MARTEN, MARK R.;NAM SOO HAN;JIN BYUNG PARK;JIN-HO SEO
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.9
no.5
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pp.576-581
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1999
Effects of signal sequences, protein sizes and dissolved oxygen on the secretion of human lysozyme from a recombinant yeast were experimentally characterized. The systems consisted of Saccharomyces cerevisiae host SEY2102 that was transformed with two different plasmids. These plasmids were identical with an exception to the plasmid pMC614, which contained the native yeast MFα1 sequence and the plasmid pMC632 with the non-native rat α-amylase signal sequence. The expression of human lysozyme was controlled by the ADHI promoter. The native yeast MFαl signal sequence was more efficient than the non-native rat α-amylase signal sequence in directing the secretion of human lysozyme. Lysozyme secreted with the α-amylase signal was retained inside the cells and released to the medium very slowly, thereby causing a lower cell growth rate and a decreased product secretion rate. Lysozyme was secreted more efficiently than invertase, which is an order of magnitude bigger in molecular size compared to lysozyme, which was under the direction of the MFαl signal sequence, suggesting that protein sizes may affect the secretion efficiency. When expressed in anaerobic conditions in the medium where the ADHI promoter was derepressed, the amount of lysozyme secreted was about twice higher than that of the aerobic culture. However, the secretion rates were identical. This result showed that the dissolved oxygen level may affect the efficiency of protein secretion only, and not the secretion rate of the product protein.
The monellin, a sweet-taste protein, was expressed and secreted in Saccharomyces cerevisiae. The secreted menellin was concentrated using an ultrafiltration membrane with a nominal molecular weight cut off of 3,000 or by ammonium sulfate precipitation. The monellin was purified by G-25 gel filtration chromatography, followed by CM-Sepharose ion exchange chromatography. The purified monellin was characterized by SDS-PAGE (SDS-Polyacrylamide Gel Electrophoresis) and PHLC. The molecular weight of monellin was found to be 10,700 dalton, and its purity was over 95%.
Proceedings of the Korean Society of Life Science Conference
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2002.12a
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pp.48-60
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2002
Granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) is a cytokine that stimulates the production of granulocytes, macrophages, and white blood cells. The effects of osmotic pressure on secretion of human GM-CSF into the culture medium were investigated in suspension cultures of transgenic tobacco cells. An increase in osmotic pressure caused by the addition of mannitol decreased the cell size index, with the effect being more pronounced when cells were measured wet rather than dry. Increased osmotic pressure enhanced the secretion of hGM-CSF. At 90 g/L mannitol, the maximum concentration tested, hGM-CSF was present in the culture medium at 980 ug/L. As the concentration of mannitol increased, the total amount of protein secreted also increased, but was disproportionately enriched in GM-CSF NaCl, another osmoticum, had very similar effects on cell growth and hGM-CSF production, but did not cause enrichment for hGM-CSF Additionally, protein-stabilizing polymer was added to culture broth to enhance stability of secreted recombinant protein. Finally, above two method were applied together to maximize the productivity.
Invasion process of bacterial cell into intestinal epithelium is important in Salmonella infection. The invasion is induced by the proteins secreted by type III secretion appratus of Salmonella. It has been known that the proteins do not have N-terminal signal peptide existing in general secreted proteins. Recent studies on Yersinia reported that secretion signal of type III appratus may lie on 5'end secondary structure of mRNA of secreted protein. In this study, we constructed translational fusion of ompR and sopE, encoding type III secretion protein of Salmonella, and observed secretion of the fusion protein for investigating the secretion signal of Salmonella type III appratus. The sopE DNA fragments of the translational fusion contain the region of promoter and from start code to tenth or to fifth code. These translational fusions indicate that type III secretion signal of Salmonella is located on 5'end of mRNA encoding secreted protein. We constructed prototype of secretion vector using this signal to produce useful foreign protein.
Despite several advances in identification of cardiac transcription factors, there are still needs to find new bioactive molecules that promote cardiomyogenesis from stem cells to highly efficient myocardial differentiation. We analyzed Illumina expression microarray data of mouse embryonic stem cells (mESCs)-derived cardiomyocytes. 276 genes were upregulated (≥ 4fold) in mESCs-derived cardiomyocytes compared undifferentiated ESCs. Secreted phosphoprotein 2 (Spp2) is one of candidates and is known to inhibit bone morphogenetic protein 2 (BMP2) signal transduction as a pseudoreceptor for BMP2. However, its function in cardiomyogenesis is unknown. We confirmed that Spp2 expression increased during the differentiation into functional cardiomyocytes using mESCs, TC-1/Kh2 and E14. Interestingly, Spp2 secretion transiently increased 3 days after formation of embryoid bodies (EBs), indicating that the extracellular secretion of Spp2 is involved in the differentiation of ESCs into cardiomyocytes. To characterize Spp2, we performed experiments using the C2C12 mouse myoblast cell line, which has the property of shifting the differentiation pathway from myoblastic to osteoblastic by treatment with BMP2. Similar to the differentiation of ESCs, transcription of Spp2 increased as C2C12 myoblasts differentiated into myotubes. In particular, Spp2 secretion increased dramatically in the early stage of differentiation. Furthermore, treatment with Spp2-Flag recombinant protein promoted the differentiation of C2C12 myoblasts into myotubes. Taken together, we suggest a novel bioactive protein Spp2 that differentiates ESCs into cardiomyocytes. This may be useful for understanding the molecular pathways of cardiomyogenesis and for experimental or clinical promotion of stem cell therapy for ischemic heart diseases.
Pichia pastoris is one of the most widely used expression systems for the secretory expression of recombinant proteins. The secretory expression in P. pastoris usually makes use of the prepro $MAT{\alpha}$ sequence from Saccharomyces cerevisiae, which has a dibasic amino acid cleavage site at the end of the signal sequence. This is efficiently processed by Kex2 protease, resulting in the secretion of high levels of proteins to the medium. However, the proteins that are having the internal accessible dibasic amino acids such as KR and RR in the coding region cannot be expressed using this signal sequence, as the protein will be fragmented. We have identified a new signal sequence of 18 amino acids from a P. pastoris protein that can secrete proteins to the medium efficiently. The PMT1-gene-inactivated P. pastoris strain secretes a ~30 kDa protein into the extracellular medium. We have identified this protein by determining its N-terminal amino acid sequence. The protein secreted has four DDDK concatameric internal repeats. This protein was not secreted in the wild-type P. pastoris under normal culture conditions. We show that the 18-amino-acid signal peptide at the N-terminal of this protein is useful for secretion of heterologous proteins in Pichia.
Two glycoproteins were purified and biochemically characterized from the lichen X. parietina. Both behaved as enzymes with arginase activity and haemaglutinins. Secreted arginase (SA) contained galactose and glucose in the saccharide moiety and an isoelectric point of 4.54. The algal binding-protein (ABP) had N-acetyl-glucosamine and glucose as glycosidic residues and an isoelectric point of 3.53. Both proteins had the same molecular mass (58.6 kDa) and the same qualitative amino acidic composition. The results allowed us to consider these glycoproteins as isolectins, which have significant physiological roles in the relationship between photobiont and mycobiont of symbiotic association.
Productivity of secreted recombinant protein depends largely on its stability in the extracellular environment with protease. Most hGM-CSF produced by transgenic tobacco cell cultures and secreted to the medium was confirmed to be rapidly degraded by protease in medium. To increase the productivity, therefore, various protein stabilizers such as gelling agents such as carrageenan and alginate, polymers, polyols, and amino acids have been tested. The stability of hGM-CSF in spent medium without cells was improved by the presence of gelling agents. However, the reason for the enhanced production by the addition of gelling agents may be due to the increased expression level and permeability rather than stability. The addition of DMSO inhibited the cell growth, but improved specific yield. The others were not effective for stability as well as hGM-CSF production.
One of the biggest problems involved in transgenic animal production is lack of appropriate market genes. To overcome this problem, we tested whether the genes of SEAP (secreted alkaline phosphatase) and GFP (green fluorescence protein) on our retrovirus vectors can be applicable to the transgenic animal production. The main advantage of these marker genes over other generally mainpulation can be selected without sacrificing viability. The results obtained in this study are summarized as follows: 1. Removal of zona pellucida from the mouse zygotes did not affect embryo developments to blastocysts. 2. Co-culture of zona-free embryos with virus-producing cells for 6 hours also did not affect embryo developments to blastocysts. 3. Among 58 blastocysts developed from the zona-free zygotes co-cultured with the virus-producing cells, SEAP expression was observed from the 6 blastocysts. 4. Expression of the GFP gene was detected from the virus- producing cells but no embryo expressing the gene was counted among 50 blastocysts developed from the zona-free zygotes co-cultured with the virus-producing cells.
The complex enzyme pool secreted by the phytopathogenic fungus Fusarium graminearum in response to glucose or hop cell wall material as sole carbon sources was analyzed. The biochemical characterization of the enzymes present in the supernatant of fungal cultures in the glucose medium revealed only 5 different glycosyl hydrolase activities; by contrast, when analyzing cultures in the cell wall medium, 17 different activities were detected. This dramatic increase reflects the adaptation of the fungus by the synthesis of enzymes targeting all layers of the cell wall. When the enzymes secreted in the presence of plant cell wall were used to hydrolyze pretreated crude plant material, high levels of monosaccharides were measured with yields approaching 50% of total sugars released by an acid hydrolysis process. This report is the first biochemical characterization of numerous cellulases, hemicellulases, and pectinases secreted by F. graminearum and demonstrates the usefulness of the described protein cocktail for efficient enzymatic degradation of plant cell wall.
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