In this study, we established a novel somatic embryogenesis and plant regeneration system through cell suspension culture of white dandelion (Taraxacum coreanum NAKAI.). Embryogenic calli could be initiated from leaf and root explants of sterile seedlings on solid Murashige and Skoog (MS) medium supplemented with 1.0 mg/L 2,4-dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) after 3-week cultures. To proliferate embryogenic calli rapidly, cell suspension culture was performed with transferred to liquid MS medium with various combinations of plant growth regulators (PGRs) including 2,4-D, ${\alpha}$-naphthalene acetic acid (NAA), indole-3-acetic acid (IAA), $N^6$-benzylamino purine (BAP), thidiazuron (TDZ), and kinetin. During suspension cultures, embryogenic calli not only greatly proliferated, but shoot organogenesis also simultaneously occurred from the surface of somatic embryos. Among them, TDZ at lower concentration, 0.1 mg/L produced the highest efficiency of somatic embryo formation and shoot organogenesis. Rooting of embryogenic calli with adventitious shoots was done on solid MS medium containing 0.1 mg/L NAA and 0.3% activated carbon. Nearly 80% of embryogenic calli with shoot organogenesis could be rooted normal. Well-rooted plantlets were transferred into pots under a greenhouse condition, and plants derived from this system appeared phenotypically normal.
The suspension cultures of Mentha piperita produce menthol which has very low solubility in water due to its hydrophobicity. This can be considered as a factor for its low production in the suspension suspension cultures. Cyclodextrin has the hydrophobic cavity inside the molecule in which menthol can be captured and allow to form a stable complex. The suspension culture of Mentha piperita showed 70% higher production enhancement in the medium containing 1.5%(w/v) $\beta$-cyclodextrin than the control. $\beta$-cyclodextrin had no adverse effect on the cell growth and showed the best result among $\alpha$-, $\beta$- and $\gamma$-cyclodextrins tested in terms of menthol production. We demonstrated that $\beta$-cyclodextrin can be used to enhance the production of menthol in the suspension cultures by capturing hydrophobic menthol into the cavity of cyclodextrin molecules.
Ryland, J.;Robert, P.;Michael, Linzmaier;Lee, James M.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.10
no.4
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pp.449-454
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2000
The heavy chain monoclonal antibody (HC MAb) was produced in suspension cultures of genetically modified Nicotiana tabacum. The HC MAb secreted to the medium was unstable due to unfavorable interactions in the plant cell medium. The addition of gelatin (5g/l) stabilized the extracellular HC MAb and increased its production 10-fold. A kinetic model was developed describing the interaction between the secretedprotein and the stabilizer. The model accounted for the inactivation of the protein by simple aggregation and general instability. It was assumed that the secreted protein and the stabilizer form a stable complex. Culturing the cells semicontinuously could further increase the productivity of HC MAb.
Transgenic plant cell cultures for the production of biopharmaceuticals including monoclonal antibodies, recombinant proteins have been regarded as an alternative platform in addition to traditional microbial fermentation and mammalian cell cultures. Plant-made pharmaceuticals (PMPs) have several advantages such as safety, cost-effectiveness, scalability and possibility of complex post-translational modifications. Increasing demand for the quantity and diversity of pharmaceutical proteins may accelerate the industrialization of PMP technology. Up to date, there is no plant-made recombinant protein approved by USFDA (Food and Drug Administration) for human therapeutic uses due to the technological bottlenecks of low expression level and slight differences in glycosylation. Regarding expression levels, it is possible to improve the productivity by using stronger promoter and optimizing culture processes. In terms of glycosylation, humanization has been attempted in many ways to reduce immune responses and to enhance the efficacy as well as stability. In this review article, all these respects of transgenic plant cell cultures were summarized. In addition, we also discuss the general characteristics of plant cell suspension cultures related with bioreactor design and operation to achieve high productivity in large scale which could be a key to successful commercialization of PMPs.
Sabir, Farzana;Sangwan, Rajender S.;Singh, Jyoti;Misra, Laxmi N.;Pathak, Neelam;Sangwan, Neelam S.
Plant Biotechnology Reports
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v.5
no.2
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pp.127-134
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2011
The biotransformation potential of cell suspension cultures generated from Withania somnifera leaf was investigated, using withanolides, i.e. withanolide A, withaferin A, and withanone as precursor substrates. Interestingly, the cell suspension cultures showed inter-conversion of withanolides, as well converted to some unknown compounds, released to the culture media. The bio-catalyzed withanolide was detected and quantified by TLC and HPLC, respectively. There is noticeable conversion of withanolide A to withanone, and vice versa though at a lower level. The type of reaction of this biotransformation appears to be substitution of 20-OH group to 17-OH in withanolide A. In this paper, we present for the first time the possibility of biotransformation by inter-conversion of withanolides of pharmacological importance through cell suspension culture of W. somnifera. The possible role of putative cytochrome $P_{450}$ hydroxylases is implicated in the conversion.
Oh, Myung Jin;Na, Hye Ryun;Choi, Hong-Keun;Liu, Jang Ryol;Kim, Suk Weon
Plant Biotechnology Reports
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v.2
no.1
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pp.87-92
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2008
An improved protocol for high frequency plant regeneration via somatic embryogenesis from zygotic embryo-derived cell suspension cultures of watershield (Brasenia schreberi) was developed. Zygotic embryos formed pale-yellow globular structures and white friable callus at a frequency of 80% when cultured on halfstrength MS medium supplemented with $0.3mg\;l^{-1}$ 2,4-D. However, the frequency of formation of pale-yellow globular structures and white friable callus decreased slightly with increasing concentrations of 2,4-D up to $3mg\;l^{-1}$, where the frequency reached ~50% of the control. Cell suspension cultures from zygotic embryoderived white friable callus were established using half-strength MS medium supplemented with $0.3mg\;l^{-1}$ 2,4-D. Upon plating of cell aggregates on half-strength MS basal medium, approximately 8.3% gave rise to somatic embryos and developed into plantlets. However, the frequency of plantlet development from cell aggregates was sharply increased (by up to 55%) when activated charcoal and zeatin were applied. Regenerated plantlets were successfully transplanted to potting soil and grown to normal plants in a growth chamber. The distinctive feature of this study is the establishment of a high frequency plant regeneration system via somatic embryogenesis from zygotic embryo-derived cell suspension cultures of water-shield, which has not been previously reported. The protocol for plant regeneration of watershield through somatic embryogenesis could be useful for the mass propagation and transformation of selected elite lines.
Hypocotyl explants from 7 days old seedlings of one $F_1$ hybrid cultivar and two pure lines of cucumber formed embryogenic calli at frequencies of up to 8% when cultured on Murashige and Skoog medium (MS) supplemented with 1 mg/L 2,4-D for 3 weeks. Embryogenic calli gave rise to somatic embryos. When slices of somatic embryos were cultured on the same medium for 4 weeks, they formed embryogenic calli. Embryogenic cell suspension cultures were established with embryogenic calli in MS liquid medium with 1 mg/L 2,4-D. Embryogenic potential of cell suspension cultures was maintained by subculturing every seven days. When the level of 2,4-D in the medium was lowered to 0.2 mg/L by diluting with liquid MS basal medium, embryogenic cell suspension cultures underwent development into numerous somatic embryos. When plated onto MS basal medium, over 95% of somatic embryos developed into plantlets. Plantlets were transplanted to potting soil and grown to maturity.
Prakash Gunjan;Emmannuel C.J.S.K.;Srivastava Ashok K.
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.10
no.3
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pp.198-204
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2005
Seeds of neem were collected from different parts of India and analyzed for their azadirachtin content by High Performance Liquid Chromatography (HPLC). In order to assess the effects of genotypic and geographical variation on azadirachtin content in cell cultures, callus development was attempted in the seeds containing high and low concentration of azadirachtin. The concentration of azadirachtin in callus cultures was significantly affected by the explant source. Seed kernels with higher azadirachtin content produced higher azadirachtin content in callus cultures and lower azadirachtin content was seen in callus cultures produced from seed kernels with low azadirachtin content. The protocol for development of elite stock culture of Azadirachta indica was established with the objective of selecting a high azadirachtin-producing cell line. The highest azadirachtin-producing cell line was selected and the effects of different media and illumination conditions on growth and azadirachtin production were studied in shake flask suspension culture. Detailed batch growth kinetics was also established. These studies provided elite starter culture and associated protocols for cultivation of A. indica plant cell culture in the bioreactor.
Chattopadhyay, Saurabh;Bisaria, V.S.;Scheper, T.;Srivastava, A.K.
Biotechnology and Bioprocess Engineering:BBE
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v.7
no.6
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pp.331-334
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2002
Culture conductivity and on-line NADH fluorescence were used to measure cellular growth in plant cell suspension cultures of Podophyllum hexandrum. An inverse correlation between dry cell weight and medium conductivity was observed during shake flask cultivation. A linear relationship between dry cell weight and culture NADH fluorescence was obtained during the exponential phase of batch cultivation In a bioreactor under the pH stat (pH 6) conditions. It was observed that conductivity measurement were suitable for biomass characterisation under highly dynamic uncontrolled shake flask cultivation conditions. However, if the acid/alkali feeding is done for pH control the conductivity measurement could not be applied. On the other hand the NADH fluorescence measurement allowed online-in situ biomass monitoring of rather heterogenous plant cell suspension cultures in bioreactor even under the most desirable pH stat conditions.
Callus and cell suspension cultures of Eurycoma longifolia Jack could be an alternative supply of 9-hydroxycanthin-6-one and 9-methoxycanthin-6-one. The callus tissues were initiated from leaves of different trees. The friable calli were used for the preparation of the cell suspension cultures of E. longifolia. The leaf explant of tree Eu-9 produced the most callus and also induced high cell biomass in the cell suspension culture, but it produced low quantity of 9-methoxycanthin- 6-one and 9-hydroxycanthin-6-one. The leaf explant from tree Eu-8 produced low quantity of callus and cell biomass, but produced the highest quantity of 9-methoxycanthin- 6-one and 9-hydroxycanthin-6-one. Optimum production of cell biomass was obtained on cell culture medium with pH 5.75 prior to autoclaving, but high alkaloids content could be induced in culture medium in acidic condition with pH 4.75 and 5.25 prior to autoclaving.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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