송충(Dendrolimus spectabilis)의 변태에 따른 succinic dehydrogenase 의 활성도를 Thunberg 관법을 이용하여 측정하였다. 일반적으로 생성도의 변동은 기관발생과 밀접한 관계를 가지고있으며 각 기관에 있어서의 활성도는 아래와같다. 1. Gut는 여러 기관중 제일 높은 활성도를 보여주며 fat body 와 더불어 U자 모양 curve의 활성도를 나타내고 있다. 2. Brain 과 testis 는 상승의 활성도를 보여주었다. 3. Body wall 과 verve cord의 활성도는 불규칙적이었다.
Succinic semialdehyde dehydrogenase (SSADH) catalyzes the oxidation of succinic semialdehyde (SSA) into succinic acid in the final step of ${\gamma}$-aminobutyric acid degradation. Here, we characterized Bacillus subtilis SSADH (BsSSADH) regarding its cofactor discrimination and substrate inhibition. BsSSADH showed similar values of the catalytic efficiency ($k_{ca}t/K_m$) in both $NAD^+$ and $NADP^+$ as cofactors, and exhibited complete uncompetitive substrate inhibition at higher SSA concentrations. Further analyses of the sequence alignment and homology modeling indicated that the residues of catalytic and cofactor-binding sites in other SSADHs were highly conserved in BsSSADH.
Rat brain succinic semialdehyde dehydrogenase (EC 1.2.1.24 SSADH) activity was detected in mitochondrial, cytosolic and microsomal fractions. Brain mitochondrial soluble SSADH was purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE Sephacel, and 5'-AMP Sepharose 4B affinity chromatography. The purified enzyme was shown to consist of four identical subunits, and the molecular weight of a subunit was 55 kD. The $K_m$ for short chain aliphatic aldehydes and aromatic aldehydes were at the $10^{-3}M$ level but that for succinic semialdehyde was 2.2 ${\mu}M$. Either $NAD^+$ or $NADP^+$ can be used as a cofactor but the affinity for $NAD^+$ was 10 times higher than that for $NADP^+$. The brain cytosolic SSADH was also purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE Sephacel, Blue Sepharose CL-6B and 5'-AMP Sepharose 4B affinity chromatography and its Km for short chain aliphatic aldehydes was at the $10^{-3}$ level but that for succinic semialdehyde was 3.3 ${\mu}M$. $NAD^+$ can be used as a cofactor for this enzyme. We suppose that both enzyme might participate in the oxidation of succinic semialdehyde, which is produced during GABA metabolism. The activity of both cytosolic and mitochondrial SSADH was markedly inhibited when the concentration of succinic semialdehyde was high. The reciprocal plot pattern of product inhibition and initial velocity indicated a sequential ordered mechanism for mitochondrial matrix SSADH. Chemical modification data suggested that amino acid residues such as cysteine, serine and lysine might participate in the SSADH reaction.
The succinic semialdehyde dehydrogenase from bovine brain was inactivated by treatment with phenylglyoxal, a reagent that specifically modifies arginine residues. The inhibition at various phenylglyoxal concentrations shows pseudo-first-order kinetics with an apparent secondorder rate constant of 30 $M^{-1}min^{-1}$ for inactivation. Partial protection against inactivation was provided by the coenzyme $NAD^+$, but not by the substrate succinic semialdehyde. Spectrophotometric studies indicated that complete inactivation of the enzyme resulted from the binding of 2 mol phenylglyoxal per mol of enzyme. These results suggest that essential arginine residues, located at or near the coenzyme-binding site, are connected with the catalytic activity of brain succinic semialdehyde dehydrogenase.
Jang, Eun Hyuk;Park, Seong Ah;Chi, Young Min;Lee, Ki Seog
Molecules and Cells
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v.37
no.10
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pp.719-726
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2014
The ${\gamma}$-Aminobutyric acid (GABA) that is found in prokaryotic and eukaryotic organisms has been used in various ways as a signaling molecule or a significant component generating metabolic energy under conditions of nutrient limitation or stress, through GABA catabolism. Succinic semialdehyde dehydrogenase (SSADH) catalyzes the oxidation of succinic semialdehyde to succinic acid in the final step of GABA catabolism. Here, we report the catalytic properties and two crystal structures of SSADH from Streptococcus pyogenes (SpSSADH) regarding its cofactor preference. Kinetic analysis showed that SpSSADH prefers $NADP^+$ over $NAD^+$ as a hydride acceptor. Moreover, the structures of SpSSADH were determined in an apo-form and in a binary complex with $NADP^+$ at $1.6{\AA}$ and $2.1{\AA}$ resolutions, respectively. Both structures of SpSSADH showed dimeric conformation, containing a single cysteine residue in the catalytic loop of each subunit. Further structural analysis and sequence comparison of SpSSADH with other SSADHs revealed that Ser158 and Tyr188 in SpSSADH participate in the stabilization of the 2'-phosphate group of adenine-side ribose in $NADP^+$. Our results provide structural insights into the cofactor preference of SpSSADH as the gram-positive bacterial SSADH.
This study was performed to produce succinic acid from biomass by developing mutants of Cellulomonas flavigena in which the succinate dehydrogenase gene (sdh) is deleted. For development of succinate producing mutants, the upstream and downstream regions of sdh gene from C. flavigena and antibiotic resistance gene (neo, bla) were inserted into pKC1139, and the recombinant plasmids were transformed into Escherichia coli ET12567/pUZ8002 which is a donor strain for conjugation. C. flavigena was conjugated with the transformed E. coli ET12567/pUZ8002 to induce the deletion of sdh in chromosome of this bacteria by double-crossover recombination. Two mutants (C. flavigena H-1 and H-2), in which sdh gene was deleted in the chromosome, were constructed and confirmed by PCR. To estimate the production of succinic acid by the two mutants when the culture broth was fermented with biomass such as CMC, xylan, locust gum, and rapeseed straw; the culture broth was analyzed by HPLC analysis. The succinic acid in the culture broth was not detected as a fermentation products of all biomass. One of the reasons for this may be the conversion of succinic acid to fumaric acid by sdh genes (Cfla_1014 - Cfla_1017 or Cfla_1916 - Cfla_1918) which remained in the chromosomal DNA of C. flavigena H-1 and H-2. The other reason could be the conversion of succinyl-CoA to other metabolites by enzymes related to the bypass pathway of TCA cycle.
80% Aqueous MeOH extracts from the wood of Caesalpinia sappan, which showed remarkable anticonvulsant activity, were fractionated using EtOAc, n-BuOH, and $H_2$O. Among them, the EtOAc fraction significantly inhibited the activities of two GABA degradative enzymes, succinic semialdehyde dehydrogenase (SSADH) and succinic semialdehyde reductase (SSAR). Repeated column chromatographies for the fraction guided by activity test led to the isolation of the two active principal components. Their chemical structures were determined to be sappanchalcone and brazilin based on spectral data. The pure compounds, sappanchalcone (1) and brazilin (2), inactivated the SSAR activities in a dose dependent manner, whereas SSADH was inhibited partially by sappanchalcone and not by brazilin.
Isolation of the toxic substance which was produced by Streptentyces sp. and it's biorhemical characterestics and toxicity to fishes were reported in the previous paper. The present report includes antibiotic activity of the substance, inhibitory activity of the substance on the succinic dehydrogenase of fishes, and its effect on the blood corpuscles of a rabbit. An evident antibiotic activity of this substance was observed on Candida yeasts, but n$ot^1$on molds or bacteria. The substance inhibited the growth of Candida japonica and C. utilis to the 50% at the concentrations of 7.5 and 10.2ug per ml, respectively. The activity of succinic dehydrogenase obtained from various organs of Cyprinous carpio L. was also found to be inhibited by this substance. Original activities of the enzymes from tht brain, kidney, and liver, were inhibited by 75.4%, 38.2%, and 26.2%, respectively, but not the enzymes from the heart and spleen. Neither leukopenia nor leukocytosis was detected after the intravenous administration of the substince to the rabbit at the level of 6 mg per 2 kg body weight.
In our search for the anticonvulsant consitutent of Gastrodia elata repeated column chromatographies guided by activity assay led to isolation of an active compound, which was identified as gastrodin on the basis of spectral data. Brain succinic semialdehyde dehydrogenase (SSADH) was inactivated by preincubation with gastrodin in a time-dependent manner and the reaction was monitored by absorption and fluorescene spectroscopic methods. The inactivation followed pseudo-first-order kinetics with the second-rate order constant of $1.2{\times}10^{3} M^{-1} min^{-1}$. The time course of the reaction was significantly affected by the coenzyme NAD^{+}$, which affected complete protection against the loss of the catalytic activity, whereas substrate succinic semialdehyde failed to prevent the inactivation of the enzyme. It is postulated that the gastrodin is able to elevate the neurotransmitter GABA levels in central nervous system by inhibitory action on one of the GABA degradative enzymes, SSADH.
So, Jai-Hyun;Lim, Yu-Mi;Kim, Sang-Jun;Kim, Hyun-Ho;Rhee, In-Koo
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.56
no.2
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pp.89-93
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2013
Gamma-aminobutyric acid (GABA) aminotransferase (gabT) and succinic semialdehyde dehydrogenase (gabD) genes from Pseudomonas fluorescens KCCM 12537 were cloned into a single pETDuet-1 vector and co-expressed in Escherichia coli BL21(DE3) simultaneously. The mixture of both enzymes, called GABase, is the key enzyme for the enzymatic analysis of GABA. The molecular mass of the GABA aminotransferase and succinic semialdehyde dehydrogenase were determined to be 52.8 and 46.7 kDa following computations performed with the pI/Mw program, respectively. The GABase activity between pH 6.0 and 9.0 for 24 h at $4^{\circ}C$ remained over 75%, but under pH 6.0 decreased rapidly. The GABase activity between 25 and $35^{\circ}C$ by the treatment at pH 8.6 for 30 min remained over 80%, but over $35^{\circ}C$ decreased rapidly. When the activity against GABA was defined as 100%, the purified GABase activity against 5-aminovaleric acid having a similar structure to GABA showed 47.7% and GABase activity against ${\beta}$-alanine, ${\varepsilon}$-amino-n-caproic acid, $_L$-ornithine, $_L$-lysine, and $_L$-aspartic acid showed between 0.3 to 2.3%. The GABA content was analyzed with this co-expressed GABase, compared with the other GABase which was available commercially. As a result, the content of GABA extracted from brown rice, dark brown rice, and black rice were $26.4{\pm}3.5$, $40.5{\pm}4.7$ and $94.7{\pm}9.3{\mu}g/g$, which were similar data of other GABase in the error ranges.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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