A lysine histidine transporter (LHT) cDNA was isolated and characterized from the roots of Panax ginseng, designated PgLHT. The cDNA is 1,865 bp with an open reading frame that codes for a protein with 449 amino acids and a calculated molecular mass of 50.6 kDa with a predicted isoelectric point of 8.87. Hydropathy analysis shows that PgLHT is an integral membrane protein with 9 putative membrane-spanning domains. Multiple sequence alignments show that PgLHT shares a high homology with other plant LHTs. The expression profile of the gene was investigated by real-time quantitative polymerase chain reaction during various chemical treatments. PgLHT was up-regulated in the presence of abscisic acid, salicylic acid, methyl jasmonate, NaCl, and amino acids. To further explore the function of PgLHT gene, full-length cDNA of PgLHT was introduced into P. ginseng by Agrobacterium rhizogenes A4. The overexpression of PgLHT in the hairy roots led to an obviously increase of biomass compared to the controls, and after addition of the amino acids, the overexpressed-PgLHT hairy roots grew more rapidly than untreated controls during early stage of the culture cycle. The results suggested that the PgLHT isolated from ginseng might have role in the environmental stresses and growth response.
Candida (also known as Pseudozyma) antarctica lipase B (CAL-B) has been intensely studied in academic and industrial fields. However, the research related to its homologous enzymes has been rarely reported. In the current investigation, protein sequence similarity search of CAL-B has been conducted and six homologous protein sequences were identified. After the syntheses of their codon-optimized genes, the synthetic genes have been cloned into a periplasmic expression vector to express in Escherichia coli. Among six homologous sequences, four sequences were successfully expressed in E. coli. The hydrolytic activities of the expressed proteins towards 4-nitrophenyl acetate and 4-nitrophenyl butyrate were measured and compared with those of CAL-B to identify whether the expressed proteins work as a hydrolase. It has been revealed that the expressed proteins can hydrolyze the substrates and the specific activities were determined as $(1.3-30){\times}10^{-2}{\mu}mol/min/mg$, which are lower than those of CAL-B. Among these homologous enzymes, Pseudozyma hubeiensis SY62 exhibits the comparable enantioselectivity to that of CAL-B towards the hydrolysis of (${\pm}$)-1-phenylethyl acetate.
Transglutaminase from Streptomyces mobaraensis is an enzyme of unknown function that cross-links proteins to high molecular weight aggregates. Previously, we characterized two intrinsic transglutaminase substrates with inactivating activities against subtilisin and dispase. This report now describes a novel substrate that inhibits papain, bromelain, and trypsin. Papain was the most sensitive protease; thus, the protein was designated Streptomyces papain inhibitor (SPI). To avoid transglutaminase-mediated glutamine deamidation during culture, SPI was produced by Streptomyces mobaraensis at various growth temperatures. The best results were achieved by culturing for 30-50 h at $42^{\circ}C$, which yielded high SPI concentrations and negligibly small amounts of mature transglutaminase. Transglutaminasespecific biotinylation displayed largely unmodified glutamine and lysine residues. In contrast, purified SPI from the $28^{\circ}C$ culture lost the potential to be cross-linked, but exhibited higher inhibitory activity as indicated by a significantly lower $K_i$ (60 nM vs. 140 nM). Despite similarities in molecular mass (12 kDa) and high thermostability, SPI exhibits clear differences in comparison with all members of the wellknown family of Streptomyces subtilisin inhibitors. The neutral protein (pI of 7.3) shares sequence homology with a putative protein from Streptomyces lavendulae, whose conformation is most likely stabilized by two disulfide bridges. However, cysteine residues are not localized in the typical regions of subtilisin inhibitors. SPI and the formerly characterized dispase-inactivating substrate are unique proteins of distinct Streptomycetes such as Streptomyces mobaraensis. Along with the subtilisin inhibitory protein, they could play a crucial role in the defense of vulnerable protein layers that are solidified by transglutaminase.
Wang, Hai Yang;Lin, Zi Li;Yu, Xian Feng;Bao, Yuan;Cui, Xiang-Shun;Kim, Nam-Hyung
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.29
no.6
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pp.782-792
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2016
As the most common neurodegenerative diseases, Alzheimer's disease (AD) and Parkinson's disease (PD) are two of the main health concerns for the elderly population. Recently, microRNAs (miRNAs) have been used as biomarkers of infectious, genetic, and metabolic diseases in humans but they have not been well studied in domestic animals. Here we describe a computational biology study in which human AD- and PD-associated miRNAs (ADM and PDM) were utilized to predict orthologous miRNAs in the following domestic animal species: dog, cow, pig, horse, and chicken. In this study, a total of 121 and 70 published human ADM and PDM were identified, respectively. Thirty-seven miRNAs were co-regulated in AD and PD. We identified a total of 105 unrepeated human ADM and PDM that had at least one 100% identical animal homolog, among which 81 and 54 showed 100% sequence identity with 241 and 161 domestic animal miRNAs, respectively. Over 20% of the total mature horse miRNAs (92) showed perfect matches to AD/PD-associated miRNAs. Pigs, dogs, and cows have similar numbers of AD/PD-associated miRNAs (63, 62, and 59). Chickens had the least number of perfect matches (34). Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG) pathway analyses suggested that humans and dogs are relatively similar in the functional pathways of the five selected highly conserved miRNAs. Taken together, our study provides the first evidence for better understanding the miRNA-AD/PD associations in domestic animals, and provides guidance to generate domestic animal models of AD/PD to replace the current rodent models.
Kim, Ju-Hyeon;Oh, Jung-Mi;Chun, Sungkun;Park, Hye Yoon;Im, Wan Taek
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.30
no.3
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pp.391-397
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2020
In this study, we used a novel α-L-arabinopyranosidase (AbpBs) obtained from ginsenoside-converting Blastococcus saxobsidens that was cloned and expressed in Escherichia coli BL21 (DE3), and then applied it in the biotransformation of ginsenoside Rb2 into Rd. The gene, termed AbpBs, consisting of 2,406 nucleotides (801 amino acid residues), and with a predicted translated protein molecular mass of 86.4 kDa, was cloned into a pGEX4T-1 vector. A BLAST search using the AbpBs amino acid sequence revealed significant homology with a family 2 glycoside hydrolase (GH2). The over-expressed recombinant AbpBs in Escherichia coli BL21 (DE3) catalyzed the hydrolysis of the arabinopyranose moiety attached to the C-20 position of ginsenoside Rb2 under optimal conditions (pH 7.0 and 40℃). Kinetic parameters for α-L-arabinopyranosidase showed apparent Km and Vmax values of 0.078 ± 0.0002 μM and 1.4 ± 0.1 μmol/min/mg of protein against p-nitrophenyl-α-L-arabinopyranoside. Using a purified AbpBs (1 ㎍/ml), 0.1% of ginsenoside Rb2 was completely converted to ginsenoside Rd within 1 h. The recombinant AbpBs could be useful for high-yield, rapid, and low-cost preparation of ginsenoside Rd from Rb2.
Cinnamyl alcohol dehydrogenase (CAD, EC 1.1.1.95), catalyzes the reduction of hydroxycinnamaldehydes to give hydroxycinnamyl alcohols, or "monolignols," the monomeric precursors of lignin. Lignins are important components of cell walls and lignified secondary cell walls play crucial roles in long distance transport of water and nutrients during plant growth and development and in plant defense against biotic and abiotic stresses. Here a cDNA clone containing a CAD gene, named as PgCAD, was isolated from a commercial medicinal plant Panax ginseng. PgCAD is predicted to encode a precursor protein of 177 amino acid residues, and its sequence shares high homology with a number of other plant CADS. The expression of PgCAD in adventitious roots and hairy roots of P. ginseng was analyzed using reverse transcriptase (RT)-PCR under various abiotic stresses such as salt, salicylic acid, wounding and chilling treatment that triggered a significant induction of PgCAD at different time points within 2-48 h post-treatment. This study revealed that PgCAD may help the plants to survive against various abiotic stresses.
Ascorbic acid is a great antioxidant and helps protect the body against pollutants. GDP-mannose pyrophosphorylase (GMPase) is a key enzyme in manufacturing GDP-mannose, a glycosyl donor for ascorbate and cell wall biosynthesis as well as for protein glycosylation. In this study, we described molecular cloning of a full-length cDNA from Potato (Solanum tuberosum L. cv. Jasim), using tuber. The cDNA isolated encoded a GDP-mannose pyrophosphrylase. The nucleotide sequence of pGMPC showed about 95%, 89% and 80% homology with S. tuberosum (AF022716), N. tabacum (AB066279) and A. thaliana (AF076484) cDNAs clone known as GMPase, respectively. We detected the expression of GMPase using RT-PCR. The highest expression of GMPase was found in stems, and the largest amount of ascorbic acid was also presented in stems. In contrast, the leaf showed minimal level of GMPase transcript and ascorbic acid content. We propose that GMPase expression patterns were similar to the changes of ascorbic acid content in the leaves treated with diverse stresses.
Purpose: Porphyromonas gingivalis(P. gingivalis) heat shock protein (HSP)60 may play a role in the immunopathogenesis of periodontitis as well as atherosclerosis by modulating autoimmune reaction due to its high level of sequence homology between bacteria and human counterpart. The purpose of this study was to identify immunodomiant epitope of P. gingivalis HSP60 that is reactive exclusively to the homologous bacteria without reacting with human HSP. Materials and methods: The present study was performed to identify the peptide specifically recognized by anti-P. gingivalis HSP60 monoclonal antibodies mono-reactive to P. gingivalis HSP60. Results: Four different hybridomas were cloned producing monoclonal IgG antibodies exclusively to P. gingivalis HSP60. Thirty seven synthetic peptides (20-mer with 5-amino acid overlapping) were synthesized. All of these peptide were subject to SDS-PAGE for immunblot analysis. One peptide (TVPGGGTTYIRAIAALEGLK) and the other peptide (TLVVNRLRGSLKICAVKAPG) were recognized by all and one of the four monoclonal antibodies, respectively, that reacted solely with P. gingivalis HSP60. Immunohistochemistry to identify the localization of the HSP60 in the diseased gingival tissues revealed that all of the four monoclonal antibodies were highly reacted with the diseased gingival tissue than normal gingival tissue. Conclusion: The P. gingivalis HSP60 peptides (TVPGGGTTYIRAIAALEGLK and TLVVNRLRGSLKICAVKAPG, respectively) are positively involved in the immunopathologic process of periodontal disease. The peptide may potentially be developed as vaccine candidates. Further investigations are under way to identify more clones producing monoclonal antibodies reactive to P. gingivalis HSP and to other periodontopathogenic bacteria as well, while maintaining specificities to human counterpart.
A degenerate set of PCR primers based on two conserved regions (heme binding region and oxygen ligand pocket) were designed and successfully applied to amplify DNA fragments of cytochrome P450 hydroxylase (CYP) genes from a rare actinomycetes, S. benihana. The PCR amplified products were employed as a DNA probe to clone the entire CYP genes from S. benihana genomic library. Five different CYP-positive cosmids were isolated by colony hybridization as well as PCR confirmation. The complete nucleotide sequencing of five different CYP genes revealed that each unique CYP showed a significant amino acid homology to previously-known CYP genes involved in streptomycetes secondary metabolism. In addition, four CYP genes (CYP502, CYP503, CYP504, CYP506) were found to be linked to ferredoxin genes in the chromosome, and the CYP503 gene showed the high degree of amino acid similarity to the previously well-characterized CYP105 family in streptomycetes.
The lysozymes encoded by bacteriophage T7 and K11 are both bifunctional enzymes sharing an extensive sequence homology (75%). The constructions of chimeric lysozymes were carried out by swapping the N-terminal and C-terminal domains between phage T7 and K11 lysozymes. This technique generated two chimeras, T7K11-lysozyme (N-terminal T7 domain and C-terminal K11 domain) and K11T7-lysozyme (N-terminal K11 domain and C-terminal T7 domain), which are both enzymatically active. The amidase activity of T7K11-lysozyme is comparable with the parental enzymes while K11T7-lysozyme exhibits an activity that is approximately 45% greater than the wild-type lysozymes. Moreover, these chimeric constructs have optimum pH of 7.2-7.4 similar to the parental lysozymes but exhibit greater thermal stabilities. On the other hand, the chimeras inhibit transcription comparable with the parental lysozymes depending on the source of their N-terminals. Taken together, our results indicated that domain swapping technique localizes the N-terminal region as the domain responsible for the transcription inhibition specificity of the wild type T7 and K11 lysozymes. Furthermore, we were able to develop a simple and rapid purification scheme in purifying both the wild-type and chimeric lysozymes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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