Jak-STAT pathway is required for embryogenesis, female gametogenesis, cytokine-mediated neuroprotection, diabetes, obesity, cancer, stem cell, and various tissues. The noncanonical role of Jak-STAT in mitochondria function was supported by the detection of STAT protein in mitochondria, however, several studies show that STAT protein is detected in the endoplasmic reticulum (ER), and not in mitochondria. STAT protein may alter mitochondria function without entering mitochondria, this involves regulation of fission and fusion proteins to change mitochondria morphology. However, how changes in mitochondria morphology lead to changes in mitochondria metabolism needs further investigation.
Recently, it was reported that the role of mitochondria-reactive oxygen species (ROS) generating pathway in cisplatin-induced apoptosis is remarkable. Since a variety of molecules are involved in the pathway, a comprehensive approach to delineate the biological interactions of the molecules is required. However, quantitative modeling of the mitochondria-ROS generating pathway based on experiment and systemic analysis using the model have not been attempted so far. Thus, we conducted experiments to measure the concentration changes of critical molecules associated with mitochondrial apoptosis in both human mesothelioma H2052 and their ${\rho}^0$ cells lacking mitochondrial DNA (mtDNA). Based on the experiments, a novel mathematical model that can represent the essential dynamics of the mitochondrial apoptotic pathway induced by cisplatin was developed. The kinetic parameter values of the mathematical model were estimated from the experimental data. Then, we have investigated the dynamical properties of this model and predicted the apoptosis levels for various concentrations of cisplatin beyond the range of experiments. From parametric perturbation analysis, we further found that apoptosis will reach its saturation level beyond a certain critical cisplatin concentration.
The efficacy of chemotherapeutic agents on tumor cells has been shown to be modulated by tumor suppressor gene p53 and its target genes such as Bcl-2 family members (Bax, Noxa, and PUMA). However, various chemotherapeutic agents can induce cell death in tumor cells that do not express the functional p53, suggesting that some chemotherapeutic agents may induce cell death in a p53-independent pathway. Here we showed that etoposide can induce the similar degree of cell death in p53-deficient HCT 116 cells, whereas 5'-FU-mediated cell death is strongly dependent on the existence of functional p53 in HCT 116 cells. Further, we provide the evidence that etoposide can induce the cytochrome c release from isolated mitochondria, and etoposide-induced cytochrome c release is not accompanied with the large amplitude swelling of mitochondria. These data suggest that etoposide can directly induce the mitochondrial dysfunction irrespective of p53 status, and it may, at least in part, account for the p53-independent pathway in cell death induced by chemotherapeutic agents.
The cancer chemo-preventive effects of equol have been demonstrated for a wide variety of experimental tumours. In a previous study, we found that equol inhibited proliferation and induced apoptotic death of human gastric cancer MGC-803 cells. However, the mechanisms underlying equol-mediated apoptosis have not been well understood. In the present study, the dual AO (acridine orange)/EB (ethidium bromide) fluorescent assay, the comet assay, MTS, western blotting and flow cytometric assays were performed to further investigate the pro-apoptotic effect of equol and its associated mechanisms in MGC-803 cells. The results demonstrated that equol induced an apoptotic nuclear morphology revealed by AO/EB staining, the presence of a comet tail, the cleavage of caspase-3 and PARP and the depletion of cIAP1, indicating its pro-apoptotic effect. In addition, equol-induced apoptosis involves the mitochondria-dependent cell-death pathway, evidenced by the depolarization of the mitochondrial membrane potential, the cleavage of caspase-9 and the depletion of Bcl-xL and full-length Bid. Moreover, treating MGC-803 cells with equol induced the sustained activation of extracellular signal-regulated kinase (ERK), and inhibiting ERK by U0126, a MEK/ERK pathway inhibitor, significantly attenuated the equol-induced cell apoptosis. These results suggest that equol induces mitochondria-dependent apoptosis in human gastric cancer MGC-803 cells via the sustained activation of the ERK1/2 pathway. Therefore, equol may be a novel candidate for the chemoprevention and therapy of gastric cancer.
Apoptosis (programmed cell death) is a cellular self-destruction mechanism that is essential for a variety of biological events, such as developmental sculpturing, tissue homeostasis, and the removal of unwanted cells. Mitochondria play a crucial role in regulating cell death. $Ca^{2+}$ has long been recognized as a participant in apoptotic pathways. Mitochondria are known to modulate and synchronize $Ca^{2+}$ signaling. Massive accumulation of $Ca^{2+}$ in the mitochondria leads to apoptosis. The $Ca^{2+}$ dynamics of ER and mitochondria appear to be modulated by the Bcl-2 family proteins, key factors involved in apoptosis. The number and morphology of mitochondria are precisely controlled through mitochondrial fusion and fission process by numerous mitochondria-shaping proteins. Mitochondrial fission accompanies apoptotic cell death and appears to be important for progression of the apoptotic pathway. Here, we highlight and discuss the role of mitochondrial calcium handling and mitochondrial fusion and fission machinery in apoptosis.
The present study was carried out to investigate the possibility that bispidinone derivative makes anticancer drug availability to human cervical carcinoma cell. The B8 has the lowest IC50 value among B8, B9 and B10 which are bispidinone analogue with bromide. According to cytotoxic test through WST-8 assay, B8 shows the most magnificent cytotoxicity effectiveness with 76 μM of IC50 value. In human cervical carcinoma cell treated with B8, it noticeably controlled cellular multiplication by increase of concentration and time. Furthermore, morphological changes like cellular shrink, disruption and nuclear condensation, feature of apoptosis, are observed. Annexin V-FITC/PI double staining assay test proved that B8 can cause apoptosis. Moreover, after treatment with 76 μM of B8, flow cytometry analysis shows that increase of active oxygen species are induced and membrane potential in mitochondria is decreased. Manifestation of Bcl-2 family and caspase cascades protein provides evidence that B8 induces apoptosis through mitochondria and caspase-related pathway. Taken together, we suggested that B8 reduced membrane potential in mitochondria and induce apoptosis through the pathway depended on mitochondria and caspase.
Ascidian embryos have become an important model for embryological studies, offering a simple example for mechanisms of cytoplasmic components segregation. It is a well-known example that the asymmetric segregation of mitochondria into muscle lineage cells occurs during ascidian embryogenesis. However, it is still unclear which signaling pathway is involved in this process. To obtain molecular markers for studying mechanisms involved in the asymmetric distribution of mitochondria, we have produced monoclonal antibodies, Mito-1, Mito-2 and Mito-3, that specifically recognize mitochondria-rich cytoplasm in cells of the ascidian Halocynthia roretzi embryos. These antibodies stained cytoplasm like reticular structure in epidermis cells, except for nuclei, at the early tailbud stage. Similar pattern was observed in vital staining of mitochondria with DiOC2, a fluorescent probe of mitochondria. Immunostaining with these antibodies showed that mitochondria are evenly distributed in the animal hemisphere blastomeres at cleavage stages, whereas not in the vegetal hemisphere blastomeres. Mitochondria were transferred to the presumptive muscle and nerve cord lineage cells of the marginal zone in the vegetal hemisphere more than to the presumptive mesenchyme, notochord and endoderm lineage of the central zone. Therefore, it is suggested that these antibodies will be useful markers for studying mechanisms involved in the polarized distribution of mitochondria during ascidian embryogenesis.
Background: To evaluate the effects of bufalin in A549 human lung adenocarcinoma epithelial cells in vitro and assess the underlying mechanisms. Materials and Methods: Human A549 non-small cell lung cancer (NSCLC) cells were treated with various concentrations of bufalin. Cell proliferation was measured by CCK-8 assay, apoptotic cell percentage was calculated by flow cytometry and morphological change was observed by inverted phase contrast microscopy/transmission electron microscopy. In addition, the membrane potential of mitochondria was detected by JC-1 fluorescence microscopy assay, and the related protein expression of cytochrome C and caspase-3 was analyzed by Western blotting. Results: Bufalin could inhibit the proliferation of A549 cells via induction of apoptosis, with the evidence of characteristic morphological changes in the nucleus and mitochondria. Furthermore, bufalin decreased the mitochondrial membrane potential with up-regulation of cytochrome C in the cytosol, and activation of caspase-3. Conclusions: Bufalin inhibits the proliferation of A549 cells and triggers mitochondria-dependent apoptosis, pointing to therapeutic application for NSCLC.
Apoptotic cell death is an active process mediated by various signaling pathways, which include the caspase cascade and the stress-activated protein kinase pathways. The caspase cascade is activated by two distinct routes: one from cell surface and the other from mitochondria. Activation of the route from cell surface requires the cellular components that include membrane receptors, adaptor proteins such as TRADD and FADD, and caspase-8, while activation of the other from mitochondria requires Apaf-1, caspase-9, and cytosolic cytochrome c. On the other hand, persistent stimulation of the stress-activated protein kinase pathway is also shown to mediate apoptosis in many cell types. Gene-targeting studies with jnk- or jip-null mice, in particular, strongly suggest that this signaling pathway plays a pivotal role in the cellular machinery for apoptosis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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