In this study, we describe the development of a simple and efficient method for cell lysis via the insertion of a bacteriophage lambda lysis gene cluster into the pET22b expression vector in the following order; the T7 promoter, a gene for a target protein intended for production, Sam7 and R. This insertion of R and Sam7 into pET22b exerted no detrimental effects on cellular growth or the production of a target protein. The induction of the T7 promoter did not in itself result in the autolysis of cells in culture but the harvested cells were readily broken by freezing and thawing. We compared the efficiency of the cell lysis technique by freezing and thawing to that observed with sonication, and determined that both methods completely disintegrated the cells and released proteins into the solution. With our modification of pET22b, the lysis of cells became quite simple, efficient, and reliable. This strategy may prove useful for a broad variety of applications, particularly in experiments requiring extensive cell breakage, including library screening and culture condition exploration, in addition to protein purification.
Previously, various inhibitors of cell wall synthesis induced the drp35 gene of Staphylococcus aureus efficiently. To determine whether drp35 could be exploited in antistaphylococcal drug discovery, we cloned the promoter of drp35 ($P_d$) and developed different biological assay systems using an engineered S. aureus strain that harbors a chromosomally-integrated $P_d$ - lacZ transcriptional fusion. An agarose-based assay showed that $P_d$ is induced not only by the cell wall-affecting antibiotics but also by rifampicin and ciprofloxacin. In contrast, a liquid medium-based assay revealed the induction of $P_d$ specifically by the cell wall-affecting antibiotics. Induction of $P_d$ by sublethal concentrations of cell wall-affecting antibiotics was even assessable in a microtiter plate assay format, indicating that this assay system could be potentially used for high-throughput screening of new cell wall-inhibiting compounds.
Interleukin-13 (IL-13) has been proposed as a therapeutic target for bronchial asthma as it plays crucial roles in the pathogenesis of the disease. We developed an in vitro test system measuring transcriptional downregulatory activities on IL-13 as a primary screening method to select drug candidates from natural products. The promoter region of IL-13 (-2,048 to +1) was cloned into the upstream of a luciferase gene in the plasmid pGL4.14 containing the hygromycin resistance gene as a selection marker, generating pGL4.14-IL-13. The EL-4 thymoma and RBL-2H3 mast cells transiently expressing this plasmid highly produced the luciferase activities by responding to PI (PMA and ionomycin) stimulation up to 8-fold and 13-fold compared with the control, respectively, whereas cyclosporin A, a well-known antiasthmatic agent, significantly downregulated the activities. The BF1 clone of RBL-2H3 cells constitutively expressing pGL4.14-IL-13 was established by selecting surviving cells under a constant lethal dose of hygromycin treatment. The feasibility of this system was evaluated by measuring the downregulatory activities of 354 natural products on the IL-13 promoter using the BF1 clone. An extract from Morus bombycis (named TBRC 156) significantly inhibited PI-induced luciferase activities and IL-13 mRNA expression, but not the protein expression. Fisetin (named TBRC 353) inhibited not only PI-induced luciferase activities and mRNA expression, but also the IL-13 protein secretion, whereas myricetin (named TBRC 354) could not suppress the IL-13 expression at all. Our data indicated that this in vitro test system is able to discriminate the effects on IL-13 expression, and furthermore, that it might be suitable as a simple and time-saving primary screening system to select antiasthmatic agents by measuring transcriptional activities of the IL-13 promoter.
Han Tae Un;Jeong Do-Won;Cho San Ho;Lee Jong-Hoon;Chung Dae Kyun;Lee Hyong Joo
Microbiology and Biotechnology Letters
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v.33
no.4
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pp.241-247
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2005
A new lactococcal shuttle/expression vector for lactococci, pWgal13T, was constructed using a $\beta$-galactosi-dase gene (lacZ) from Lacfococcus lactis ssp. lactis ATCC 7962 as a screening marker. The pWgal 13T was introduced into Escherichia coli DH5a and L. lactis MG1363, and was easily detected by the formation of blue colonies on a medium containing X-gal without any false transformants. Also, the quantitatively lacZ activity of pWgal13T was measured in L. lactis ssp. cremoris MG1363, and was found to be four times higher than that of L. lactis ssp. lactis ATCC7962 grown on a medium containing glucose, which shows that the lacZ gene of pWgal13T can be used for the efficient screening of L. lactis on general media. The pWgal13T was equipped with a lactococcal replicon of pWV01 from L. lactis Wg2, the new promoter P13C from L. lactis ssp. cremoris LM0230, multiple cloning sites, and a terminator for the expression of a relevant gene. The vee-tor pWgal13T was used for the expression of the EGFP gene in E. coli and L. lactis. These results show that the lactococcal expression/shuttle vector constructed in the present study can be used for the production of foreign proteins in E. coli and L. lactis.
Kim, Eun-Ki;Kwak, Eun-Young;Han, Jung-Sun;Lee, Hyang-Bok;Shin, Jung-Hyun
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.31
no.1
s.49
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pp.13-16
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2005
For the high-throughput-screening system (HTS) of depigmenting agents using a protein chip, effects of oligonucleotide-inhibitor sequence on the binding of Mitf protein to E box of MC1R was investigated. The sequence of oligonucletide-inhibitor affected the binding of the target DNA to Mitf, depending on the location of the sequence variation in the inhibitor nucleotide. The oligonucletide-inhibitor that changed the CATGTG sequence didn't show enough inhibition of the target DNA to Mitf, whereas significant inhibition was observed when the sequence outside the CATGTG was changed. This result indicated that CATCTG is crucial sequence for the binding of Mitf to I-box which initiates the transcription of pigmenting genes.
A plasmid vector, $RSVLTR/{\beta}G2$, containing lacZ gene under the control of the RSVLTR promoter were transfected into chicken embryo fibroblasts by three different transfection methods. Calcium phosphate, lipsome and DEAE-dextran techniques were applied for transfection of chicken cells. A histochemical assay with X-gal was used as a simple method for screening transfected cells. Plasmid $RSVLTR/{\beta}G2$ was expressed proficiently in the chicken embryo fibroblast. Calcium phosphate-DNA precipitate transfection resulted in the highest efficiency for transient expression of $RSVLTR/{\beta}G2$. Transfected cells formed colonies on the 9th day of incubation indicating stable transformation of the inserted plasmid.
We tried to introduce two forsythia genes related in lignan biosynthesis, dirigent protein and pinoresinol/lariciresinol (Ph) reductase, into potatoes for accumulation of lignans in transgenic potatoes. We made binary vectors overexpressing dirigent protein gene and P/L reductase gene driven by a CaMV35S promoter and transformed into potatoes via Agrobacterium mediated transformation. And in order to control the metabolic flux of lignan biosynthesis pathway, we tried to inhibit chalcone synthase genes of potatoes by antisense inhibition technique also. We tried to use PCR screening method for selection of transgenic plants of different vectors. We tried to determine and compare lignan contents from different transgenic potato lines.
Chrysin, a natural flavone compound contained in plants. has anti-inflammatory activity. Its anti-inflammatory effect has been previously explained in part by the suppression of promoter activities of inducible pro-inflammatory enzymes (cyclooxygenase-2 (COX-2) and inducible nitrogen synthase (iNOS)). Nitrate production triggered by the activation of lipopolysaccharides (LPS) was most highly suppressed by the treatment of chrysin, follwed by 5-hydroxy-7-methoxyflavone (Ch-2), 5,7-diacetylflavone (Ch-4) in cultured Raw 264.7 cells. (omitted)
Park, Seung-Hye;Jeong, Young-Su;Kim, Won-Ho;Kim, Geun-Joong;Hur, Byung-Ki
KSBB Journal
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v.21
no.2
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pp.144-150
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2006
The exploitation of metagenome, the access to the natural extant of enormous potential resources, is the way for elucidating the functions of organism in environmental communities, for genomic analyses of uncultured microorganism, and also for the recovery of entirely novel natural products from microbial communities. The major breakthrough in metagenomics is opened by the construction of libraries with total DNAs directly isolated from environmental samples and screening of these libraries by activity and sequence-based approaches. Screening with activity-based approach is presumed as a plausible route for finding new catabolic genes under designed conditions without any prior sequence information. The main limitation of these approaches, however, is the very low positive hits in a single round of screening because transcription, translation and appropriate folding are not always possible in E. coli, a typical surrogate host. Thus, to obtain information about these obstacles, we studied the genetic organization of individual URF's(unidentified open reading frame from metagenome sequenced and deposited in GenBank), especially on the expression factors such as codon usage, promoter region and ribosome binding site(rbs), based on DNA sequence analyses using bioinformatics tools. And then we also investigated the above-mentioned properties for 4100 ORFs(Open Reading Frames) of E. coli K-12 generally used as a host cell for the screening of noble genes from metagenome. Finally, we analyzed the differences between the properties of URFs of metagenome and ORFs of E. coli. Information derived from these comparative metagenomic analyses can provide some specific features or environmental blueprint available to screen a novel biocatalyst efficiently.
Apoptosis로 일컬어지는 예정된 세포사멸(programmed cell death)은 개별 세포의 입장에서는 곧바로 사멸을 의미하지만, 정상적인 고등 생물의 입장에서는 개체의 발생과 분화하는데 프로그램된 과정이다. 자발적 세포사멸은 다른 조직에 비해 생식 조직인 난소나 정소에서 복잡한 apoptosis 기작들을 가지리라 사료된다. 본 연구는 Bcl-2 family중 apoptotic protein인 Bax에 대해 suppression하는 유전자를 yeast system을 활용하여 돼지 정소와 난소로부터 각각 cDNA library를 구축한 후 탐색하였다. 탐색에 활용된 cDNA library는 돼지의 정소와 난소로부터 mRNA를 분리하여 yeast vector인 pAD-GAL4-2.1에 구축하였고, 마우스 bax 유전자는 gal 1 promoter의 조절 하에 glucose 배지에서는 유도되지 않고, galactose 배지에서만 선택적으로 Bax를 발현할 수 있는 효모 vector(pL19-bax)를 구축하였다. Bax에 의한 apoptosis suppressor를 탐색하기 위해 우선 효모 W303에 pL19-bax를 transform하여 glucose 배지에서 Bax의 발현을 억제하였다. pL19-bax를 가진 효모에 정소와 난소로부터 구축된 cDNA library를 transform 시키고, transform된 효모는 각각 Bax에 의한 toxicity를 저해하는 유전자를 찾기 위해 스크린되었다. 이러한 방법으로 정소 cDNA library 탐색에서는 5 $\times$$10^{6}$ transformant중 39개, 난소cDNA library 탐색에서는 2 $\times$$10^{6}$ transformant중 26개의 콜로니가 생존하였다. 이들 콜로니로부터 유전자를 분리하여 분석해 본 결과 여러 그룹으로 분류할 수 있었다. 각 그룹의 관련 유전자는 protein synthesis/degradation 12종, oxidation/reductation 5종, detoxin/ cell cycle promoter 3종, signal transduction/growth factor 5종, 그리고 알려지지 않은 유전자 9종이었다. 그 중, bax-toxicity inhibition에 강력한 survival phenotype을 가지는 유전자(pSEDL)를 동정하였다. 이것은 T3-4-1 콜로니로부터 분리하였는데 140개 아미노산으로 이루어진 인간 SEDL(GenBank, XM_013096) 유전자와 매우 유사한 homology를 가지며, bax와 관련된 기능은 밝혀져 있지 않다. 이외에도 분리된 유전자에는 NADH, thioreduction, 그리고 cytochrome oxidase와 같은 positive 유전자 군이 크로닝되어, Bax를 이용한 효모에서 apoptosis suppressor에 관련된 유전자를 손쉽게 스크린하는 것이 가능하고, 분리된 유전자의 기능을 예측할 수 있어 지금까지 보고된 유전자 크로닝법 보다는 강력한 수단으로 활용될 수 있다는 사실을 시사하였다. 그러나, ORF에 관계없이 Bax 발현에 저항하는 유전자군이 선발된다든지 하는 문제점은 금후 검토가 필요하리라 사료된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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