The dose of CD34+ cells is known to influence the outcome of allogeneic peripheral blood stem cell (PBSC) and/or T-cell-depleted transplantation. A previous study proposed that $2{\times}10^6\;CD34+\;cells/kg$ is the ideal minimum dose for allogeneic transplantation, although lower doses did not preclude successful therapy. In the case we present here, CD34+ cells were collected from a matched sibling donor on the day of allogeneic hematopoietic stem cell transplantation; however, the number of cells was not sufficient for transplantation. Consequently, PBSCs were collected three additional times and were infused along with cord blood cells from the donor that were cryopreserved at birth. The cumulative dose of total nuclear cells and CD34+ cells was $15.9{\times}10^8\;cells/kg$ and $0.95{\times}10^6\;cells/kg$, respectively. White blood cells from this patient were engrafted on day 12. In summary, we report successful engraftment after infusion of multiple low doses of CD34+ cells in a patient with severe aplastic anemia.
Single nuclei from two-, four- and eight-cell mouse embryos were transplanted into enucleated two-cell mouse embryos by micromanipulation and sendai virum mediated fusion. no significant difference in successful injectin rate and fusion rate was found between the cell stages of nuclear donor embryos. There nuclear transplant embryos receiving different cell stage nuclei were cultured in vitro for 96 hours. 75.3% of 255 embryos receiving 2-cell nuclei, 68.2% of 236 embryos reciving 4-cell nuceli and 46.9% of 228 embryos receiving 8-cell nuclei were developed to blastocyst, respectively. The number of blastomeres was significantly(P<0.05) reduced in the embryos receiving 8-cell nuclei, compared with the embryos receiving 2-cell, 4-cell nuclei or the intact embryos. Also the size of blastocysts was significantly(P<0.05) smaller in the embryos receiving 8-cell nuclei, compared with the intact or other nuclear transplant embryos. These results suggest that single nuclei introduced into the enucleated two-cell embryos are able to support the in vitro development of the reconstituted embryos to blastocysts. The prominant retardation of blastocoele formation and cell division was shown in nuclear transplant embryos receiving eight-cell nuclei when they were cultured in vitro.
The objectives of the present study were improvements in the efficiency of developmental rates to morula and blastocyst stages to produce a large number of genetically identical nuclear transplant embryos. The oocytes collected from slaughterhouse ovaries were matured for 24 h and then enucleated and cultured to allow cytoplasmic maturation and gain activation competence. And then the donor embryos were treated for 12 h with 10 $\pi$g /ml nocodazole and 7.5 $\pi$g /ml cytochalasin B to synchronize the cell cycle stage at 26 h after the onset of culture. The blastomeres were transferred into the perivitelline space of the enucleated nocytes and blastomeres and oocytes were fused by electrofusion. The cloned embryos were then cultured in various conditions to allow further development. The age of the recipient(30 vs 40 h) had no significant effect on the fusion rates(82.4 vs 82.1%) and the developmental rates to morula /blastocyst(9.8 vs 11.0%). Effect of Nocodazole treatment on the donor cell cyle synchronization to improve the developmental rates of bovine nuclear transplant embryos was significantly higher than control group(21.4 vs 10.1%, p<0.05). Significant differences were in the percentage of fusion rates(72.9,77.1vs 61.9%) in three types of fusion medium(PBS(+), mannitol and sucrose, p<0.01). The developmental rates of bovine nuclear transplant embryos appeared to be highest in mSOF medium under 5% 0$_2$ condition, but no significant differences were found when compared with TCM199-BOEC and mSOF under two different oxygen ratio(5 and 20%).
The objective of this study was to establish conditions for transfection of a foreign gene into somatic cells using cationic lipid reagents and to evaluate the effects of transfection on in vitro development of somatic cell nuclear transfer (SCNT) embryos. Green fluorescent protein (GFP) gene was used as a foreign gene and a non-transfected somatic cell was utilized as a control karyoplast. Monolayers of porcine cells were established and subsequently transfected with a GFP-expressing gene (pEGFP-N1) using three types of transfection reagents (LipofectAMINE PLUS, FuGENE 6 or ExGen500). Donor cells used for SCNT included transfected fetal or adult fibroblasts and oviduct epithelial cells, either serum-fed or serum-starved. Oocytes matured in vitro for 42 h were reconstructed with either transfected or non-transfected porcine somatic cells by electric fusion and activation using a single DC pulse of 1.8 kV/cm for $30{\mu}s$ in $Ca^{2+}$ and $Mg^{2+}-containing$ 0.26 M mannitol solution. Reconstructed oocytes were subsequently cultured in NCSU-23 medium for 168 h and the developmental competence and cell number in blastocyst were compared. There were no significant differences (P>0.05) in fusion, cleavage rates or development to the blastocyst stage between non-transfected, transfected, serum-fed and serum-starved cells. However, the rates of GFP-expressing blastocysts were higher in the FuGENE 6 group (71.4%) among transfection reagents and in the fetal fibroblasts group (70.4%) for donor cells. These results indicate that fetal fibroblasts transfected with FuGENE 6 can be used as donor cells for porcine SCNT and that GFP gene can be safely used as a marker of foreign genes in porcine transgenesis.
J. K. Cho;M.M.U. Bhuiyan;G. Jang;G. Jang;Park, E. S.;S. K. Kang;Lee, B. C.;W. S. Hwang
Journal of Embryo Transfer
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v.17
no.2
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pp.101-108
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2002
Human Prourokinase (proUK) offers potential as a novel agent with improved fibrin specificity and, as such, may offer advantages as an attractive alternative to urokinase that is associated with clinical benefits in patients with acute peripheral arterial occlusion. For production of transgenic cow as human proUK bioreacotor, we conducted this study to establish efficient production system for bovine transgenic embryos by somatic cell nuclear transfer (NT) using human prourokinase gene transfected donor cell. An expression plasmid for human prourokinase was constructed by inserting a bovine beta-casein promoter, a green fluorescent protein (GFP) marker gene, and human prourokinase target gene into a pcDNA3 plasmid. Cumulus cells were used as donor cell and transfected with the expression plasmid using the Fugene 6 as a carrier. To increase the efficiency for the production of transgenic NT, development rates were compared between non-transfected and transfected cell in experiment 1, and in experiment 2, development rates were compared according to level of GFP expression in donor cells. In experiment 1, development rates of non-transgenic NT embryos were significantly higher than transgenic NT embryos (43.3 vs. 28.4%). In experiment 2, there were no significant differences in fusion rates (85.4 vs. 78.9%) and cleavage rates (78.7 vs. 84.4%) between low and high expressed cells. However, development rates to blastocyst were higher in low expressed cells (17.0 vs. 33.3%), and GFP expression rates in blastocyst were higher in high expressed cells (75.0 vs. 43.3%), significantly.
This experiment was carried out to produce cloned aniraals by nuclear transplantation in rabbits. The ovulated oocytes were collected from the oviducts between 14 and 15 hours after hGG injection. The denuded oocytes were used as nuclear recipient cytoplasm following enucleation by micromanipulation. The blastomeres separated from the 8-cell embryos were used as nuclear donor. The nucleated oocytes receiving a blastomere in the perivitelline space were electrically fused in the 0.28 M mannitol solution at 1.5 kV /cm, 60$\mu$sec for three times. The nuclear transplant embryos which were used and developed to 2- to 4-cell stage in vitro were transferred into the oviducts of synchronized recipient does. A total of 64 nuclear transplant embryos were transferred to 7 recipient does and produced three offspring(4.7%) from a foster mother 31 days after embryo transfer.
Large quantities of high-quality recipient oocytes with uniform cytoplasm are needed for research in the promising field of somatic cell nuclear transfer (SCNT) and embryonic stem cell research. In canines, however, it is difficult to obtain large quantities of oocytes because each donor produces a limited number of mature oocytes in vivo. Although in vitro maturation (IVM) is considered an alternative approach to oocyte production, this technique is still too rudimentary to be used for the production of highquality, uniform oocytes in large quantities. One technique for overcoming this difficulty is to use oocytes obtained from different species. This technique is known as interspecies SCNT (iSCNT). This review provides an overview of recent advances in canine - porcine interspecies SCNT.
The Korean native pig (KNP) have been considered as animal models for animal biotechnology research because of their relatively small body size and their presumably highly inbred status due to the closed breeding program. However, little is reported about the use of KNP for animal biotechnology researches. This study was performed to establish the somatic cell nuclear transfer (SCNT) protocol for the production of swine leukocyte antigens (SLA) homotype-defined SCNT KNP. The ear fibroblast cells originated from KNP were cultured and used as donor cell. After thawing, the donor cells were cultured for 1 hour with 15 ${\mu}M$ roscovitine prior to the nuclear transfer. The numbers of reconstructed and parthenogenetic embryos transferred were $98{\pm}35.2$ and $145{\pm}11.2$, respectively. The pregnancy and delivery rate were 3/5 (60%) and 2/5 (40%). One healthy SLA homotype-defined SCNT KNP was successfully generated. The recipient-based individual cloning efficiency ranged from 0.65 to 1.08%. Taken together, it can be postulated that the methodological establishment of the production of SLA homotype-defined cloned KNP can be applied to the generation of transgenic cloned KNP as model animals for human disease and xenotransplantation researches.
This study was conducted to examine in vitro developmental ability of porcine embryos after somatic cell nuclear transfer. The porcine ear fell was cultured in vitro for confluency in serum-starvation condition(TCM-199 + 0.5% FBS) far 3~6 days of cell confluency. The zona pellucida of IVM oocytes were partially drilled using laser system. Single somatic cell was individually transferred into enucleated oocytes. And the reconstructed embryos were electrically fused(single DC 1.9kv/cm, 30$\mu$ sec) with 0.3M mannitol. After electrofusion, embryos were activated(single AC 5v/mm, 5sec) and cultured in HCSU-23 medium containing 10% FBS at 39$^{\circ}C$, 5% $CO_2$ in air for 6 to 8 days. The fusion rate of donor cells was 45.6, 36.8 and 46.1% in 3~4, 5~6 days of serum starvation and non serum starvation(N-S), and were 52.7. 53.0 and 51.7% in 1~2. 5~6 and 13~14 passages of donor cell culture, respectively. No significant difference was found in the fusion rate of donor cells by the duration of serum starvation treatment or the number of donor cell passages. By the size of donor cells, however, the fusion rate was significantly higher(P<0.05) for reconstructed embryos derived from 25r $\mu$m $\geq$ site of donor cells (65.3%) than that of 25~30$\mu$ m(42.5%) or 30$\mu$ m(45.5%)$\leq$ cells. The cleavage rate was significantly (P<0.05) higher in 3~4 darts of serum starvation treatment(67.1%) than that in N-S (50.7%) or 5~6 days of starvation(57.1%). The activation rate by the size of donor cells in fused oocytes was 56.5, 68.8 and 58.5%, respectively, and was not significant.
This study was conducted to investigate the effect of quiescent treatment of the donor cells on the nuclear remodeling and in vitro development of fetal fibroblast cell-cloned bovine embryos. Serum starved, confluent and nonquiescent cycling fetal fibroblast cells were transferred into the enucleated oocytes. About 20∼25% of nuclear transfer embryos fused with a serum starved or confluent cell extruded a polar body, which was slightly lower than that of nontreated control (36%). About 49∼51% of nuclear transfer embryos fused with a serum starved or confluent cell had a single chromatin clump, which was slightly higher than that of nontreated control (40%). The proportion of embryos with a single chromatin clump was significantly higher (P<0.01) in nuclear transfer embryos without showing a polar body (60.5%) than with a polar body (4.7%). Development rates to the blastocyst stage were 21.7% and 20.9% when serum starved and confluent cells were transferred, which were slightly higher than that of control (14.1 %). The result of this study suggests that quiescent treatment by serum starvation or growth to confluency of donor cells could increase the number of embryos with a normal chromatin structure, which results in increased in vitro development.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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