Escherichia coli has been used as an expression work horse for foreign genes. This article summarized recent development in genetic engineering techniques for overproduction of medical proteins and industrial enzymes. Special emphasis was placed upon research activities concerning folding and refolding of inclusion bodies at genetic and fermentation levels. Plasmid and mRNA stabilization, development of strong inducible promoters, modification of translational elements and reduction of rpoteolytic degradation were carried out to elevate an expression level of a target protein. Optimization of culture conditions, improvement of denaturation and renaturation steps and coexpression of molecular chaperones or foldase were accomplished to produce active proteins in soluble form. Fusion protein systems with selective separation and surface display technology were also performed in an effort to make the E. coli expression system more effective and versatile.
Pathophysiological implications of the vascular nitric oxide (NO)/cGMP pathway in hypertension were investigated. Sprague-Dawley rats were made deoxycorticosterone acetate (DOCA)-salt hypertensive for six weeks. The protein expression of endothelial constitutive NO synthase (ecNOS) and the tissue content of NO were determined in the thoracic aorta. The protein expression and catalytic activity of soluble guanylyl cyclase (GC) were also determined. Systolic blood pressure measured on the day of experiment was significantly higher in the experimental group than in the control. The hypertension was associated with decreases in the vascular tissue content of NO metabolites, concomitantly with the expression of ecNOS proteins. The protein expression of GC was not affected, while its catalytic activity was significantly decreased in hypertension. These results indicate that the high blood pressure is associated with a decreased activity of vascular NO/cGMP pathway in DOCA-salt hypertension.
Yi, Jong-Jae;Yoo, Jung Ki;Kim, Jin Kyeoung;Son, Woo Sung
한국자기공명학회논문지
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제17권1호
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pp.30-39
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2013
Immortalization-upregulated protein-1 (IMUP-1) genes have been cloned and are known to be involved in SV40-mediated immortalization. IMUP-1 gene is highly expressed in various cancer cell lines and tumors, suggesting the possibility that they might be involved in tumorigenicity. Previously, there were several problems for overexpression of IMUP-1 in bacterial expression systems including low solubility and aggregation due to unstructured property. To investigate the structural properties, it is necessary to obtain lots of pure and soluble proteins. Accordingly, the co-expression systems of bacterial chaperone proteins, GroEL-GroES, were used to increase solubility of IMUP-1. From the analysis of NMR and CD experiment data, it is suggested that the protein adopt typical the random coil properties in solution.
Manganese superoxide dismutase (MnSOD) is a vital enzyme that protects cells from free radicals through eliminating superoxide radicals ($O^{2-}$). Hirudin, a kind of small active peptide molecule, is one of the strongest anticoagulants that can effectively cure thrombus diseases. In this study, we fused Hirudin to the C terminus of human MnSOD with the GGGGS linker to generate a novel dual-feature fusion protein, denoted as hMnSOD-Hirudin. The hMnSOD-Hirudin gene fragment was cloned into the pET15b (SmaI, CIAP) vector, forming a recombinant pET15b-hMnSOD-Hirudin plasmid, and then was transferred into Escherichia coli strain Rosetta-gami for expression. SDS-PAGE was used to detect the fusion protein, which was expected to be about 30 kDa upon IPTG induction. Furthermore, the hMnSOD-Hirudin protein was heavily detected as a soluble form in the supernatant. The purification rate observed after Ni NTA affinity chromatography was above 95%. The hMnSOD-Hirudin protein yield reached 67.25 mg per liter of bacterial culture. The identity of the purified protein was confirmed by western blotting. The hMnSOD-Hirudin protein activity assay evinced that the antioxidation activity of the hMnSOD-Hirudin protein obtained was $2,444.0{\pm}96.0U/mg$, and the anticoagulant activity of the hMnSOD-Hirudin protein was $599.0{\pm}35.0ATU/mg$. In addition, in vitro bioactivity assay showed that the hMnSOD-Hirudin protein had no or little cytotoxicity in H9c2, HK-2, and H9 (human $CD_4{^+}$, T cell) cell lines. Transwell migration assay and invasion assay showed that the hMnSOD-Hirudin protein could suppress human lung cancer 95-D cell metastasis and invasion in vitro.
Je, Yeon-Ho;Roh, Jong-Yul;Li, Ming-Shun;Chang, Jin-Hee;Shim, Hee-Jin;Jin, Byung-Rae;Boo, Kyung-Saeng
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제8권2호
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pp.145-149
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2004
The expression of a fusion protein comprised of the B. thuringiensis crystal protein, Cry1Ac, and enhanced green fluorescent protein (EGFP) in Escherichia coli XLl-blue was examined. Three recombinant plasmids were transformed into E. coli XL1-blue and named as ProAc/Ec, MuEGFP/Ec and ProMu-EGFP/Ec, respectively. All transformants were observed by light and fluorescence microscopy at mid-log phase. The expression in E. coli transformants, ProMu-EGFP/Ec and MuEGFP/Ec, exhibited bright enough fluorescence to be observed. Furthermore, ProMu-EGFP/Ec produced fluorescent inclusions, which may have been recombinant crystals between EGFP and Cry1Ac while MuEGFP/Ec expressed soluble EGFP in cell. In SDS-PAGE, ProAc/Ec had 130 kDa crystal protein band and MuEGFP/Ec had thick 27 kDa EGFP band. However, ProMu-EGFP/Ec had about 150 kDa fusion protein band. Accordingly, these results indicated that a fusion protein between the B. thuringiensis crystal protein and a foreign protein under the lacZ promoter was successfully expressed as granular structure in E. coli. It is suggested that the E. coli expression system by N-terminal fusion of B. thuringiensis crystal protein may be useful as excellent means for fusion expression and characterization of B. thuringiensis fusion crystal protein.
The full encoding sequence for human type II hexokinase (HXK II) was cloned into the E. coli expression vector pET 21b and expressed as a C-terminally hexahistidine-tagged protein in the BL2l (DE3) strain. The IPTG-induced HXK II approximately accounted for 17% of the total E. coli proteins, and 81% of HXK $II_{6{\times}His}$ existed in inclusion bodies. To improve the production of soluble recombinant HXK II protein, in the functionally active form, we used low temperature, and the osmotic stress expression method. When expressed at $18^{\circ}C$, about 83% of HXK $II_{6{\times}His}$ existed in the soluble fraction, which amounted to a 4.1-fold yield over that expressed at $37^{\circ}C$. The soluble form of HXK $II_{6{\times}His}$ was also highly produced in the presence of 1M sorbitol under the standard condition $(37^{\circ}C)$, which indicated that temperature downshift and low water potentials were required to improve the yield of active recombinant HXK II protein. The expressed protein was purified by metal chelate affinity chromatography performed in an IDA Excellose column charged with $Ni^{2+}$ ions, resulting in about 40mg recombinant HXK II protein obtained with purity over 89% from 51 of E. coli culture. The identity of HXK $II_{6{\times}His}$ was confirmed by Western blotting analysis. Taken together, using the stress-governed expression described in this study, human active HXK II can be purified in sufficient amounts for biochemical and biomedical studies.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제32권2호
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pp.90-97
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2016
The major structural proteins of porcine reproductive and respiratory syndrome virus (PRRSV) are derived from ORFs 4, 5, and 6. They have been considered very important to arouse the humoral and cellular immune responses against PRRSV infection and proposed to be the excellent candidate proteins in the design of PRRS bioengineering vaccine. However, the PRRSV structural proteins are produced in low levels in the infected cells because it forms insoluble protein and possesses several transmembrane regions. To overcome this problem, we fused the ORF4, ORF5, and ORF6 with SUMO (small ubiquitin-related modifier). The resulting fusion protein SUMO-ORF4, -ORF5, and -ORF6 were highly expressed in Bm5 cells. The level of protein expression using the Bombyx mori larvae was higher than that using Bm5 cells. In addition, fusion to SUMOstar, which is not processed by native SUMO proteases, significantly enhanced protein expression levels compared to SUMO fusion. This study demonstrated that SUMO or SUMOstar, when fused with PRRSV structural proteins, was able to promote its soluble expression. This may be a better method to produce PRRSV structural proteins for vaccine development.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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제8권1호
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pp.117-121
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2004
Soluble proteins of silkworm hemolymph were investigated by means of isoelectric focusing (IEF). The protein spectra during ontogenesis of races and inter-races hybrids kept in Bulgaria was studied. A total of 51 protein bands in the hemolymph from fourth larval instar to imago were ascertained. Stage specific expression was established. The specific expression of some protein bands in the individual spectra manifest phenotype of gene determinate polymorphism (HP F, HP J, HP K, HP L, HP Q - in the zone with pH gradient 3.5-6.2 and HP K, HP L, HP N, HP P, HP T - in the zone with pH gradient 9.5 - 6.2). Breed specific expression was observed. On the basis of the obtained results, it was established that the investigated breeds are heterogeneous and the isoelectric focusing method is successful when specifying the inner-race and inter-race polymorphism in silkworm.
As a part of the studies on the regulatory mechanism of gene expression by $GA_{3}$ , the effects of $GA_{3}$ on the protein biosynthesis and phosphorylation in maize seedlings were investigated. 1. The optimum concentration of $GA_{3}$ for the stimulation of the protein biosynthesis was 0.3mM. 2. The protein biosynthesis was remarkably increase by $GA_{3}$ during the germination. The reason for the decrease in the protein biosynthesis by 48hrs. after germination seems to be a staggered gene expression, and/or increases in protease and RNase activities. 3. The ratio of the amount of the newly synthesized protein in germinating seeds treated with $GA_{3}$ to the amount of proteins secreted into the endosperm was similar to that ratio in control. According to this result, it seems that $GA_{3}$ stimulates only the expression of certain definite genes. 4. By the treatment with $GA_{3}$, the rates of biosynthesis and phosphorylation of proteins were increased up to about 1.5 times during germination and 6 times by 72hrs. after germination, respectively. The ratio of the total soluble proteins to the phosphorpoteins considerably increased in the early germination stage (24hrs.) but decreased after 24hrs. According to the above mentioned results, the stimulation of the phosphorylation of proteins of $GA_{3}$ seems to be attributed to the increases in the activities of protein kinases.
Constructs, encoding a single-chain variable fragment of a catalytic antibody 4f4f (scFv-4f4f) with glycosidase activity, were made by combining the coding sequences for the heavy and light chain variable domains with a sequence encoding a linker (GGGGS). Using three different plasmid systems, single-chain antibodies were expressed separately in Escherichia coli, demonstrating significant differences in the expression level and amounts in soluble form of the recombinant protein. The protein expression from pET3a-scFv-4f4f was up to 20% of the total soluble proteins and, more importantly, the proteins were mostly found in a soluble form. An SDS-PAGE analysis of the purified single-chain proteins, yielding higher than 5mg from a 1-1 culture, showed a single band corresponding to its molecular weight of 29,100. A preliminary study shows that the expressed scFv-4f4f is catalytically active. The catalytic parameters for the hydrolysis of p-nitrophenyl-$\beta$-D-glucopyranoside by scFv-4f4f are being investigated.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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