A linkage map of Capsicum annuum L. was constructed by random amplified polymorphic DNA (RAPD) markers followed in a backcross population of an intraspecific cross between cultivars HDA210 and Yatsufusa. A total of 420 random primers were tested and 311 polymorphic bands were generated by 158 random primers. Among them, 86 Yatsufusa specific bands generated by 52 primers were examined for mapping. Most bands except three segregated in Mendelian fashion fitting the expected 1:1 ratio. The total length of the map was 533 cM distributed in 15 linkage groups. The map distance between adjacent markers ranged 0 to 32.8 cM, with an average distance of 9.1 cM (63 markers). Some markers were clustered and this may be due to the amplification of a repetitive sequence by the RAPDs. Primer pairs for a sequence characterized amplified region (SCAR) were developed and the segregation scores by the SCAR primers were in accordance with the RAPD data. Two QTL markers for number of axillary shoots and for early flowering were developed. One QTL for early flowering located in the linkage group 3 and explained 61 "io of the phenotypic variation. The other QTL for the number of axillary shoots located in the linkage group 4 explained 55 % of the phenotypic variation.tion.
Kim, Tae-Dong;Kim, Ji-Ah;Lee, Na-Nyum;Choi, Chang-Ho
Journal of Plant Biotechnology
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v.47
no.1
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pp.40-45
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2020
An efficient protocol for multiple shoot induction and plant regeneration from axillary bud culture of Magnolia 'Vulcan' was developed in the present study. Primary shoots were obtained from axillary bud explants cultured on Murashige and Skoog (MS) medium containing 1.0 mg/L 6-benzylaminopurine (BA). To induce multiple shoots effectively, primary shoot tips were cultured on MS medium supplemented with different concentrations of BA and zeatin at 0, 0.2, 0.5, and 1.0 mg/L. Of these treatments, the MS medium with 0.5 mg/L BA resulted in the highest number of shoots per explant with an average value of 5.9, and it produced the greatest shoot height at 4.8 cm after 12 weeks of culturing. In the rooting of in vitro produced shoots, the greatest percentage of explants forming roots (91.3%), number of roots per explant (9.7), and root length (2.8 cm) were obtained in half-strength MS medium supplemented with 6.0 mg/L indole-3-butyric acid (IBA). Regenerated plantlets were successfully acclimatized and hardened off inside the culture room with 87.5% survival rate. Plants were transferred to a greenhouse with a 97.2% survival rate. The highly efficient shoot multiplication and plant regeneration system reported herein can be used for large-scale clonal propagation of valuable Magnolia species or cultivars.
Kim, Ok-Tae;Bang, Kyong-Hwan;In, Dong-Soo;Kim, Tae-Soo;Seong, Nak-Sul;Cha, Seon-Woo;Ahn, Jun-Cheul;Hwang, Baik
Korean Journal of Medicinal Crop Science
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v.14
no.5
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pp.278-281
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2006
The effect of plant growth regulators was investigated on in vitro shoot proliferation from axillary bud explants of Hypericum erectum. To determine the optimal cytokinin for proliferation of axillay buds, we carried out screening four cytokinins (BA, kinetin, 2iP, TDZ). When nodal segments were cultured on MS medium supplemented with $4.5\;{\mu}M$ TDZ (thidiazuron), a number of shoots were induced. Our results indicated that the addition of TDZ to culture medium resulted in the induction of significantly more axillary buds than in the addition of other cytokinins. The optimal concentration of TDZ for proliferation of axillary buds was $10\;{\mu}M$. 92% of shoots spontaneously rooted without any plant growth regulator (PGR) and formed whole plantlets within one month. More than 95% of these regenerants survived and they did not show any detectable variation in morphology or growth characteristics compared to their donor plants.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2020.12a
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pp.60-60
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2020
To establish in vitro axillary bud culture conditions of Echinosophora koreensis Nakai, one of Korean endemic endangered species famous for beautiful flowers, we tested the influence of plant growth regulators (PGRs) in shooting and rooting stage from in vitro plants. In shoot multiplication, addition of 6-benzylaminopurine (BA) to the media induced 2.5 to 3 shoots per bud during 4 weeks of culture. And media including 0.5 mg L-1 thidiazuron (TDZ) produced 3 to 4 shoots per bud. However, zeatin and isopentenyl adenine (2-ip) were not successful to increase shoot number, and the combination treatments of BA with other PGRs were also not effective. Shoots were smaller than 2 cm in length, in most of the treatments. In rooting, naphthalene acetic acid (NAA) treatments in the range of 0.5 to 4.0 mg L-1 appeared to increase rooting rate by 10% to 60% approximately when compared with the control but roots developed with callus clusters. Indole butyric acid (IBA) addition had little effect on rooting (below 10%), while some roots were longer than in NAA treatments and some shoots were longer on high IBA concentrations (4.0 to 8.0 mg L-1). It is suggested that micropropagation is a highly applicable and promising to multiplication and conservation of rare and endangered endemic species.
An efficient in vitro plant regeneration system was developed through shoot proliferation from axillary buds of Tectona grandis (L.f), APNBV-1 (Andhra Pradesh North Badrachalam Venkatapuram-1) clone. Multiple shoots of high quality were produced in vitro from axillary bud explants. An average of 4.39 shoots/explant were obtained on Murashige and Skoog's (MS) medium supplemented with plant growth regulators (PGRs) benzyl amino purine (BA), kinetin (KN), indole acetic acid (IAA), gibberillic acid ($GA_3$), growth adjuvants casein hydrolysate (CH), adenine sulphate (Ads) and antioxidants ascorbic acid, polyvinyl pyrrollidine (PVP). Eighty five percent of rooting was observed in ex vitro rooting media containing IBA and vermiculite. In ex vitro rooting, single shoots with 2 to 3 nodes were subjected to IBA of different concentrations at different periods of time intervals. Direct rooting in vermiculite at 500 ppm concentration of IBA resulted in 4.3 number of roots with 2 cm length. Minimum response of rooting and length of roots were recorded at 100 ppm concentration of IBA. Planlets were transferred to plastic bags for short acclimatization stage in green house where they survived at 95%.
Physiologically modified stem nodes derived from ex vitro and in vivo explants of hybrid aspen (Populus alba L.X P.grandidentata Michx. 'Crandon') were tested for their multiple shoot regeneration capacity using a broad spectrum dosage of cytokinins. Ex vitro derived stem nodes with excised axillary buds at the time of culture produced 11 to 13 multiple shoots on 20 to 30 $\mu$M zeatin containing Woody Plant Medium (WPM) after 6 weeks. Excision of axillary bud sprouts after 2 weeks of culture and culture of the remaining stem nodes on WPM with 1.0 to 2.0 $\mu$M BA or 10 to 30 $\mu$M zeatin produced 13 to 15 and 7 to 8 shoots per explant, respectively, Multiple tiny shoots were produced when in vivo derived stem nodes (on which all leaves were removed) were cultured on WPM with 30 to 50 $\mu$M 2iP or 20 to 50 $\mu$M zeatin. The greatest number of multiple tiny shoot proliferation (32 to 50 shoots per explant) were obtained when the explants were cultured on media containing 20 $\mu$M zeatin. Successful transplanting of these multiple shoots into the greenhouse and/or nursery was achieved.
Kim ,Kwang-Soo;Sung, Nak-Sool;Kim, Myung-Won;Pyo, Byung-Sik;Hwang, Baik
Korean Journal of Plant Tissue Culture
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v.24
no.6
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pp.357-360
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1997
Multiple shoot formation was obtained from excised axillary buds of Achyranthes japonica NAKAI cultured on MS media containing various growth regulators such as auxin and cytokinin. The highest average number of shoots was obtained in 1 mg/L NAA and 2 mg/L BA after 6 weeks (25.8 adventitious shoots per node). Although the regeneration rate was less than the former condition, optimal combination for the production of more shoots with a suitable size was 0.5 mg/L NAA and 1 mg/L BA (19.7 adventitious shoots per node). Roots were induced from regenerated shoots after 3 weeks culture, transferred to 1/2 MS medium supplemented with 0.1 mg/L IBA. Micropropagated plants were successfully transferred to soil.
Chung, Mi Young;Naing, Aung Htay;Khatun, Khadiza;Ahn, Hyung Geun;Lim, Ki Byung;Kim, Chang Kil
Journal of Plant Biotechnology
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v.43
no.4
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pp.438-443
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2016
The in vitro propagation of the commercially important Phalaeonopsis hybrid 'Little gem' was achieved by culturing the apical part and axillary buds excised from flower stalks. The explants were cultured on 5 different basal media: $3.0{\cdot}L^{-1}$ Hyponex and $4.0{\cdot}L^{-1}$ peptone ($H_3P_4$) and Murashige & Skoog (MS) media were shown to be suitable for shoot regeneration. The MS medium supplemented with $5.0mg{\cdot}L^{-1}$ 6-benzylaminopurine (BA) was found to be more efficient for shoot regeneration. However, the number of shoots induced by axillary buds was higher than that induced by the apical part. Incubation of the apical part under darkness for one week, as well as of the explants in the same medium with activated charcoal (AC) $0.5g{\cdot}L^{-1}$ promoted shoot regeneration and shoot growth; similar growth was not observed with axillary buds.
An efficient method for the rapid micropropagation of Camptotheca acuminata from axillary buds was established by application of various plant growth regulators. Among various cytokinins, $0.5mg\;L^{-1}$ BA showed the best performance on shoot multiplication, number average multiple shoots up to 10.8. The propagated shoot cuttings in vitro were elongated on NN basal medium without plant growth regulators. The secondary multiple shoots were induced at the site of initially induced buds. Rooting was induced directly near the base of the shoot on half-strength NN medium containing $0.5mg\;L^{-1}$ of IBA, whereas high concentration of $1.0mgL^{-1}$ IBA could induce callus at the base of the shoot. The camptothecin content, anticancer compound of the micropropagated plants was contained in various tissues. Camptothecin contents were 1.8 and $2.5mg\;g^{-1}$ dry weight in stems from propagated in vitro and mother plant, respectively. This result may be used to develop strategies for large-scale propagation of elite C. acuminata trees.
In order to develop an efficient micropropagation protocal for Eucalyptus pellita, on in vitro culture system has been was established by inducing axillary buds from greenhouse stock materials. Among 6different media tested, DKW medium was the best ot induce bast induce both shoot proliferation and growth. Average number of proliferated shoots of 403per explant was obtained at the concentration of 0.1mg/LBA. Most of the stem materials excreted phenolic compounds at the proximal part of the explant and caused darking of the media. Therefore, it was necessary to transfer frequently to a fresh medium and/or to add activated charcoal at the concentration of 0.02%(w/v). Generally on vitro roots were formed easily on 1/2DKW medium with NAA treatment. All the explants rooted at the medium containing 0.2mg/L NAA and displayed vigorous root growth in vitro culture conditions. After transferred to an artificial soil mixture (peatmoss: vermiculrite: perlite, 1:1:1, v/v/v) in the greenhouse, most rooted plantlets survived well without any morphological abnormalities. The results show that the species can be micropropagated effectively by the application of axillary bud culture system.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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