In this study, the effects of pH, temperature, IPTG concentration and substrate (MSG) concentration on gamma-aminobutyric acid (GABA) production in engineered Escherichia coli were investigated. Glutamate decarboxylase and glutamate/GABA antiporter were overexpressed in GABA aminotransferase knock-out strain for GABA production. The result of optimization study showed the GABA bioconversion was optimized at pH 3.5, $30^{\circ}C$, 0.5 mM IPTG, 10 g/L MSG. At this condition, 5.23 g/L of final GABA concentration of was achieved from 10 g/L of MSG, which corresponded to a GABA yield of 85.77%.
다양한 배양조건을 이용하여 당근 모상근의 생장과 carotenoid 함량을 조사하였으며, 이러한 배양조건을 airlift형생물 반응기에 적용하여 모상근의 다량 배양을 시도하였다. 고형배지 배양에서의 carotenoid 함량은 광조건에서 배양된 모상근이 암조건에서 배양된 모상근보다 10배 정도 증가하였으며, 모상근의 생장은 광조건이 암조건보다 낮은 수준이었다. 공기 유출기 배양에서는 모상근이 광조건과 암조건 모두에서 매우 빠르게 생장하여 생줄량의 차이가 없었으며, 모상근의 생장과 carotenoid 함량에 있어서 빛의 조사는 모상근의 전체적인 생중량을 증가시키기 보다는 배양 후기 생장단계에서 carotenoid 함량을 증가시켜서 암조건에 비하여 10배 정도의 carotenoid(11 $\mu\textrm{g}$/g)를 생산하였다. 모상근을 생물 반응기에서 배양하였을 때, 모상근이 지수함수적으로 빠르게 생장하여 배양 25일 동안에 처음 무게의 11배를 나타내었다. 그리고 pH는 처음 5.5에서 5일후 4.9로 떨어지다가 그 이후에 일정한 수준(pH 4.8)을 보여주었으며, 광주기와 광도을 조절하지 않은 상태에서의 carotenoid 함량은 2$\mu\textrm{g}$/g으로 나타났다.
Alpha-interferon was produced by using recombinant Escherichia coli strains, which carry cloned alpha-interferon gene in plasmid vectors, pIF-III-B and pIF-III-C. With the aid of signal sequence of E. coli lipoprotein, which is placed right in front of the upstream of the cloned alpha-interferon gene of the plasmids, about 50% of alpha-interferon produced was excreted or secreted. Meanwhile, there was no extracellular production of alpha-interferon from the recombinant strain carrying the plasmid Hif-2h that lacks the signal sequence of lipoprotein.
Simultaneous liquefaction and cyclodextrin (CD) production were conducted on potato starch using cyclomaltodextrin glucanotransferase (CGTase) from a mutant strain MNNG 8 of Bacillus stearothermophilus No. 239. A high concentration (30%) of potato starch was converted to cyc1o-dextrins (CDs) with 29% yield in the conditions of pH 6.0, temperature $80^{\circ}C$, 4.3 mM $CaCl_2$, CGTase addition of 3.0 dextrinizing activity unit (DAU) at $40^{\circ}C$/g starch.
As one of the $CO_2$ reduction strategies, a biological method was proposed to convert $CO_2$ to useful biomass with antioxidant carotenoids by photosynthetic microorganisms. One of the photoautotrophs, Haematococcus pluvialis is a freshwater green microalga and accumulates the secondary carotenoid astaxanthin during induction of green vegetative cells to red cyst cells. In this study, $CO_2$ fixation and astaxanthin production using H. pluvialis was conducted by photoautotrophic culture in the $CO_2$ supplemented photo-incubator. Maximum growth rate of H. pluvialis was obtained at a 5% $CO_2$ environment on basic N and P conditions of NIES-C medium. The photoautotrophic induction consisted of 5% $CO_2$ supply and high light illumination promoted astaxanthin synthesis in H. pluvialis, yielding an astaxanthin productivity of $9.6mg/L{\cdot}day$ and a $CO_2$ conversion rate of $27.8mg/L{\cdot}day$ to astaxanthin. From the results the sequential photoautotrophic culture and induction process using H. pluvialis is expecting an alternative $CO_2$ reduction technology with a function of valuable biosubstance production.
The purpose of this study is to identify the effects of PPARβ/δ over-expression on PGC-1α mRNA and protein stability after single bout of swimming exercise in mice skeletal muscle. Empty vector (EV) or PPARβ/δ was over-expressed in tibialis anterior(TA) using electroporation(EPO) technique to compare with non-treatment muscle(control; Con). TA muscles were dissected at 0h, 24h or 54h after termination of exercise. PGC-1α mRNA in Con, EV and PPARβ/δ over-expressed muscles were increased 6.8 fold (p<.001), 6.2 fold(p<.001) and 7.1 fold(p<.001), respectively, than sedentary(Sed) group at 0h after exercise and then reverted to Sed group levels at 24h and 54h after termination of exercise. PGC-1α and PGC-1α ubiquitination in EV treated muscles were increased 2.2 fold and 1.74 fold, respectively, than Sed group at 24h after termination of exercise, and then reverted to Sed group levels at 54h after termination of exercise. PGC-1α in PPARβ/δ over-expressed muscles at 24h and 54h after termination of exercise were increased 2.5 fold and 2.2 fold, respectively, than Sed group, but PGC-1α ubiquitination was not increased at 24h and 54h after termination of exercise. Our results indicate that PPARβ/δ over-expression does not increase PGC-1α mRNA stability, but increase PGC-1α protein stability through post-translation mechanism after termination of exercise.
The condition of immobilization of the partially purified levan fructotransferase and the properties of the immobilized enzyme was investigated. Levan fructotransferase was immobilized on ${\kappa}\;-carrageenan$ beads by entrapment method. The optimal ${\kappa}\;-carrageenan$ concentration was obtained 2%(w/v) (or the matrix. At that time, immobilized enzymes(0.81 units) have relative low activity compare with soluble enzyme(7.7 units). To immobilized and soluble enzyme, optimal activity temperature and pH were measured $55^{\circ}C$, 6.0 in sodium phosphate buffer 20mM solution. If crosslinking agent was added, proper concentration was 0.5%(v/v). At $37^{\circ}C$, immobilized and soluble enzyme converted levan to oligofructose and DFA IV, and the conversion ratio was 32% and 61% at 60 hr.
A Penicillium strain which produces $eta$-galactosidase with high transgalactosylation activity, was isolated from soil and registered as Penicillium sp, KFCC 10888. When $eta$-galactosidase from Penicillium sp. KFCC 10855 reacted with 40% lactose, transgalactosylation ratio reached up to 70% at the 73% conversion of initial lactose. The biosynthesis of the enzyme in Penicillium sp. KFCC 10888 was not induced by lactose. The soybean meal was an effective component of the culture medium. The optimum pH and temperature for transgalactosylation were 4.0 and 55$^{\circ}C$, respectively. The production of galactooligosaccharides was in proportion to the initial lactose concentration. When the enzyme reacted with 40% lactose (pH 4.0) at 55$^{\circ}C$, the concentration of galactooligosaccharides increased up to 40% of total solid concentration.
The cellulase gene of Bacillus licheniformis K11 which has plant growth-promoting activity by auxin and antagonistic ability by siderophore was cloned in pUC18 using PCR employing heterologous primers. The 1.6kb PCR fragment contained the full sequence of the cellulase gene, denoted celW which has been reported to encode a 499 amino acid protein. Similarity search in protein data base revealed that the cellulase from B. licheniformis K11 was more than 97% identical in amino acid sequence to those of various Bacillus spp. The cellulase protein from B. licheniformis K11, overproduced in E. coli DH5${\alpha}$ by the lac promoter on the vector, had apparent molecular weight of 55 kDa upon CMC-SDS-PAGE analysis. The protein not only had enzymatic activity toward carboxymethyl-cellulose (CMC), but also was able to degrade insoluble cellulose, such as Avicel and filter paper (Whatman$^{\circledR}$ No. 1). In addition, the cellulase could degrade a fungal cell wall of Phytophthora capsici. Consequently B. licheniformis K11 was able to suppress the peperblight causing P. capsici by its cellulase. Biochemical analysis showed that the enzyme had a maximum activity at 60$^{\circ}C$ and pH 6.0. Also, the enzyme activity was activated by Co$^{2+}$ of Mn$^{2+}$ but inhibited by Fe$^{3+}$ or Hg$^{2+}$. Moreover, enzyme activity was not inhibited by SDS or sodium azide.
Kang, Hye Jung;Lee, Jong Woo;Park, Tae Woo;Park, Hye Yoon;Park, Junseong
Journal of the Society of Cosmetic Scientists of Korea
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v.46
no.4
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pp.349-360
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2020
Bio-conversion manufacturing technology has been developed to produce ginsenoside Rd which is increasingly in demand as a cosmetic material due to various possibilities related to improving skin function. In order to convert ginsenoside Rb1 which is contained in red ginseng saponin (RGS) into Rd, several commercial enzymes were tested. Viscoflow MG was found to be the most efficient. In order to optimize the conversion of RGS to ginsenoside Rd by enzymatic transition was carried out using response surface methodology (RSM) based on Box-Behnken design (BBD). The main independent variables were RGS concentration, enzyme concentration, and reaction time. Conversion of ginsenoside Rd was performed under 17 conditions selected according to BBD model and optimization conditions were analyzed. The concentration of the converted ginsenoside Rd ranged from 0.3113 g/L to 0.5277 g/L, and the highest production volume was obtained under condition of reacting 2% RGS and 1.25% enzyme for 13.5 hours. Consequently, RGS concentration, enzyme concentration which is 0.05 less than p-value and among the interactions between the independent variables, the interaction between enzyme concentration and reaction time was confirmed to be the most influential.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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