Cargnelutti, Diego E.;Sanchez, Maria V.;Alvarez, Paula;Boado, Lorena;Glikmann, Graciela;Mattion, Nora;Scodeller, Eduardo A.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제22권3호
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pp.416-421
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2012
Current influenza vaccines elicit antibodies effective against homologous strains, but new strategies are urgently needed for protection against emerging epidemic or pandemic strains. Although influenza vaccine candidates based on the viral nucleoprotein (NP) or matrix protein do not elicit sterilizing immunity, they have the advantage of inducing immunity that may cover a larger number of viral strains. In this study, recombinant NP produced in Escherichia coli was purified and formulated in combination with the adjuvant ISCOMATRIX. This formulation increased a NP-specific immunity in mice, with a Th1 profile, and may constitute a promising low-cost influenza vaccine candidate, with ability to stimulate humoral and cellular immune responses.
Kim, Seon-Hee;Bae, Young-An;Seoh, Ju-Young;Yang, Hyun-Jong
Parasites, Hosts and Diseases
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제55권3호
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pp.255-267
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2017
Malaria is an infectious disease affecting humans, which is transmitted by the bite of Anopheles mosquitoes harboring sporozoites of parasitic protozoans belonging to the genus Plasmodium. Despite past achievements to control the protozoan disease, malaria still remains a significant health threat up to now. In this study, we cloned and characterized the full-unit Plasmodium yoelii genes encoding merozoite surface protein 1 (MSP1), circumsporozoite protein (CSP), and Duffy-binding protein (DBP), each of which can be applied for investigations to obtain potent protective vaccines in the rodent malaria model, due to their specific expression patterns during the parasite life cycle. Recombinant fragments corresponding to the middle and C-terminal regions of PyMSP1 and PyCSP, respectively, displayed strong reactivity against P. yoelii-infected mice sera. Specific native antigens invoking strong humoral immune response during the primary and secondary infections of P. yoelii were also abundantly detected in experimental ICR mice. The low or negligible parasitemia observed in the secondary infected mice was likely to result from the neutralizing action of the protective antibodies. Identification of these antigenic proteins might provide the necessary information and means to characterize additional vaccine candidate antigens, selected solely on their ability to produce the protective antibodies.
The essential operating parameters in virus vaccine production are multiplicity of infection (MOI), harvest time, and infection time. Stimulating agents also can be applied in order to improve vaccine productivity further. We investigated the optimum operating conditions in porcine transmissible gastroenteritis virus (TGEV) vaccine production and the applicability of sodium butyrate (NaBu) as a stimulating agents for the improvement of vaccine productivity. The optimum MOI, infection time, and harvest time for high production of TGEV by swine testicle (ST) cells were found to be 0.0001 pfu/cell, 3 day after cell inoculation, and 24 hpi, respectively. NaBu is known as a histone deacetylase inhibitor that has been widely used for the high expression of recombinant protein using mammalian cells and for the enhancement of virus propagation. So we tried to examine the potential of NaBu as a stimulating agent and to determine the optimum concentration by comparing TGEV titers with different range of NaBu concentration. TGEV titer with 5 mM NaBu was 1.5 times higher than control. Therefore, we concluded that NaBu can be a promising agent for stimulating various vaccine production including TGEV and the optimum NaBu concentration for TGEV production was determined to be 5 mM.
Enterohemorrhagic Escherichia coli (EHEC) strains of serotype O157:H7 have been shown to colonize the intestinal epithelial cell by the attaching and effacing (AE) mechanism. The AE lesion is mediated by an intimin, of which production and expression are controlled by a 3-Kb eaeA gene located EHEC chromosomal DNA. If the eaeA gene is mutated, EHEC O157:H7 strains lose capacity of adhesion to intestinal epithelial cells. In this study, a 891 bp of the 3'-end region of a gamma intimin was amplified by polymerase chain reaction (PCR). The PCR product was inserted into pSTBlue-1 cloning vector and transformed into DE3 (BL21) competent cell. After plasmid mini-preparation and restriction enzyme digestion of eaeA/891-pSTBlue-1 vector, target eaeA gene was re-inserted into pET-28a expression vector and was transformed. Then the expression of recombinant eaeA/891 (891 bp) gene was induced by isopropyl-$\beta$-D-thiogalactopyranoside (IPTG). The expression of the 40-KDa recombinant protein was identified in SDS-PAGE and confirmed by immunoblotting using the His.Tag$^{\circledR}$ and T$_{7}$.Tag$^{\circledR}$ monoclonal antibody. This recombinant protein expressed by eaeA gene could be applied in further studies on the mechanisms of E. coli O157:H7 infection and the development of recombinant vaccine.
Park, Jin-Yong;Kim, Hun;Hwang, Hi-Ku;Lee, Su-Jeen;Kim, Hyun-Sung;Hur, Byung-Ki;Ryu, Yeon-Woo;An, Chang-Nam;Kim, Jong-Soo
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제14권1호
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pp.35-40
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2004
Rotavirus virus-like particle (VLP) composed of VP2, VP6, and VP7 was expressed in the Baculovirus Expression Vector System (BEVS). Sf9 cell, a host of the baculovirus, was cultured from a 0.5-1 spinner flask to the 50-1 bioreactor system. Sf9 cell was maintained at cell density between 3.0E+05 and 3.0E+06 cells/ml and grew up to 1.12E+07 cells/ml in the bioreactor. Growth kinetics was compared under different culture systems and showed similar growth kinetics with 20.1-25.2 h of doubling time. Early exponentially growing cell culture was infected with three recombinant baculoviruses expressing VP2, VP6, and VP7 protein at 1.0, 2.0, and 0.2 moi, respectively. The expression of rotavirus proteins was confirmed by Western blot analysis and its three-layered virus-like structure was observed under an electron microscope. Rotavirus VLP was semipurified and immunized in ICR mice intramuscularly. Rotavirus-specific serum antibody was detected from 2 weeks after the immunization and lasted at least 21 weeks of the post-immunization, indicating its possible use as a vaccine candidate.
Gaeun Kim;Hanchang Sohn;WKM Omeka;Chaehyeon Lim;Don Anushka Sandaruwan Elvitigala;Jehee Lee
Fisheries and Aquatic Sciences
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제26권3호
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pp.188-203
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2023
Lysozymes are well-known antibacterial enzymes that mainly target the peptidoglycan layer of the bacterial cell wall. Animal lysozymes are mainly categorized as g-type, c-type, and i-type based on protein sequence and structural differences. In this study, c-type (AcLysC) and g-like-type (AcLysG-like) lysozymes from Amphiprion clarkii were characterized in silico via expressional and functional approaches. According to in silico analysis, open reading frames of AcLysC and AcLysG-like were 429 bp and 570 bp, respectively, encoding the corresponding polypeptide chains with 142 and 189 amino acids. Elevated expression levels of AcLysC and AcLysG-like were observed in the liver and the heart tissues, respectively, as evidenced by quantitative real-time polymerase chain reaction assays. AcLysC and AcLysG-like transcript levels were upregulated in gills, head kidney, and blood cells following experimental immune stimulation. Recombinant AcLysC exhibited potent lytic activity against Vibrio anguillarum, whereas recombinant AcLysG-like showed remarkable antibacterial activity against Vibrio harveyi and Streptococcus parauberis, which was further evidenced by scanning electron microscopic imaging of destructed bacterial cell walls. The findings of this study collectively suggest the potential roles of AcLysC and AcLysG-like in host immune defense.
The Herpes simplex virus type 1 (HSV-1) strain F glycoprotein H (gH) gene in the pHLB-4 plasmid was recombinated into a baculovirus expression vector (lacZ-HcNPV) to construct a recombinant virus GH-HcNPV expressing gH. The sequences of gH and its expression were analyzed. The gH gene was located in the 6.41 kb BglII fragment. The open reading frame (ORF) of the gH gene was 2,517 bp and codes 838 amino acid residues. Insect cells infected with this recombinant virus synthesized a high level of the matured and gX-gH fusion protein with approximately 112 kDa. The fusion gH protein was localized on the membrane of the insect cells as seen by using immunofluorescence assay and accumulated in the cultured media by the SDS-PAGE and immunoprecipitation assays. The amino acid sequence presents additional characteristics compatible with the structure of a viral glycoprotein: signal peptide, putative glycosylation sites and a long C-terminal transmembrane sequence. Antibodies raised in mice to this recombinant protein recognized viral gH and neutralized the infectivity of HSV-1 in vitro. These results demonstrate that it is possible to produce a mature protein by gene transfer in eukaryotic cells, and indicate the utility of the HcNPV-insect cell system for producing and characterizing eukaryotic proteins. Furthermore, the neutralizing antibodies would appear to protect mice against HSV; accordingly, this particular recombinant protein may be useful in the development of a subunit vaccine.
Vaccination is one of the most important and cost-effective methods of preventing infectious diseases. Over the past decade, scientific in molecular biology and immunology have improved understanding of many diseases and led to the development of novel strategies for vaccination. An ideal vaccine would induce effective immunity specific for the type of infection, have long duration, require minimal or no boosters, have safety, would not induce adverse reaction, and be easy to administer. The desire to meet these criteria has resulted in the development of vaccines that do not depend on the use of the viable disease agent. It is not the intent of this review to give an extensive review of the field of vaccinology, but rather to address characteristics of conventional and genetically engineered vaccines.
The physicochmical properties of recombinant hepatitis B surface antigen (r-HBsAg), which was expressed in C127 mammalian cell were studied. Using roller bottle culture in DMEM supplemented with fetal bovine serum, 10-15 mg/L of r-HBsAg was produced with about 31% of purification yield. The purity of r-HBsAg by HPLC was 99.8% and electron microscopic examination showed homogeneous spherical particle with 22 nm in diameter, a morphological characteristic of HBsAg. The density of r-HBsAg by CsCI density gradient method was 1.19g/ml and the isoelectric point by Mono $P^{TM}$ HR 5/20 column was 4.6. The analysis of subunit protein pattern using SDS-PAGE followed by scanning densitometry gave 81.3% of S protein and 18.7% of pre-S protein. fluorophore-assisted-carbohydrate-electrophoresis analysis showed the relative amount of carbohydrate to protein was 1.7% and it smajr component was N-acetyl glucosamine, which was about 39% of total carbohydrate. The relative amount of lipid to protein determined by vanillin phosphoric acid method was 32.5% and its major component was phospholipid, which was about 70% of total lipid. The physicochemical properties of C127 mammalian cell-derved r-HBsAg are similar to those of p-HBsAg, suggesting that the r-HBsAg can be used in developing a new preventive vaccine against hepatitis B.
This work was initiated to develope a recombinant oral poliovaccine (OPV), which is highly advanced in safety (minimizing VAPP) by introducing Type 2,3 poliovirus epitopes into our RPS-Vax system. We have introduced several potential vaccine epitopes of poliovirus Type 2, and 3 into RPS-Vax system, resulting in production of recombinant polioviruses. Any of these chimeric viruses, however, were not detected for their foreign gene expression by serotype-specific mouse antiserum. We have designed several folding units to stabilize the introduced vaccine protein and attached short epitope-concatamer or epitope-multimer to them, followed by production of chimeric viruses. Only those who have an HIV-1 Tat-mediated folding unit were nicely detected for the introduced foreign proteins by anti-Tat antiserum and type-specific peptide-induced antisera. Nevertheless, introduced epitopes were not detected in Western blot experiment with each serotype-specific antiserum. None of the mice inoculated with these chimeric viruses showed preventative immunity when challenged with Lansing and Leon wildtype 2 and 3 poliovirus, and the antiserum did not show neutralizing capacity in vitro. Conformational epitope covering B/C loop region of type 2 and 3 were newly designed by computer modeling, and introduced into the RPS-Vax vector system, followed by production of chimeric viruses. Introduced epitope regions were nicely detected by anti-Tag23 mAb or peptide antibody, but still not detected by poliovirus antiserum. Nevertheless, neutralizing antibody was detected in the Tg-PVR mice even when inoculated once with these chimeric viruses. Also, the immunized mice showed perfect preventative immunity against the wild Type poliovirus Lancing or Leon. When boosted appropriately, those chimeric virus-inoculated Tg-PVR mice produced equivalent amounts of neutralizing antibody to those in Sabin 2/3-immunized mice. These data strongly suggest that our recombinant poliovirus (RPS-PV2 and RPS-PV3) can be used as a safe and effective rec-OPV instead of any preexisting poliovaccine.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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