Purpose: Typhoid remains a major health problem, especially in the developing world. Furthermore, the emergence of multidrug-resistant and extensively drug-resistant strains of Salmonella typhi added a sense of urgency to develop more effective typhoid vaccines, one of which is bacterial ghosts (BGs), prepared by both genetic and chemical means. The chemical method includes incubation with numerous agents for a short time at their minimum inhibitory or minimum growth concentrations. This study included the preparation of BGs by a sponge-like reduced protocol (SLRP). Materials and Methods: Critical concentrations of sodium dodecyl sulfate, NaOH, and H2O2 were used. Moreover, high-quality BGs were visualized by scanning electron microscope (SEM). Subculturing was used to confirm the absence of vital cells. Besides, the concentrations of the released DNA and protein were estimated spectrophotometrically. In addition, the integrity of cells was proved by visualizing Gram-stained cells using a light microscope. Furthermore, a comparison between the immunogenicity and safety of the prepared vaccine and the available whole-cell killed vaccine was established. Results: Improved preparation of high-quality BGs of S. typhi, visualized by SEM, revealed punctured cells with intact outer shells. Moreover, the absence of vital cells was confirmed by subculturing. At the same time, the release of respective amounts of proteins and DNA is another evidence of BGs' production. Additionally, the challenge test provided evidence that the prepared BGs are immunogenic and have the same efficacy as the whole cell vaccine. Conclusion: The SLRP provided a simple, economical, and feasible method for BGs preparation.
The pharmaceutical industry in Bangladesh produces a diverse range of antibiotics for human and animal use, however, waste disposal management is inadequate. This results in substantial quantities of antibiotics being discharged into water bodies, which provide suitable environment for the growth of antibiotic-resistant bacteria, capable of spreading resistance genes. This study intended for exploring the bacterial antibiotic resistance profile in adjoining aquatic environmental sources of pharmaceutical manufacturing facilities in Bangladesh. Seven surface water samples were collected from the vicinity of two pharmaceutical industries located in the Savar area and 51 Escherichia coli isolates were identified using both phenotypic and genotypic methods. Antibiotic susceptibility tests revealed the highest percentage of resistance against ampicillin, azithromycin, and nalidixic acid (100%) and the lowest resistance against meropenem (1.96%) out of sixteen different antibiotics tested. 100% of the study E. coli isolates were observed with Multidrug resistance phenotypes, with the Multiple Antibiotic Resistance (MAR) value ranging from 0.6-1.0. Furthermore, 69% of the isolates were Extended Spectrum Beta-Lactamases (ESBL) positive as per the Double Disk Diffusion Synergy Test (DDST). ESBL resistance genes blaTEM, blaCTX-M-13, blaCTX-M-15, and blaSHV were detected in 70.6% (n = 36), 60.8% (n = 32), 54.9% (n = 28), and 1.96% (n = 1) of the isolates, respectively, by Polymerase Chain Reaction (PCR). Additionally, 15.68% (n = 8) of the isolates were positive for E. coli specific virulence genes in PCR. These findings suggest that pharmaceutical wastewater, if not properly treated, could be a formidable source of antibiotic resistance spread in the surrounding aquatic environment. Therefore, continued surveillance for drug resistance among bacterial populations around drug manufacturing facilities in Bangladesh is necessary, along with proper waste disposal management.
Maryam Salah Ud Din;Umar Farooq Gohar;Hamid Mukhtar;Ibrar Khan;John Morris;Soisuda Pornpukdeewattana;Salvatore Massa
한국미생물·생명공학회지
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제51권4호
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pp.432-440
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2023
Irrational and injudicious use of antibiotics, easy availability of them as over-the-counter drugs in economically developing countries, and unavailability of regulatory policies governing antimicrobial use in agriculture, animals, and humans, has led to the development of multi-drug resistance (MDR) bacteria. The use of medicinal plants can be considered as an alternative, with a consequent impact on microbial resistance. We tested extracts of Piper longum fruits as new natural products as agents for reversing the resistance to antibiotics. Six crude extracts of P. longum fruits were utilized against a clinical isolate of multidrug-resistant Staphylococcus aureus.The antibiotic susceptibility testing disc method was used in the antibiotic resistance reversal analysis. Apart from cefoxitin and erythromycin, all other antibiotics used (lincosamides [clindamycin], quinolones [levofloxacin and ciprofloxacin], and aminoglycosides [amikacin and gentamicin]) were enhanced by P. longum extracts. The extracts that showed the greatest synergy with the antibiotics were EAPL (ethyl acetate [extract of] P. longum), n-BPL (n-butanol [extract of] P. longum), and MPL (methanolic [extract of] P. longum The results of this study suggest that P. longum extracts have the ability to increase the effectiveness of different classes of antibiotics and reverse their resistance. However, future studies are needed to elucidate the molecular mechanisms behind the synergy between antibiotic and phytocompound(s) and identify the active biomolecules of P. longum responsible for the synergy in S. aureus.
At the present study, it was aimed to explore the states of antimicrobial resistant Staphylococcus aureus isolates from 1,360 chickens, pigs and cattle carcass (400 chickens, 480 pigs and 480 cattle) in Daegu province from January 2022 to December 2022. Among 1,360 samples, 81 of S. aureus were isolated cattle (1.4%), pigs (7.7%) and chickens (9.2%). In antimicrobial susceptibility test, all of the isolates were demonstrated susceptibility to rifampin. But the isolates were showed resistance other antibiotics in order of tetracycline (62.9%), ciprofloxacin (62.9%), tobramycin (58.0%), gentamicin (51.8%), amikacin (40.7%), penicillin (39.5%), clindamycin (35.8%), enrofloxacin (33.3%), trimethoprim/sulfamethoxazole (30.8%), oxacillin (30.8%), minocycline (29.6%), erythromycin (25.9%), quinupristin/dalfopristin (20.9%), chloramphenicol (12.3%), cefoxitin (9.8%). Among the 81 S. aureus isolates, 25 (30.8%) methicillin-resistant staphylococcus aureus (MRSA) were observed. Seven (28.0%) of 25 MRSA harbored mecA gene. About 96% of MRSA were multidrug resistance to at least 3 more drugs. A continuous monitoring and surveillance program to prevent antimicrobial resistance in livestock products is demanded.
The environment has been identified as an origin, reservoir, and transmission route of antibiotic resistance genes (ARGs). Among diverse environments, freshwater environments have been recognized as pivotal in the transmission of ARGs between opportunistic pathogens and autochthonous bacteria such as Aeromonas spp. In this study, five environmental strains of Aeromonas spp. exhibiting multidrug resistance (MDR) were selected for whole-genome sequencing to ascertain their taxonomic assignment at the species-level and to delineate their ARG repertoires. Analyses of their genomes revealed the presence of one protein almost identical to AhQnr (A. hydrophila Qnr protein) and four novel proteins similar to AhQnr. To scrutinize the classification and taxonomic distribution of these proteins, all Aeromonas genomes deposited in the NCBI RefSeq genome database (1,222 genomes) were investigated. This revealed that these Aeromonas Qnr (AQnr) proteins are conserved intrinsic resistance determinants of the genus, exhibiting species-specific diversity. Additionally, structure prediction and analysis of contribution to quinolone resistance by AQnr proteins of the isolates, confirmed their functionality as quinolone resistance determinants. Given the origin of mobile qnr genes from aquatic bacteria and the crucial role of Aeromonas spp. in ARG dissemination in aquatic environments, a thorough understanding and strict surveillance of AQnr families prior to the clinical emergence are imperative. In this study, using comparative genome analyses and functional characterization of AQnr proteins in the genus Aeromonas, novel Aeromonas ARGs requiring surveillance has suggested.
Jose Roberto Aguirre-Sanchez;Nohemi Castro-del Campo;José Andres Medrano-Felix;Alex Omar Martínez-Torres;Cristobal Chaidez;Jordi Querol-Audi;Nohelia Castro-del Campo
Journal of Veterinary Science
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제25권4호
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pp.42.1-42.12
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2024
Importance: Bovine mastitis, predominantly associated with gram-positive Staphylococcus aureus, poses a significant threat to dairy cows, leading to a decline in milk quality and volume with substantial economic implications. Objective: This study investigated the incidence, virulence, and antibiotic resistance of S. aureus associated with mastitis in dairy cows. Methods: Fifty milk-productive cows underwent a subclinical mastitis diagnosis, and the S. aureus strains were isolated. Genomic DNA extraction, sequencing, and bioinformatic analysis were performed, supplemented by including 124 S. aureus genomes from cows with subclinical mastitis to enhance the overall analysis. Results: The results revealed a 42% prevalence of subclinical mastitis among the cows tested. Genomic analysis identified 26 sequence types (STs) for all isolates, with Mexican STs belonging primarily to CC1 and CC97. The analyzed genomes exhibited multidrug resistance to phenicol, fluoroquinolone, tetracycline, and cephalosporine, which are commonly used as the first line of treatment. Furthermore, a similar genomic virulence repertoire was observed across the genomes, encompassing the genes related to invasion, survival, pathogenesis, and iron uptake. In particular, the toxic shock syndrome toxin (tss-1) was found predominantly in the genomes isolated in this study, posing potential health risks, particularly in children. Conclusion and Relevance: These findings underscore the broad capacity for antibiotic resistance and pathogenicity by S. aureus, compromising the integrity of milk and dairy products. The study emphasizes the need to evaluate the effectiveness of antibiotics in combating S. aureus infections.
Shivanand Bomman;Munish Ashat;Navroop Nagra;Mahendran Jayaraj;Shruti Chandra;Richard A Kozarek;Andrew Ross;Rajesh Krishnamoorthi
Clinical Endoscopy
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제55권1호
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pp.33-40
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2022
Background/Aims: Multiple outbreaks of multidrug-resistant organisms have been reported worldwide due to contaminated duodenoscopes. In 2015, the United States Food and Drug Administration recommended the following supplemental enhanced surveillance and reprocessing techniques (ESRT) to improve duodenoscope disinfection: (1) microbiological culture, (2) ethylene oxide sterilization, (3) liquid chemical sterilant processing system, and (4) double high-level disinfection. A systematic review and meta-analysis was performed to assess the impact of ESRT on the contamination rates. Methods: A thorough and systematic search was performed across several databases and conference proceedings from inception until January 2021, and all studies reporting the effectiveness of various ESRTs were identified. The pooled contamination rates of post-ESRT duodenoscopes were estimated using the random effects model. Results: A total of seven studies using various ESRTs were incorporated in the analysis, which included a total of 9,084 post-ESRT duodenoscope cultures. The pooled contamination rate of the post-ESRT duodenoscope was 5% (95% confidence interval [CI]: 2.3%-10.8%, inconsistency index [I2]=97.97%). Pooled contamination rates for high-risk organisms were 0.8% (95% CI: 0.2%-2.7%, I2=94.96). Conclusions: While ESRT may improve the disinfection process, a post-ESRT contamination rate of 5% is not negligible. Ongoing efforts to mitigate the rate of contamination by improving disinfection techniques and innovations in duodenoscope design to improve safety are warranted.
Yoon-Jung Choi;Shukho Kim;Ram Hari Dahal;Jungmin Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제34권8호
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pp.1718-1726
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2024
Development of novel antibacterial agents is imperative due to the increasing threat of antibiotic-resistant pathogens. This study aimed to develop the enhanced antibacterial activity and in-vivo efficacy of a novel truncated endolysin, CHAPSAP26-161, derived from the endolysin LysSAP26, against multidrug-resistant bacteria. CHAPSAP26-161 exhibited higher protein purification efficiency in E. coli and antibacterial activity than LysSAP26. Moreover, CHAPSAP26-161 showed the higher lytic activity against A. baumannii with minimal bactericidal concentrations (MBCs) of 5-10 ㎍/ml, followed by Staphylococcus aureus with MBCs of 10-25 ㎍/ml. Interestingly, CHAPSAP26-161 could lyse anaerobic bacteria, such as Clostridioides difficile, with MBCs of 25-50 ㎍/ml. At pH 4-8 and temperatures of 4℃-45℃, CHAPSAP26-161 maintained antibacterial activity without remarkable difference. The lytic activity of CHAPSAP26-161 was increased with Zn2+. In vivo tests demonstrated the therapeutic effects of CHAPSAP26-161 in murine systemic A. baumannii infection model. In conclusion, CHAPSAP26-161, a truncated endolysin that retains only the CHAP domain from LysSAP26, demonstrated enhanced protein purification efficiency and antibacterial activity compared to LysSAP26. It further displayed broad-spectrum antibacterial effects against S. aureus, A. baumannii, and C. difficile. Our in vitro and in-vivo results of CHAPSAP26-161 highlights its promise as an innovative therapeutic option against those bacteria with multiple antibiotic resistance.
The Burkholderia cepacia complex (Bcc) consists of opportunistic pathogens known to cause pneumonia in immunocompromised individuals, especially those with cystic fibrosis. Treating Bcc pneumonia is challenging due to the pathogens' high multidrug resistance. Therefore, inhalation therapy with tobramycin powder, which can achieve high antibiotic concentrations in the lungs, is a promising treatment option. In this study, we investigated potential mechanisms that could compromise the effectiveness of tobramycin therapy. By selecting for B. cenocepacia survivors against tobramycin, we identified three spontaneous mutations that disrupt a gene encoding a key enzyme in the biosynthesis of cobalamin (Vitamin B12). This disruption may affect the production of succinyl-CoA by methylmalonyl-CoA mutase, which requires adenosylcobalamin as a cofactor. The depletion of cellular succinyl-CoA may impact the tricarboxylic acid (TCA) cycle, which becomes metabolically overloaded upon exposure to tobramycin. Consequently, the mutants exhibited significantly reduced reactive oxygen species (ROS) production. Both the wild-type and mutants showed tolerance to tobramycin and various other bactericidal antibiotics under microaerobic conditions. This suggests that compromised ROS-mediated killing, due to the impacted TCA cycle, underlies the mutants' tolerance to bactericidal antibiotics. The importance of ROS-mediated killing and the potential emergence of mutants that evade it through the depletion of cobalamin (Vitamin B12) provide valuable insights for developing strategies to enhance antibiotic treatments of Bcc pneumonia.
연구배경: 최근 다제내성 A. baumannii에 의한 폐렴이 중환자실 환자에서 매우 빈번하게 발생하고 있으며, 이탈 지연, 중환자실 재원기간 및 사망률의 증가가 초래되기도 한다. 수 년 전부터 colistin이 치료제로 다시 주목받고 있으나 병원획득폐렴에 대한 치료 경험은 많지 않으며, 분무치료의 효과에 대해서는 근거가 매우 부족하다. 이에 저자들은 한 대학병원 중환자실에서 발생한 다제내성 A. baumannii에 의한 병원획득폐렴에서 colistin 분무치료의 적용 가능성을 평가해보고자 하였다. 방법: 다제내성 A. baumannii에 의한 병원획득폐렴의 발생이 확인되어 colistin 분무치료를 시행한 환자 10명을 대상으로 후향적 분석을 시행하였다. 결과: Colistin 분무치료 기간은 평균 $12.7{\pm}2.4$일이었다. 10명의 대상환자 중 9명(90.0%)의 환자에서 효과적인 치료 반응을 나타내었다. 치료 종료 후 추적한 객담 배양 검사에서 다제내성 A. baumannii는 단 한 명도 분리되지 않았다. 1명의 환자에서 기관지연축이 발생하였으나 기관지확장제 치료 후 호전되었다. 결론: 다제내성 A. baumannii에 의한 병원획득폐렴에서 colistin 분무치료는 매우 효과적일 가능성이 있으며, 향후 전향적인 연구를 진행할 가치가 있을 것으로 판단된다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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