Kim, S. G.;Kim, K. S.;Kim, T. W.;Lee, H. T.;K. S. Chung
Korean Journal of Animal Reproduction
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v.25
no.4
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pp.399-407
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2001
The microinjection of retroviral vectors into the perivitelline spaces of MII-stage oocytes increased production of transgenic bovine embryos. However, oocytes have various sizes of perivitelline space, and there is the tendency that the oocyte membranes are damageable by micropipettes during the injection of retroviral vectors into perivitelline spaces or oocytes. Thus, it was not always possible to stably inject retroviral vector into perivitelline spaces of oocytes. Here we used sucrose to minimize the damage of the oocyte membrane. When the oocytes were suspended in 0.5% sucrose, poor quality oocytes showed rough cytoplasmic membranes, while good quality oocytes maintained smooth membranes. However, when the tatters were subjected to in vitro fertilization, no significant differences were observed in cleavage rates (82% of control Vs. 84% of sucrose treated oocytes). The Same trends were obtained from the oocytes fertilized after microinjection of LN$\beta$-EGFP and LNC-hGH genes into the perivitelline spares. The rates of cleavage and blastocyst from microinjection of LN$\beta$-EGFP genes were 81 and 25%, and from microinjection of LNC-hGM genes were 53 and 30%, respectively. The result indicated that microinjected oocytes could develop to the blastocyst stages after in vitro fertilization with no significant difference from control group. Moreover, the integration of hGH-gene (by PCR analysis) was detected in 52% of infected cleaved embryos and the expression of EGFP-gene (under a fluoresrence microscope) was also observed in 34% of infected blastocyst. These results indicated that 0.5% sucrose treatment could be an efficient method not only to select good quality embryos but also to inject retroviral vectors into perivitelline spares without any harm and hence improving developmental rates.
In this study, we have tested whether the retrovirus vector system is applicable in transgenic cattle production. To overcome low infectivity of currently available retrovirus vector system we have directly microinjected retrovirus-producing cells into the perivitelline space of the day 1.5 embryos. The virus-producing cell line was designed to release replication-defective retrovirus encapsidated with Gibbon ape leukemia virus (GaLV) envelope protein. E. coli LacZ gene was used as a marker gene to facilitate evaluation of the transgene expression and X-gal staining at morula or blastocyst stage resulted in expression of E. coli LacZ gene The results in these experiments were summarized as follows : 1. The lowest concentration of polybrene necessary for efficient virus infection was Sf' g/ml. 2. Development rate from day 1.5 embryos microinjected with virus-producing cells to the morulae /blastocysts was 29%. 3. 21% of the morulae /blastocysts were LacZ+. 4. There was no evidence that the retrovirus-producing cells used in this study produced replication-competent retrovirus.
Preimplantation embryos of the rat was examined by the morphological changes in the cortical granule envelope (CGE), blastomere surface, and zona pellucida (ZP) of embryo after cortical reaction. The ultrastructural characteristics and CGE of embryos were observed with the scanning electron microscope and fluorescence microscope. In the ultrastructural characteristic of embryo surface, surface microvilli were shortened and the CGE-like structure existed above microvilli in eight-cell embryo. Rough spongy surface and decreased network numbers were key characters of embryonic ZP compared to unfertilized oocyte. The CGE formed by cortical reaction existed in perivitelline space during embryo development but it was thin and locally distributed ill contrast to fertilized oocyte. The present results indicate that cortical reaction forms cortical granule envelope in perivitelline space and causes not only zona hardening, but also ultrastructural changes in ZP and cell membrane of preimplantation embryos.
Yu, Eun Jeong;Ahn, Hyojeong;Lee, Jang Mi;Jee, Byung Chul;Kim, Seok Hyun
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.42
no.4
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pp.156-162
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2015
Objective: To investigate fertilization and embryo quality of dysmorphic mature oocytes with specific morphological abnormalities obtained from intracytoplasmic sperm injection (ICSI). Methods: The fertilization rate (FR) and embryo quality were compared among 58 dysmorphic and 42 normal form oocytes (control 1) obtained from 35 consecutive ICSI cycles, each of which yielded at least one dysmorphic mature oocyte, performed over a period of 5 years. The FR and embryo quality of 441 normal form oocytes from another 119 ICSI cycles that did not involve dysmorphic oocytes served as control 2. Dysmorphic oocytes were classified as having a dark cytoplasm, cytoplasmic granularity, cytoplasmic vacuoles, refractile bodies in the cytoplasm, smooth endoplasmic reticulum in the cytoplasm, an oval shape, an abnormal zona pellucida, a large perivitelline space, debris in the perivitelline space, or an abnormal polar body (PB). Results: The overall FR was significantly lower in dysmorphic oocytes than in normal form oocytes in both the control 1 and control 2 groups. However, embryo quality in the dysmorphic oocyte group and the normal form oocyte groups at day 3 was similar. The FR and embryo quality were similar in the oocyte groups with a single abnormality and multiple abnormalities. Specific abnormalities related with a higher percentage of top-quality embryos were dark cytoplasm (66.7%), abnormal PB (50%), and cytoplasmic vacuoles (25%). Conclusion: The fertilization potential of dysmorphic oocytes in our study was lower, but their subsequent embryonic development and embryo quality was relatively good. We were able to define several specific abnormalities related with good or poor embryo quality.
Capacitated and acrosome~reacted spermatozoa were microinjected into the perivitelline space of bovine oocytes matured in vitro. Oocytes obtained from the ovaries of slaughtered heifers and cows were cultured in vitro in the TCM-199 supplemented with 20% FCS for 24 hr at 39$^{\circ}C$ under an atmosphere of 5% CO$_2$ 8% O$_2$. Fresh or frozen spermatozoa were incubated for 2 hr at 39°C under an atmos-phere of 5% CO$_2$, 8% O$_2$ in Ham's F-lO medium containing 0.75% BSA for capacitation, and kept for 30 min in culture medium containing 12 mM of dbcGMP and lOmM of immidazol for acrosome resction. One motile spermatozoon was injected into the perivitelline space of each oocyte. The 2nd polar body and the pronuclei were observed in 9.5% and 5.4% of oocytes, respectively. The rate of cleavage of oocyte over 2-cell stage was 4.1%(10 of 242), These results indicate that the microinjection may be a useful technique to study sperm-oocyte interaction.
Our goal was to examine the effects of early denudation on the enucleation efficiency and developmental competence of embryos following somatic cell nuclear transfer (SCNT) and parthenogenetic activation (PA). Oocytes were denuded following 30 h of in vitro maturation (IVM) and then cultured with (D+) or without (D-) their detached cumulus cells for additional $10{\sim}14$ h. Control oocytes were denuded after $40{\sim}44$ h of IVM. The size of the perivitelline space was larger at 40 h of IVM ($11.7{\sim}11.8{\mu}m$) than at 30 h ($8.9{\mu}m;$ p<0.01). The distances between the metaphase II (M II) plates and the polar bodies (PBs) were shorter in D+ ($19.4{\mu}m$) and D- oocytes ($18.9{\mu}m$) than in control oocytes ($25.5{\mu}m;$ p<0.01). Enucleation rates following blind aspiration at 40 h of IVM were higher (p<0.01) in D+ (92%) and D- oocytes (93%) compared to controls (82%). Early denudation did not affect oocyte maturation or the in vitro development of SCNT and PA embryos. When SCNT embryos from D+ oocytes were transferred to four gilts, pregnancy was established in two pigs, and one of them farrowed three live piglets. In conclusion, early denudation of oocytes at 30 h of IVM could improve the enucleation efficiency by maintaining the M II plate and the PB within close proximity and support the in vivo development of SCNT embryos to term.
Objective: This study investigated the clinical and laboratory factors associated with the presence of dysmorphic oocytes in intracytoplasmic sperm injection (ICSI) cycles. Methods: The study involved 200 ICSI cycles, performed from 2020 to 2021, that yielded at least one mature oocyte. Clinical characteristics and ovarian stimulation methods were compared between 68 cycles with at least one dysmorphic oocyte (the dysmorphic group) and 132 cycles with normal-form oocytes only (the non-dysmorphic group). Dysmorphic oocytes were characterized by dark cytoplasm, cytoplasmic granularity, cytoplasmic vacuoles, refractile bodies in the cytoplasm, smooth endoplasmic reticulum in the cytoplasm, an oval shape, an abnormal zona pellucida, a large perivitelline space, debris in the perivitelline space, or an abnormal polar body. Results: The ages of the women, indications for in vitro fertilization, serum anti-Müllerian hormone levels, and rates of current ovarian endometrioma were similar between the dysmorphic and non-dysmorphic groups. In both groups, the three ovarian stimulation regimens, two types of pituitary suppression, and total gonadotropin dose were employed similarly. However, the dual-trigger method was used more frequently in the dysmorphic group (67.6% vs. 50%, p=0.024). The dysmorphic group contained significantly more immature oocytes and exhibited significantly lower oocyte maturity (50% vs. 66.7%, p=0.001) than the non-dysmorphic cycles. Within the dysmorphic group, significantly lower oocyte maturity was found in the cycles using a dual-trigger, but not in those with a human chorionic gonadotropin trigger. Conclusion: ICSI cycles with dysmorphic oocytes are closely associated with reduced oocyte maturity. This association was observed exclusively in dual-trigger cycles.
This study investigated the characteristics of the eggs and yolk sac larvae of Korean striped bitterling, Acheilognathus yamatsutae, spawned and grown In mussels. The number of eggs in the ovary was small ($358{\pm}108$ SD). The eggs were oval and large, and the formation of the perivitelline space was narrow. The eggs were hatched at only 41 hours after fertilization but the hatched larvae were underdeveloped. The development of yolk projection and minute tubercles on the skin surface was notable, along with the vividly moving tail in the hatched larvae. The yolk projection and minute tubercles were disappeared upon enhancement of the motor ability of the larvae was enhanced. The formation of eyes and body pigments of the larvae was relatively delayed in comparison with that of other cyprinid larvae. After completely consuming the yolks the larvae escaped from the mussel for free swimming and exogenous feeding.
This experiment was carried out to produce cloned aniraals by nuclear transplantation in rabbits. The ovulated oocytes were collected from the oviducts between 14 and 15 hours after hGG injection. The denuded oocytes were used as nuclear recipient cytoplasm following enucleation by micromanipulation. The blastomeres separated from the 8-cell embryos were used as nuclear donor. The nucleated oocytes receiving a blastomere in the perivitelline space were electrically fused in the 0.28 M mannitol solution at 1.5 kV /cm, 60$\mu$sec for three times. The nuclear transplant embryos which were used and developed to 2- to 4-cell stage in vitro were transferred into the oviducts of synchronized recipient does. A total of 64 nuclear transplant embryos were transferred to 7 recipient does and produced three offspring(4.7%) from a foster mother 31 days after embryo transfer.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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