains to be investigated.
Seo, Dong-Jun;Yeo, Soo-Hwan;Mun, Ji-Young;Jung, Woo-Jin;Cho, Yong Sik;Baek, Seong Yeol
Food Science and Preservation
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v.22
no.6
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pp.908-914
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2015
The objectives of this study were to isolate and characterize low temperature adaptation yeast and to obtain suitable yeasts strains for manufacturing Yakju. In this study, we isolated 482 wild yeasts from fermented foods. Out of these, 5 yeast strains were selected based on increased growth at low temperature ($15^{\circ}C$) and high ${\beta}$-glucosidase activity. To screen the aromatic level of isolates, media containing cerulenin and 5,5,5-trifluor-DL-leucine (TFL) were used. Y297 strain demonstrated tolerance against TFL and produced more than 13% alcohol. Y297 strain was identified a Saccharomyces cerevisiae based on the 26S rDNA gene sequences. Maximum cell growth was observed after 19 hr and 38 hr of incubation at $25^{\circ}C$ and $15^{\circ}C$, respectively. The exponential phase was followed by a lengthy stationary phase, at $15^{\circ}C$, when the cells remained high viable. Y297 strain demonstrated tolerance against alcohol (10%), glucose (60%) and salt(NaCl, 8%). ${\beta}$-glucosidase and esterase activity in Y297 were higher than those of controls at $15^{\circ}C$. Overall, these results indicated that using wild yeast strain, isolated from fermented food, affects the chemical characteristics of the brewed Yakju.
Mutant strain EID was developed by treating Gordona sp. CYKS1 with ethylmethanesulfone, and the desulfurization characteristics of dibenzothiophene(DBT) by mutant EID was investigated. Strain EID desulfurized DBT to 2-hydroxybiphenyl (2-HBP) by 4S pathway. Desulfurization rate of the strain EID was $4.0{\mu}mol{\cdot}L^{-1}{\cdot}h^{-1}$, while that of the wild type CYKS1 was $2.6{\mu}mol{\cdot}L^{-1}{\cdot}h^{-1}$. The effect of glucose concentration supplied as the carbon source on the DBT desulfurization showed that DBT desulfurization rate was enhanced as the glucose concentration increased. Maximum DBT desulfurization rate was $11.1{\mu}mol{\cdot}L^{-1}{\cdot}h^{-1}$ at 2.0 mM DBT concentration. As end-products such as 2-HBP and sulfate concentrations increase, DBT desulfurization activity of the strain EID decreased. When 0.2 mM of 2-HBP was added in the medium, no growth and desulfurization activity was observed. When 0.5 g/L $Na_2SO_4$ was simultaneously supplied with DBT, DBT desulfurization rate was$1.4{\mu}mol{\cdot}L^{-1}{\cdot}h^{-1}$.
Effect of plasmid curing of Acinetobacter sp. B-W on the production of siderophore from glutamic acid as both carbon and nitrogen sole sources was investigated. Plasmid cured mutant of strain B-W lost the ability to produce siderophore from glutamic acid at $28^{\circ}C$. Transformant E. coli $DH5{\alpha}$ harboring 20 kb plasmid, that was isolated from wild type of strain B-W produced siderophore from glutamic acid as both carbon and nitrogen sole sources at $28^{\circ}C$, but, not at $36^{\circ}C$. Production of siderophore from glutamic acid by transformant E. coli $DH5{\alpha}$ was completely inhibited by $10{\mu}M\;FeCl_3$. In previous report, catechol nature of siderophore produced from glutamic acid by strain B-W was detected by Arnow test. The siderophore produced from glutamic acid by transformant E. coli $DH5{\alpha}$ was also catechol type. Rf value of siderophore produced from transformant E. coli $DH5{\alpha}$ grown in medium glutamic acid as both carbon and nitrogen sole sources at $28^{\circ}C$ was 0.32 in butanol-acetic acid-water (12:3:5) as developing solvent. Rf value of the siderophore was the same with that of wild type of strain B-W. Thus a single plasmid of 20 kb seemed to be involved in the production of siderophore from glutamic acid.
El Khoury, Pamela;Salameh, Carell;Younes, Samer;Awad, Andy;Said, Yana;Khalaf, Roy A.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.11
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pp.1806-1816
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2019
Candida albicans is an opportunistic fungus possessing multiple virulence factors controlling pathogenicity. Cell wall proteins are the most important among these factors, being the first elements contacting the host. Ddr48 is a cell wall protein consisting of 212 amino acids. A DDR48 haploinsufficient mutant strain was previously found necessary for proper oxidative stress response and drug resistance. In this study, we aimed to further elucidate the role of Ddr48 by performing additional phenotypic characterization assays. A combinatory proteomic and bioinformatics approach was also undertaken to determine differentially expressed cell wall proteins. Results showed that the mutant strain exhibited a 10% decrease in adhesion mirrored by a 20% decrease in biofilm formation, and slight sensitivity to menadione, diamide, and SDS. Both strains showed similar hyphae formation, virulence, temperature tolerance, and calcofluor white and Congo red sensitivities. Furthermore, a total of 8 and 10 proteins were identified exclusively in the wild-type strain grown under filamentous and non-filamentous conditions respectively. Results included proteins responsible for superoxide stress resistance (Sod4 and Sod6), adhesion (Als3, Hyr4, Pmt1, and Utr2), biofilm formation (Hsp90, Ece1, Rim9, Ipp1, and Pra1) and cell wall integrity (Utr2 and Pga4). The lack of detection of these proteins in the mutant strain correlates with the observed phenotypes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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