The harmful effects of succinic acid and oxidative stress on cell growth were determined during batch fermentation with Mannheimia succiniciproducens LPK7, a powerful succinic acid-producing strain, and conditions were optimized to minimize these effects. In terms of toxicity, the cell concentration decreased as the concentration of succinic acid increased. By changing the pH from 6.5 to 7 during fermentation, the cell concentration increased by about 10%, and the level of succinic acid production was 6% higher than that of the control. In addition, by introducing protectants, the cell concentration increased by about 10%, and the level of succinic acid produced was increased by 3%.
The timing of poly(3-Hydroxybutyrate) (PHB) biosynthesis was controlled by varying the agitation speed of a stirred tank fermentor during the pH-stat fed-batch culture of recombinant Escherichia coli strain GCSC 6576 harboring pSYL107. Using a concentrated whey solution containing ca. 200 g/l lactose as the nutrient feed, the PHB content was only 57% after 35h due to volumetric limitation of the fermentor. However, by limiting the oxygen by maintaining the agitation speed at 300 rpm, the final PHB content increased to 70% after 70h with a cell concentration of 15 g/l. When the agitation speed was increased up to 500 rpm, a cell concentration of 31 g/l with 80% PHB was obtained after 52h. A further increase in the maximum agitation speed increased the cell concentration, PHB concentration, and PHB productivity, however, the PHB content decreased to 56-58%.
As a primary study for cell growth and alcohol production of a cider yeast, Saccharomyces sp. R-11, cultural and nutritional characteristics of the strain were investigated. The results obtained were as follows: The optimum culture medium for this strain was a synthetic medium, Henneberg B, and sucrose was the best carbon source for yeast growth and alcohol production. Optimum sugar concentrations for yeast growth and alcohol production were 15% and 25%, respectively. Optimum pH and temperature of the basal medium for growth of this strain were 4.5 and $30^{\circ}C$ respectively. The yeast growth was enhanced by the addition of 100 ppm of $Mg^{2+}$, but significantly inhibited by the addition of 100 ppm of $Co^{2+}$. Lower temperature and maintenance of optimum pH for yeast growth increased the final alcohol concentration. Under optimum condition for cell growth at stationary culture, generation time and specific growth rate of the strain were 7.5 hr and 0.092 $hr^{-1}$, respectively. At 8% initial alcohol concentration, yeast growth was inhibited about 50% and this strain could not be grown at more than 12% initial alcohol. The strain could be grown at less than 125ppm $SO_2$without alcohol addition, and at less than 75 ppm $SO_2$ with 8% initial alcohol. The higher sulfur dioxide concentration of a medium, the longer lag phase in yeast growth was observed. This strain could induced alcoholic fermentation at less than 10% initial alcohol concentration with 0 and 25 ppm $SO_2$, at less than 8% initial alcohol with 50 and 75 ppm $SO_2$, and at less than 6% initial alcohol with 100 and 125 ppm $SO_2$.
An experiment was conducted with twenty crossbred male calves (7-15 days old) divided into 4 different experimental groups on the basis of body weights to study the effect of vitamin E supplementation on the serum ${\alpha}$-tocopherol concentration and immune response of the calves. All the calves were fed on milk and calf starter up to 13 weeks and afterwards, they were fed on concentrate mixture and oat hay up to 32 weeks of age. In addition, the calves in groups I, II, III and IV were supplemented with 0, 125, 250 and 500 IU feed grade DL-${\alpha}$-tocopheryl acetate, respectively. Blood samples were collected at 0 day and subsequently at 1, 2, 3, 4, 6 and 8 months of age to monitor the serum ${\alpha}$-tocopherol concentration in crossbred calves. After 24 weeks of experimental feeding, 4 animals from each group were intramuscularly inoculated with single dose (3 ml) of Haemorrhagic septiceaemia (Pasteurella multocida P52 strain) oil adjuvant vaccine. The cumulative group mean serum ${\alpha}$-tocopherol concentration (${\mu}g/100ml$) was 88.12, 210.11, 235.21 and 294.02 in-groups I, II, III and IV, respectively and differed significantly (p<0.001) among the four groups. Lymphocyte stimulation indices (LSI) did not differ among the groups significantly. The pooled mean ELISA antibody titer against Pasteurella multocida (P52 strain) was 788.02, 926.85, 1,214.00 and 1,109.51 for group I, II, III and IV, respectively, which indicated higher antibody titer in groups supplemented with vitamin E as compared to the control group. It may be concluded that vitamin E supplementation increased the ${\alpha}$-tocopherol concentration in serum and dietary supplementation of vitamin E at higher level has a humoral immune enhancing effect against killed bacterial antigen.
The axisymmetric methane-air counterflow flame was simulated to investigate changes in the flame structure due to the fuel concentration and to evaluate the numerical method. The global strain rates $a_g=20,\;60,\;90\;s^{-1}$ and the mole fractions of methane $x_m=20,\;50,\;80\%$ in the fuel stream were taken to be numerical parameters. The axisymmetric simulation was conducted by using the Fire Dynamics Simulator (FDS) which employed a mixture fraction combustion model, and the results were compared with those of OPPDIF, which is an one-dimensional flamelet code and includes detail chemical reactions. In all the cases tested, there was good agreement in the temperature and axial velocity profiles between the axisymmetric and one-dimensional simulations. It was shown that the flame thickness and peak flame temperature increase and the flame radius decreases as the fuel concentration increases.
To yield high concentrations of protein expressed by genetically modified Escherichia coli, it is important that the bacterial strains are cultivated to high cell density in industrial bioprocesses. Since the expressed target protein is mostly accumulated inside the E. coli cells, the cellular product formation can be directly correlated to the bacterial biomass concentration. The typical way to determine this concentration is to sample offline. Such manual sampling, however, wastes time and is not efficient for acquiring direct feedback to control a fedbatch fermentation. An E. coli K12-derived strain was cultivated to high cell density in a pressurized stirred bioreactor on a pilot scale, by detecting biomass concentration online using a capacitance probe. This E. coli strain was grown in pure minimal medium using two carbon sources (glucose and glycerol). By applying exponential feeding profiles corresponding to a constant specific growth rate, the E. coli culture grew under carbon-limited conditions to minimize overflow metabolites. A high linearity was found between capacitance and biomass concentration, whereby up to 85 g/L dry cell weight was measured. To validate the viability of the culture, the oxygen transfer rate (OTR) was determined online, yielding maximum values of 0.69 mol/l/h and 0.98mol/l/h by using glucose and glycerol as carbon sources, respectively. Consequently, online monitoring of biomass using a capacitance probe provides direct and fast information about the viable E. coli biomass generated under aerobic fermentation conditions at elevated headspace pressures.
The electrokinetic technology was applied in bioremediation for the purpose of supplying a Pseudomonas strain capable of degrading diesel to contaminated soil bed, and their biodegradation of diesel was carried out after a desired cell distribution was obtained. Electrokinetic injection of the strain was made possible because the cells acted as negatively charged particles at neutral pH, and thus the cells were transported with a precise directionality through the soil mostly by the mechanism of electrophoresis and in part by electroosmosis. A severe pH change in the soil bed was formed due to the penetration of electrolysis products, which was harmful to the cell viability and cell transport. To achieve a desirable cell transport and distribution, the control of pH in soil bed by a recirculating buffer solution in electrode chambers was essential during the appliation of an electric field. The judicious selections of electrolyte concentration and conductivity were also important for achieving an efficient electrokinetic cell transport since a higher electrolyte concentration favored the maintenance of pH stability in soil bed, but lowered electrophoretic mobility on the other hand. With electrolyte solution of pH 7 phosphate buffer, a 0.05 M concentration showed a better cell transport buffer, a 0.05 M concentration showed a better cell transport than 0.02 M and 0.08 M. The cell under pH 8 were obtained, compared to the cells under pH 7 or pH 9 in a given time period Up to $60\%$ of diesel was degraded in 8 days by the Pseudomonas cell, which were distributed electrokinetically under the conditions of pH 8 ($1,800{\mu}S/cm$, a mixture of phosphate and ammonia buffers) and 40 mA in a soil bed of 15 cm length.
Glutamate availability in the argF-argR-proB${\Delta}$ strain of Corynebacterium glutamicum was increased by addition of glutamate to the cell or inactivation of the phosphoenolpyruvate carboxykinase activity and simultaneous overexpression of the pyruvate carboxylase activity to assess its effect on L-ornithine production. When glutamate was increased in an L-ornithine-producing strain, the production of L-ornithine was not changed. This unexpected result indicated that the intracellular concentration and supply of glutamate is not a rate-limiting step for the L-ornithine production in an L-ornithine-producing strain of C. glutamicum. In contrast, overexpression of the L-ornithine biosynthesis genes (argCJBD) resulted in approximately 30% increase of L-ornithine production, from 12.73 to 16.49 mg/g (dry cell weight). These results implied that downstream reactions converting glutamate to L-ornithine, but not the availability of glutamate, is the rate-limiting step for elevating L-ornithine production in the argF-argR-proB${\Delta}$ strain of C. glutamicum.
A mutant of Arthrospira platensis PCC 9108, strain M9108, obtained by mutagenesis with UV treatment, was able to mixotrophically grow in an SOT medium containing 40 g of glucose/l. The biomass and specific growth rate of strain M9108 (4.10 g/l and 0.70/d) were 1.9-fold and 1.4-fold higher, respectively, than those of the wild type (2.21 g/l and 0.58/d) under mixotrophic culture condition. In addition, when compared with the wild type, the content of ${\gamma}$-linolenic acid (GLA) in the mutant was increased when glucose concentration was increased. Compared with the wild type, the GLA content of the mutant was 2-fold higher in autotrophic culture and about 3-fold higher in mixotrophic culture. Thus, the mutant appears to possess more efficient facility to assimilate and metabolize glucose and to produce more GLA than its wild-type strain.
The objective of this study was to investigate the effect of high content of light-absorbing pigments on overall photosynthetic efficiency in high density microalgal cultures. The light harvesting complex II (LHC II) regulating gene of Rhodobacter sphaeroides, photosynthetic purple bacterium, was removed to construct a mutant strain that had less pigment content. The mutant and wild type strains were cultured under various light intensity by adjusting the distance from the light source. The productivity of the mutant strain was higher at high light intensity (over 118 ${\mu}E/m^2/s$) compared with one of the wild type , and was lower at low light intensity (34 ${\mu}E/m^2/s$). Especially, the concentration of LHC II mutant strain was 56% higher at 118 ${\mu}E/m^2/s$. The reduction of per cell pigment contents in the mutant strain lessened the degree of the mutual shading and thus enhanced the overall photosynthetic efficiency.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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