Penicillium diversum KCTC 6786으로부터 두개의 chitin synthase 유전자 절편(PdCHSl과 PdCHS2)을 PCR로 증폭하고 cloning하였다. PdCHSl과 PdCHS2는 primer 서열을 제외하면 각각 570 bp 길이의 연속된 open reading frame (ORF)을 포함하고 있었다. BLASTP를 이용하여 유추된 아미노산 서열의 유사도를 분석한 결과, P. diversum은 자낭균류와 상당한 진화적 유연관계가 있음을 알 수 있었다. 이들 아미노산 서열을 CLASTAL W를 이용하여 분석한 결과, 본 실험에서 분리된 두 유전자 절편은 Bowen 등 (1992)이 제시한 몇 부류 중 서로 다른 부류, 즉, PdCHSl은 Class I에, PdCHS2는 Class II에 각각 속하는 것으로 확인되었다. 또한, Southern blot 분석을 통하여, 각 유전자는 P. diversum KCTC 6786의 genome에 1개씩만 존재함을 알 수 있었다.
The clpks18 gene was first cloned and identified in Curvularia lunata. It contains 6571 base pairs (bp) and an 6276 bp open reading frame encoding 2091 amino acids. The ClPKS18 deletion mutant displayed an albino phenotype, and almost lost the ability to product 5-(hydroxymethyl) furan-2-carboxylate (M5HF2C) toxin, implying that clpks18 gene in C. lunata is not only involved in 1,8-dihydroxynaphthalene melanin synthesis, but also relatively associated with M5HF2C toxin biosynthesis of the pathogen. The pathogenicity assays revealed that ${\Delta}ClPKS18$ was impaired in colonizing the maize leaves, which corresponds to the finding that ClPKS18 controls the production of melanin and M5HF2C in C. lunata. Results indicate that ClPKS18 plays a vital role in regulating pathogenicity of in C. lunata.
IPSKCDNA gene(1.8 kbp) encoding rat brain IP3K enzyme contained Not I restric site in open reading frame. The Not I sequence, GCGGCCGC, was converted to GCAGCCGC by site-directed mutagenesis. The mutated IP3KcDNA was digested with EcoR I and ligated with EcoR I-restricted psp72·Not2 vector. The resulting psp72 · Not2-IP3KCDNA was digested with the Not I restriction enzyme and then subcloned into the Not I -digested PZIP · NeoSV(X) mammalian expression vector. The PZIP · NeoSV(X) -IPSKCDNA was transfected into CCL39 hamster lung fibroblast cells. The efficiency of the expressed IPSKCDNA gene was significantly higher than expected generally, not only a mean 5-fold increase in the amount of enzyme, but also 16-fold increase in enzyme activity from tractsfected CCL39 cells by the method of Western blot using anti-lP3K antibodies. Both distribution of IPSK in various rat tissues and biochemical properties were discussed.
The entire nucleotide sequence of the TKL1 gene encoding transketolase (TKL) in an erythritol-producing yeast of Candida magnoliae was determined by degenerate polymerase chain reaction and genome walking. Sequence analysis revealed an open reading frame of C. magnoliae TKL1 (CmTKL1) that spans 2,088 bp and encodes 696 amino acids, sharing 61.7% amino acid identity to Kluyveromyces lactis TKL. Functional analysis showed that CmTKL1 complemented a Saccharomyces cerevisiae tkl1 tkl2 double mutant for growth in the absence of aromatic amino acids and restored transketolase activity in this mutant. An enzyme activity assay and RT-PCR revealed that the expression of CmTKL1 is induced by fructose, $H_2O_2$, and KCl. The GenBank accession number for C. magnoliae TKL1 is KF751756.
A gene encoding thermostable pectinase (TmPec) was isolated from hyperthermophilic microorganism, Thermotoga maritima. The open reading frame (ORF) of TmPec gene is 1,104 bp long and encodes 367 amino acid residues with a molecular weight of 40,605 Da. To analyze the enzymatic activity and biochemical properties, the ORF of TmPec gene excluding putative signal sequence of 27 amino acids was introduced into the E. coli expression vector, pRSET-B, and overexpressed in E. coli BL21. Protein concentration of purified recombinant TmPec was 1.1 mg/mL with specific activity of 56 U/mg protein on pectin. The recombinant TmPec showed the highest activity at around $85-95^{\circ}C$, and at around pH 6.5. It was stable at temperature below $85^{\circ}C$. In the presence of $Ca^{2+}$, the activity of recombinant TmPec was increased to 146.3% of normal level. In contrast, $Ba^{2+}$ and Mn2+ showed strong inhibition to the recombinant TmPec.
Kim, Ok Tae;Ahn, Jun Cheul;Hwang, Sung Jin;Hwang, Baik
Molecules and Cells
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제19권2호
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pp.294-299
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2005
A cDNA encoding farnesyl diphosphate synthase (FPS; EC2.5.1.1/EC2.5.1.10) was isolated from Centella asiacita (L.) Urban, using degenerate primers based on two highly conserved domains. A full-length cDNA clone was subsequently isolated by rapid amplification of cDNA ends (RACE) PCR. The sequence of the CaFPS (C. asiatica farnesyl diphosphate synthase) cDNA contains an open reading frame of 1029 nucleotides encoding 343 amino acids with a molecular mass of 39.6 kDa. The deduced CaFPS amino acid sequence exhibits 84, 79, and 72%, identity to the FPSs of Artemisia annua, Arabidopsis thaliana, and Oryza sativa, respectively. Southern blot analysis suggested that the C. asiatica genome contains only one FPS gene. An artificially expressed soluble form of the CaFPS was identified by SDS-PAGE. It had high specific activity and produced farnesyl diphosphate as the major isoprenoid.
Poly(A)+ RNA was selected from Canavalia lineata root nodule RNA through oligo(dT) cellulose column and used for construction of a cDNA library using λgt10-EcoRI arms. The size of the library was 7.2$\times$105 pfu/mL. A full length leghemoglobin (Lb) cDNA clone, pCILb1(687 bp) isolated with soybean Lb probe, contained one open reading frame (ORF) of 447 bp with 54 bp plus 186 bp at 5' and 3' untranslated region, respectively. A consensus sequence of plant translation start region (AAAATGGG) was found at 5' untranslated region, and two polyadenylation-related sequence (AATAAA, AATAAG) and a conserved motif between them (gACTTGTT) were found upstream of poly(A)+ tail consisted of 13 (A)s at 3' untranslated region. The ORF encoded a polypeptide consisted of 149 amino acids with a molecular weight of 16.2 kD. Deduced amino acid sequences showed high degree of homology values with those of other Lbs ranging from 66% (Casuarina glauca) to 85% (Glycine max).
Aminoalcoholphosphotransferase catalyzes the synthesis of phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine from diacylglycerol plus a CDP-aminoalcohol such as CDP-choline or CDP-ethanolamine. Previously we suggested the presence of possible isoforms of this enzyme from Chinese cabbage roots and now report the cDNA cloning and expression analysis of AAPT3 encoding a third isoform of aminoalcoholphosphotransferase (AAPT3). AAPT3 contains an open reading frame of 1,176 bp coding for a protein of 392 amino acids. It shares 96 and 95% identity with Chinese cabbage AAPT1 and AAPT2, respectively, at the deduced amino acid level. The results from reverse transcriptase-polymerase chain reaction analysis indicate that expression of AAPT3 is up-regulated by low temperature as well as AAPT1 and AAPT2.
To isolate the $\beta$-galactosidase producing thermophilic bacteria, samples of mud and water were collected from hot springs of avolcanic area near Golden Springs in New Zealand. Among eleven isolated strains, the strain of KNOUC112 produced the highest amounts of $\beta$-galactosidase at 40 h incubation time (0.013 unit). This strain was aerobic, asporogenic bacilli, immobile, gram negative, catalase positive, oxidase positive, and pigment producing. Optimum growth was at 70-72$^{\circ}C$, pH 7.0-7.2, and it could grow in the presence of 3% NaCl. The main fatty acids of cell components were iso-15:0 (30.26%), and iso-17:0 (31.31%). Based on morphological and biochemical properties and fatty acid composition, the strain could be identified as genus Thermus, and finally as Thermus thermophilus by phylogenetic analysis based on 16S rRNA sequence. So the strain is designated as Thermus thermophilus KNOUC112. A gene from Thermus thermophilus KNOUC112 encoding $\beta$-galactosidase was amplified by PCR using redundancy primers prepared based on the structure of $\beta$-galactosidase gene of Thermus sp. A4 and Thermus sp. strain T2, cloned and expressed in E. coli JM109 DE3. The gene of Thermus thermophilus KNOUC112 $\beta$-galactosidase(KNOUC112$\beta$-gal) consisted of a 1,938 bp open reading frame, encoding a protein of 73 kDa that was composed of 645 amino acids. KNOUC112$\beta$-gal was expressed as dimer and trimer in E. coli JM109 (DE3) via pET-5b.
A cDNA clone encoding a MDR-like ABC transporter protein was isolated from Brassica rapa seedlings, through rapid amplification of cDNA ends (RACE). This gene (named as Brmdr 1; GenBank accession no.: DQ296184 ) had a total length of 4222 bp with an open reading frame of 3900 bp, and encoded a predicted polypeptide of 1300 amino acids with a molecular weight of 143.1 kDa. The BrMDR1 protein shared 71.0, 62.5, 60.0 and 58.2% identity with other MDR proteins isolated from Arabidopsis thaliana (AAN28720), Coptis japonica (CjMDR), Gossypium hirsutum (GhMDR) and Triticum aestivum (TaMDR) at amino acid level, respectively. Southern blot analysis showed that Brmdr1 was a low-copy gene. Expression pattern analysis revealed that Brmdr1 constitutively expressed in the root, stem petals and stamens, but with lower expression in leaves and open flowers. The domains analysis showed that BrMDR1 protein possessed two transmembrane domains (TMDs) and two nucleotide binding domains (NBDs) arranging in "TMD1-NBD1-TMD2-NBD2" direction, which is consistent with other MDR transporters. Within NBDs three characteristic motifs common to all ABC transporters, "Walker A", "Walker B" and C motif, were found. These results indicate that BrMDR1 is a MDR-like ABC transporter protein that may be involved in the transport and accumulation of secondary metabolites.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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