면역 보체가 결합되어 있는 zymosan에 의하여 활성화된 다형핵 백혈구에서 세포 투과성 물질인 N-ethylmaleiamide과 $Hg^{++}$은 superoxide 라디칼 생성, NADPH oxidase 활성도 및 lysosomal enzyme (lactic dehydrogenase, ${\beta}-glucuronidase$)의 유리를 억제하였다. 세포막 단백에 특이적인 p-chloromercuribenzoic acid와 p-chloromercuribenzenesulfonic acid는 superoxide 라디칼 생성에 영향을 주지 않았으나 NADPH oxidase 활성도와 lysosomal enzyme의 유리를 억제하였다. 식작용 중에 세포막과 세포내의 sulfhydryl기는 반응시간에 따라 점진적으로 감소하였다. N-ethylmaleiamide와 $Hg^{++}$은 세포막과 세포내의 sulfhydryl기를 모두 감소시켰다. P-Chloromercuribenzoic acid와 p-chloromercuribenzenesulfonic acid는 세포막의 sulfhydryl기를 유의하게 감소시켰으나 세포내 용해성 sulfhydryl기에는 영향을 주지않았다. Cysteine과 mercaptopropionylglycine는 superoxide 라디칼의 생성과 lysosomal enzyme의 유리를 억제하였다. Gluthathione은 superoxide생성에 영향을 주지 않았으나 뚜렷하게 lactic dehydrogenase의 유리를 억제하였다. N-ethylmaleiamide에 의한 superoxide 생성의 억제는 cysteine과 mercaptopropionyl-glycine에 의하여 반전되었으나 gluthathione의 영향은 없었다. N-ethylamleiamide에 의한 NADPH oxidase의 비활성화는 gluthathione, cysteine과 mercaptopropionylglycine에 의하여 저해되었다. Carbachol에 의하여 항진된 superoxide 라디칼 생성은 N-ethylamleiamide에 의하여 완전히 억제되었고, atropine에 의하여 길항되었다. 그러므로, 외부 자극에 대한 다형핵 백혈구 반응의 표현은 sulfhydryl기의 양의 변화와 연관이 있을 것으로 시사되었다. Lysosomal enzyme 유리는 세포막과 세포내의 sulfhydryl기에 의하여, 이에 반하여 superoxide생성은 세포내 sulfhydryl기에 의해서 영향받을 것으로 추정되었다.
Journal of mucopolysaccharidosis and rare diseases
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제4권1호
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pp.1-6
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2018
Lysosomal storage disorders are a group of rare inherited metabolic disorders with protean manifestations and variable severity ranging from attenuated forms to severe ones. It is necessary to diagnose and manage these disorders timely before irreversible damage occurs. Prior to the era of enzyme replacement therapy and newer therapeutics, only treatment option available was palliative care. Over the past two decades, extensive research in the lysosomal storage disorders has led to substantial expansion of our understanding about them. This mini review focusses on the spectrum, challenges faced in the diagnosis and therapy and remedial actions taken so far in lysosomal storage disorders in resource constrained country like India.
Journal of mucopolysaccharidosis and rare diseases
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제3권1호
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pp.14-19
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2017
Lysosomal storage diseases (LSDs) are a group of rare inherited metabolic disorders caused by the deficiency of specific lysosomal enzymes and subsequent accumulation of substrates. Enzyme deficiency leads to progressive intra-lysosomal accumulation of the incompletely degraded substances, which cause dysfunction and destruction of the cell and eventually multiple organ damage. Patients have a broad spectrum of clinical phenotypes which are generally not specific for some LSDs, leading to missed or delayed diagnosis. Due to the availability of treatment including enzyme replacement therapy (ERT) and hematopoietic stem cell transplantation for some LSDs, early diagnosis is important. ERT products have been approved with optimal outcomes for some LSDs in the recent decades, including Gaucher, Fabry, mucopolysaccharidosis (MPS) I, Pompe, MPS VI, MPS II, and MPS IVA diseases. ERT can stabilize the clinical condition, prevent disease progression, and improve the long-term outcome of these diseases, especially if started prior to irreversible organ damage. Based on the availability of therapy and suitable screening methods in the recent years, some LSDs, including Pompe, Fabry, Gaucher, MPS I, MPS II, and MPS VI diseases have been incorporated into nationwide newborn screening panels in Taiwan.
Ethanolic extract (50% v/v) and alkaloid fraction of Tylophora indica leaves were examined for lysosomal enzyme inhibitory activity in adjuvant-induced arthritic rats. The alkaloid fraction showed statistically significant inhibition of arthritic lesions (p < 0.05) from day 18, (p < 0.025) from day 20 and (p < 0.001) from day 21 onwards in the adjuvant-induced arthritis, which was comparable to the response of standard drug Indomethacin. The ethanolic extract was less significant than the alkaloidal fraction in inhibition of arthritis. Alkaloid fraction showed significant (p < 0.001) inhibitory effect on the lysosomal enzyme activities in adjuvantinduced arthritic rats. It also significantly prevented decrease in collagen levels and synovial damage observed during arthritis and also inhibited increase in urinary excretion levels of collagen degradation products like hydroxyproline, hexosamine, hexuronic acid, etc. Both ethanolic extract as well as the alkaloid fraction, however, did not show any significant activity in normal nonarthritic rats. The ethanolic extract and the alkaloid fraction may thus be able to inhibit the progress of inflammation and inhibit the destructive activity of lysosomal enzymes on structural macromolecules like collagen etc. in the synovial capsule in joints during arthritic states. They may thus prevent synovial damage observed during arthritis.
Lysosomal storage diseases (LSDs) are a group of inherent diseases characterized by massive accumulation of undigested compounds in lysosomes, which is caused by genetic defects resulting in the deficiency of a lysosomal hydrolase. Currently, enzyme replacement therapy has been successfully used for treatment of 7 LSDs with 10 approved therapeutic enzymes whereas new approaches such as pharmacological chaperones and gene therapy still await evaluation in clinical trials. While therapeutic enzymes for Gaucher disease have N-glycans with terminal mannose residues for targeting to macrophages, the others require N-glycans containing mannose-6-phosphates that are recognized by mannose-6-phosphate receptors on the plasma membrane for cellular uptake and targeting to lysosomes. Due to the fact that efficient lysosomal delivery of therapeutic enzymes is essential for the clearance of accumulated compounds, the suitable glycan structure and its high content are key factors for efficient therapeutic efficacy. Therefore, glycan remodeling strategies to improve lysosomal targeting and tissue distribution have been highlighted. This review describes the glycan structures that are important for lysosomal targeting and provides information on recent glyco-engineering technologies for the development of therapeutic enzymes with improved efficacy. [BMB Reports 2015; 48(8): 438-444]
돼지 백혈구(白血球) Iysoromal enzyme의 latency를 서로 다른 농도의 sucrose용액(0.0125-0.25M)으로서 조사하고 각(各) sedimentation fraction에 분포되어 있는 효소들의 specific activity, pH optima 및 activation energy를 측정하였다.
Journal of mucopolysaccharidosis and rare diseases
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제2권1호
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pp.17-18
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2016
Enzyme replacement therapy (ERT) is a well-established means of treating lysosomal storage disease (LSD). However, classical IV infusion based ERT method produces less than ideal results, especially, CNS defects and quality of life in patients. To improve these main problems of parental IV formulation for LSDs, we investigate modified ERT method and evaluated the efficacy in animal model.
Lysosomal enzymes might play a most important role in the pathogenesis od diabetic microangiopathy. Some glycosidases, which participate in the catabolism of glycoprotein, are significantly decreased in diabetic mice. In search of new potential lysosomal enzyme inducers, we examined the effects of crude red-ginseng saponin fraction on N-acetyl-$\beta$-D-glucosaminidase, $\beta$-D-galactosidase and $\alpha$-D-mannosidase activities in the liver and kidney of normal and streptozotocin induced diabetic mice. It was found that i.p. administration of ginseng saponin produced the induction of lysosomal enzymes in the kidney more intensively than in the liver. The obtained results suggest the possibility that ginseng saponin might prevent the diabetic microangiopathy.
An enzyme that hydrolyzes flavin-adenine dinucleotide (FAD) was found to be present in rat liver lysosomal membrane prepared from Triton WR-1339 filled lysosomes (tritosomes) purified by flotation on sucrose. This FAD phosphohydrolase (FADase) exhibited optimal activity at pH 8.5 and had an apparent Km of approximately 3.3 mM. The activity was decreased 50~70% by dialysis against EDTA and this was restored by $Zn^{2+}$, $Mg^{+2}$, $Hg^{+2}$, and $Ca^{+2}$ ions inhibited the enzyme, but $F^-$ and molybdate had no effect. The enzyme was also inhibited by p-chloromercuribenzoate (pCMB), reduced glutathione and other thiols, cyanide, and ascorbate. The presence of ATP, ADP, AMP. ${\alpha}-{\beta}-methylene$ ATP, AMP-p-nitrophenyl phosphate (PNP), GMP, and coenzyme A (CoA) decreased the activity on FAD, but pyrimidine nucleotides, adenosine, adenine, or $NAD^+$ were without effect. Phosphate stimulated the activity slightly. FAD phosphohydrolase activity was separated from ATPase and inorganic pyrophosphatase activities by solubilization with detergents and polyacrylamide gel electrophoresis and by linear sucrose density gradient centrifugation suggesting that the enzyme is different from ATPase, inorganic pyrophosphatase, and soluble lysosomal FAD pyrophosphatase. Paper chromatography showed that FAD was hydrolyzed to flavin mononucleotide (FMN) and AMP which were further hydrolyzed to riboflavin and AMP by phosphatases known to be present in lysosomal membranes. Incubation of the intact Iysosomes with pronase showed that the active site of FAD phosphohydrolase must be oriented to the cytosol. The FAD hydrolyzing activity was detected in Golgi, microsome, and plasma membrane, but not in mitochondria or soluble lysosomal preparations.
Enzyme replacement therapy for lysosomal storage diseases usually requires recombinant enzymes containing mannose-6-phosphate (M6P) glycans for cellular uptake and lysosomal targeting. For the first time, a strategy is established here for the in vitro mannosyl-phosphorylation of high-mannose type N-glycans that utilizes a recombinant Mnn14 protein derived from Saccharomyces cerevisiae. Among a series of N-terminal- or C-terminal-deleted recombinant Mnn14 proteins expressed in Pichia pastoris, rMnn1477-935 with deletion of N-terminal 76 amino acids spanning the transmembrane domain (46 amino acids) and part of the stem region (30 amino acids), showed the highest level of mannosyl-phosphorylation activity. The optimum reaction conditions for rMnn1477-935 were determined through enzyme assays with a high-mannose type N-glycan (Man8GlcNAc2) as a substrate. In addition, rMnn1477-935 was shown to mannosyl-phosphorylate high-mannose type N-glycans (Man7-9GlcNAc2) on recombinant human lysosomal alpha-glucosidase (rhGAA) with remarkably high efficiency. Moreover, the majority of the resulting mannosyl-phosphorylated glycans were bis-form which can be converted to bis-phosphorylated M6P glycans having a superior lysosomal targeting capability. An in vitro N-glycan mannosyl-phosphorylation reaction using rMnn1477-935 will provide a flexible and straightforward method to increase the M6P glycan content for the generation of "Biobetter" therapeutic enzymes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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