The chitinase-producing strain SC081 was isolated from Korean traditional soy sauce and identified as Bacillus atrophaeus based on a phylogenetic analysis of the 16S rDNA sequence and a phenotypic analysis. A gene encoding chitinase from B. atrophaeus SC081 was cloned in Escherichia coli and was named SCChi-1 (GQ360078). The SCChi-1 nucleotide sequences were composed of 1788 base pairs and 596 amino acids, which were 92.6, 89.6, 89.3, and 78.9% identical to those of Bacillus subtilis (ABG57262), Bacillus pumilus (ABI15082), Bacillus amyloliquefaciens (ABO15008), and Bacillus licheniformis (ACF40833), respectively. A recombinant SCChi-1 containing a hexahistidine tag at the amino-terminus was constructed, overexpressed, and purified in E. coli to characterize SCChi-1. $H_6SCChi$-1 revealed a hydrolytic band on zymograms containing 0.1% glycol chitin and showed the highest lytic activity on colloidal chitin and acidic chitosan. The optimal temperature and pH for chitinolytic activity were $50^{\circ}C$ and pH 8.0, respectively.
Kim, Sung-Ho;Park, En-Joung;Yoon, Sung-Sook;Choi, Jung-Do
Bulletin of the Korean Chemical Society
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v.24
no.12
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pp.1799-1804
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2003
Acetolatate synthase(ALS) catalyzes the first common step in the biosynthesis of valine, leucine, isoleucine in plants and microorganisms. ALS is the target of several classes of herbicides, including the sulfonylureas, the imidazolinones, and the triazolopyrimidines. To elucidate the roles of arginine residues in tobacco ALS, chemical modification and site-directed mutagenesis were performed. Recombinant tobacco ALS was expressed in E. coli and purified to homogeneity. The ALS was inactivated by arginine specific reagents, phenylglyoxal and 2,3-butanedione. The rate of inactivation was a function of the concentration of modifier. The inactivation by butanedione was enhanced by borate, and the inactivation was reversible on removal of excess butanedione and borate. The substrate pyruvate and competitive inhibitors fluoropyruvate and phenylpyruvate protected the enzyme against inactivation by both modifiers. The mutation of well-conserved Arg198 of the ALS by Gln abolished the enzymatic activity as well as the binding affinity for cofactor FAD. However, the mutation of R198K did not affect significantly the binding of FAD to the enzyme. Taken together, the results imply that Arg198 is essential for the catalytic activity of the ALS and involved in the binding of FAD, and that the positive charge of the Arg is crucial for the interaction with negatively charged FAD.
Kim, Eun-Yeong;Choi, Hee-Jung;Chung, Tae-Wook;Jang, Se Bok;Kim, Kibong;Ha, Ki-Tae
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.25
no.8
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pp.1307-1314
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2015
Leukemia inhibitory factor (LIF) is a member of the IL-6 cytokine family, having pleiotropic actions such as maintaining stem cell pluripotency and enabling blastocyst implantation. Because the action of LIF is mediated by a ligand-receptor interaction with the LIF receptor (LIF-R), an antagonist for LIF-R has been developed to inhibit LIF-induced signaling. In this study, we present a novel method for the production and purification of an antagonist to human LIF-R (hLA). His-tagged hLA was expressed in E. coli, and simple purification methods without any endopeptidase cleavage were designed. In addition, we determined the optimal temperature conditions for enhancing the production of soluble hLA. Finally, the bioactivity of His-tagged hLA was examined using STAT3 phosphorylation and receptivity of human endometrial ECC-1 cells. Our strategy provides a rapid and efficient method to produce biologically active recombinant hLA.
L-Asparaginase (E.C. 3.5.1.1) is an enzyme involved in asparagine hydrolysis and has the potential to effect leukemic cells and various other cancer cells. We identified the L-asparaginase gene (L-ASPG86) in the genus Mesoflavibacter, which consists of a 1,035 bp open reading frame encoding 344 amino acids. Following phylogenetic analysis, the deduced amino acid sequence of L-ASPG86 (L-ASPG86) was grouped as a type I asparaginase with respective homologs in Escherichia coli and Yersinia pseudotuberculosis. The L-ASPG86 gene was cloned into the pET-16b vector to express the respective protein in E. coli BL21 (DE3) cells. Recombinant L-asparaginase (r-L-ASPG86) showed optimum conditions at 37-40℃, pH 9. Moreover, r-L-ASPG86 did not exhibit glutaminase activity. In the metal ions test, its enzymatic activity was highly improved upon addition of 5 mM manganese (3.97-fold) and magnesium (3.35-fold) compared with the untreated control. The specific activity of r-L-ASPG86 was 687.1 units/mg under optimum conditions (37℃, pH 9, and 5 mM MnSO4).
Purpose: The serologic diagnosis of rotaviral infections is not commonly used in clinical practice, but is used in seroepidemiologic studies. In this study, the usefulness of Escherichia coli-expressed recombinant VP6 proteins of group A rotavirus in the serodiagnosis of rotavirus infections by ELISA was evaluated. Methods: The recombinant VP6 proteins of group A rotavirus expressed in E. coli Rosetta II strain were purified and identified. One hundred sera from 22 children (4 healthy neonates, 13 healthy children, and 5 immunocompromised children) who had serial sera samples prior to and after rotavirus infections were provided by the Gyeongsang National University Hospital, a member of the National Biobank of Korea. IgG, IgA, and IgM antibodies against rVP6 were analyzed by ELISA in all of the patients and Western blot analysis in 4 neonates. Results: ELISA tests using rVP6 proteins of group A rotavirus as antigen revealed that IgG, IgA, and IgM antibodies increased after rotaviral infections in most neonates and healthy children. IgG antibodies also increased after rotaviral infections in most immunocompromised children without an adequate increase in IgM or IgA antibodies. Western blot analysis in four neonates revealed very early IgM antibody responses, even in the sera with low optical densities in ELISA tests. Conclusion: Our study showed that ELISA using rVP6 as an antigen is a valid diagnostic tool for seroepidemiologic studies of rotavirus infections and Western blot analysis is a sensitive test in detecting IgG, IgA, and and IgM antibodies in patients with rotavirus infections.
An open reading frame (ORF) encoding a putative epoxide hydrolase (EHase) was identified by analyzing the genome sequence of Sphingophyxis alaskensis. The EHase gene (seh) was cloned and expressed in E. coli. To facilitate purification, the gene was fused in-frame to 6$\times$ histidine at the C-terminus. The recombinant EHase (rSEH) was highly soluble and could be purified to apparent homogeneity by one step of metal affinity chromatography. The purified SEH displayed hydrolyzing activities toward various epoxides such as styrene oxide, glycidyl phenyl ether, epoxyhexane, epoxybutane, epichlorohydrin, and epifluorohydrin. The optimum activity toward styrene oxide was observed at pH 6.5 and $35^{\circ}C$. The purified SEH showed a cold-adapted property, displaying more than 40% of activity at low temperature of $10^{\circ}C$ compared with the optimum activity. Despite the catalytic efficiency, the purified SEH did not hydrolyze various epoxides enantioselectively. $K_m$ and $k_{cat}$ of SEH toward (R)-styrene oxide were calculated as 4$\pm$0.3 mM and 7.42$s^{-1}$ respectively, whereas $K_m$ and $k_{cat}$ of SEH toward (S)-styrene oxide were 5.25$\pm$0.3 mM and 10.08$s^{-1}$ respectively.
Park Sang Joong;Ryu Kang;Suh Chang Woo;Chai Young Gyu;Kwon Oh Byung;Park Seung Kook;Lee Eun Kyu
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.7
no.1
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pp.1-5
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2002
A fusion protein, consisting of a human epidermal growth factor (hEGF) as the recognition domain and human angiogenin as the toxin domain, can be used as a targeted therapeutic against breast cancer cells among others. The fusion protein was expressed as inclusion body in recombinant E. coli, and when the conventional, solution-phase refolding process was used the refolding yield was very low due to severe aggregation. It was probably because of the opposite electric charge at a neutral pH resulting from the vastly different pI values of each domain. The solid-phase refolding process that exploited the ionic interactions between ionic exchanger surface and the fusion protein was tried, but the adsorption yield was also very low, below $ 30\%$, regardless of the resins and pH conditions used. Therefore, to provide a higher ionic affinity toward the solid matrix, six lysine residues were tagged to the N-terminus of the hEGF domain. When heparin-Sepharose was used as the matrix, the adsorption capacity increased 2.5-3 times to about $88\%$. Besides the intrinsic affinity of angiogenin to heparin, the poly-lysine tag provided additional ionic affinity. And the subsequent refolding yield increased nearly 13-fold, from ca. $4.8\%$ in the conventional refolding of the untagged fusion protein to $63.6\%$. The process was highly reproducible. The refolded protein in the column eluate retained RNase bioactivity of angiogenin.
A bacterium producing the extracellular mannanase was isolated from Korean soybean paste. The isolate WL-8 has been identified as Bacillus subtilis on the basis on its 16S rRNA sequence, morphology and biochemical properties. The mannanase productivity of strain WL-8 was increased in LB broth by addition of wheat bran. The maximum mannanase productivity was reached to approximately 20 U/ml in LB medium supplemented with 6% wheat bran. A gene encoding the mannanase of WL-8 was cloned into Escherichia coli and its nucleotide sequence was subsequently determined. The mannanase gene consisted of 1,086 nucleotides encoding a polypeptide of 362 amino acid residues. The deduced amino acid sequence was highly homologous with those of several mannanases from B. subtilis belonging to GH family 26. Reaction temperature and pH profiles were investigated using the culture filtrate and cell-free extract of the recombinant E. coli carrying a WL-8 mannanase gene, respectively. Optimal conditions for the two fractions occurred at pH 5.5 and $60^{\circ}C$. The cell-free extract showed higher mannanase activity than the culture filtrate at above $60^{\circ}C$.
The cloned B. subtilis cdd gene encoding cytidine/2'deoxycytidine deaminase (EC 3.5.4.5) was expressed in the cdd deficient B. subtilis mutant ED40. The gene was isolted from the cdd complementing plasmid pSO21, and inserted into the EcoR1/Pvu1 sites of pGB215-110 ΔB, which is a temperature sensitivie E. coli-B. subtilis shuttle vector. In the transformed B. subtilis ED4O harboring the resulting plasmid pSO100, cdd was expressed at several hundred fold elevated levels, and the cytidine deaminase activity in E. coli containing pSO100 was twice the level in B. subtilis/pSO0100. The Km value for cytidine of the partially purified enzyme is 1.88$\times$10$^{-4}$M at pH 7.0 and the V$_{max}$ = 11.1 $\mu$mol/min/mg of protein. The enzyme was completely inhibited by 0.1M mercaptoethanol and HgCl$_2$. The inhibition by p-chrolomercurybenzoic acid showed a Ki = 5 uM. These results suggest that sulfhydryl reagents block an active site thiol group, and/or disturb the formation of the tetrameic holoenzyme.
Ko Y. M.;Kim D. W.;Kim K. E.;Shin S. C.;You S. J.;Ahn B. K.;Kang C. W.
Korean Journal of Poultry Science
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v.31
no.4
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pp.245-253
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2004
This study was conducted to investigate the effects of dietary yeast culture containing rPST on growth performances and the characteristics of body compositions in broiler chickens. A total of 460 Ross male broiler chicks aged 2-day-old were fed one of five experimental diets; Control(devoid of all), TI (with $0.1\%$ antibiotics; chlorotetracycline), T2 (with $0.1\%$ rPST-yeast culture), T3 (with $0.2\%$ rPST-yeast culture) or T4 (with $0.2\%$ SC yeast culture) for 6 weeks. Feed consumption and body weights were measured weekly. At week 5 of the experiment, 10 chicks were randomly selected and sacrificed. The relative weights of each organ and the chemical composition of edible meat were measured. The enzyme activity, total cholesterol, Ca and P were also determined. Tibial weight, bone strength and chemical composition were investigated. There were no significant differences in feed intake and feed conversion ratios among the treatments throughout the experimental period. Body weight gains tended to be increased by feeding of diets containing rPST-yeast culture. The relative weight of breast muscle in T3 group was significantly higher than that of the control (P<0.05). The moisture contents of breast meat in groups fed diets containing rPST-yeast culture or SC yeast culture were significantly increased as compared with those of the control and n. However, the contents of crude protein and ether extract were not affected by feeding of rPST-yeast culture. There were no significant differences in GOT, total cholesterol, Ca and P. The relative weight and strength and proximal composition of the tibia were also not affected by dietary treatments. These results indicated that dietary rPST-yeast culture may be a valuable alternative for optimizing growth performances, particularly for improving the yield of breast muscle.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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