The interactions between the host and microbial pathogen largely dictate the onset, progression, and outcome of infectious diseases. Pathogens subvert host components to promote their pathogenesis and, among these, cell surface heparan sulfate proteoglycans are exploited by many pathogens for their initial attachment and subsequent cellular entry. The ability to interact with heparan sulfate proteoglycans is widespread among viruses, bacteria, and parasites. Certain pathogens also use heparan sulfate proteoglycans to evade host defense mechanisms. These findings suggest that heparan sulfate proteoglycans are critical in microbial pathogenesis, and that heparan sulfate proteoglycan-pathogen interactions are potential targets for novel prophylactic and therapeutic approaches.
Iozzo, Renato V.;Zoeller, Jason J.;Nystrom, Alexander
Molecules and Cells
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제27권5호
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pp.503-513
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2009
Proteoglycans located in basement membranes, the nanostructures underling epithelial and endothelial layers, are unique in several respects. They are usually large, elongated molecules with a collage of domains that share structural and functional homology with numerous extracellular matrix proteins, growth factors and surface receptors. They mainly carry heparan sulfate side chains and these contribute not only to storing and preserving the biological activity of various heparan sulfate-binding cytokines and growth factors, but also in presenting them in a more "active configuration" to their cognate receptors. Abnormal expression or deregulated function of these proteoglycans affect cancer and angiogenesis, and are critical for the evolution of the tumor microenvironment. This review will focus on the functional roles of the major heparan sulfate proteoglycans from basement membrane zones: perlecan, agrin and collagen XVIII, and on their roles in modulating cancer growth and angiogenesis.
The syndecan family of heparan sulfate proteoglycans is expressed on the surface of all adherent cells. Syndecans interact with a wide variety of molecules, including growth factors, cytokines, proteinases, adhesion receptors and extracellular matrix components, through their heparan sulfate chains. Recent studies indicate that these interactions not only regulate key events in development and homeostasis, but also key mechanisms of the host inflammatory response. This review will focus on the molecular and cellular aspects of how syndecans modulate tissue injury and inflammation, and how syndecans affect the outcome of inflammatory diseases in vivo.
Leukocyte common antigen-related protein tyrosine phosphatases (LAR-RPTPs) are cellular receptors of heparan sulfate (HS) and chondroitin sulfate (CS) proteoglycans that regulate neurite outgrowth and neuronal regeneration. LAR-RPTPs have also received particular attention as the major presynaptic hubs for synapse organization through selective binding to numerous postsynaptic adhesion partners. Recent structural studies on LAR-RPTP-mediated trans-synaptic adhesion complexes have provided significant insight into the molecular basis of their specific interactions, the key codes for their selective binding, as well as the higher-order clustering of LAR-RPTPs necessary for synaptogenic activity. In this review, we summarize the structures of LAR-RPTPs in complex with various postsynaptic adhesion partners and discuss the molecular mechanisms underlying LAR-RPTP-mediated synaptogenesis.
A simple method for studying the lectin-like interactions between Helicobacter pylori and cultured human epithelial cell lines was developed using an enzyme-linked, biotin-streptavidin bacterial-adhesion assay. The present study suggests that this method is suitable for evaluating the participation of lectin interactions in the adhesion of H. pylori to cultured HeLa S3 and Kato III cells, both fixed and glycosidase-treated cells, as well as assessing glycoconjugated binding inhibition studies. The time-course and dose-dependent kinetics of the biotin-labeled H. pylori adhesion th the formaldehyde-fixed Hela S3 and Kato III cell lines exhibited saturation. In addition, the binding of the biotin-labeled H. pylori to the formaldehyde-fixed cultured cells was partially blocked by pre-incubation with glycoconjugates and polyclonal antibodies against a heparan sulfate binding protein from H. pylori.
The syndecan family consists of four transmembrane heparan sulfate proteoglycans present in most cell types and each syndecan shares a common structure containing a heparan sulfate modified extracellular domain, a single transmembrane domain and a C-terminal cytoplasmic domain. To get a better understanding of the mechanism and function of syndecan-4 which is one of the syndecan family, it is crucial to investigate its three-dimensional structure. Unfortunately, it is difficult to prepare the peptide because it is membrane-bound protein that transverses the lipid bilayer of the cell membrane. Here, we optimize the expression, purification, and characterization of transmembrane, cytoplasmic and short extracellular domains of syndecan4 (syndecan-4 eTC). Syndecan-4 eTC was successfully obtained with high purity and yield from the M9 medium. The structural information of syndecan-4 eTC was investigated by MALDI-TOF mass (MS) spectrometry, circular dichroism (CD) spectroscopy, and nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy. It was confirmed that syndecan-4 eTC had an ${\alpha}$-helical multimeric structure like transmembrane domain of syndecan-4 (syndecan-4 TM) in membrane environments.
Journal of the Korean Association of Oral and Maxillofacial Surgeons
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제30권4호
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pp.271-281
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2004
Adenoid cystic carcinoma is malignant tumor in salivary gland, and its behavior is very invasive. Of all malignant tumor adenoid cystic carcinoma is occured in frequency of 4.4% in major salivary gland, and 1.29% in minor salivary gland. Histopathologically, adenoid cystic carcinoma is characterized by a cribriform appearance, and tubular form and solid nest type tumor can be seen. The tumor cell structure composed of modified myoepithelial cell, and basaloid cell. Extracellular matrix of this tumor cell contains variable ground substance with basement membrane component. Basement membrane matrix composed of collagen fibers, glycoproteins, proteoglycans, and its function is well known that it participate in differentiation, proliferation, and growth of tumor cell. Basement membrane molecule is essential for invasion of peripheral nerve, blood vessel, skeletal muscle in tumor cell of adenoid cystic carcinoma. In many studies, the tumor cell of adenoid cystic carcinoma containing modified myoepithelial cell participate in synthesis of proteoglycan. In this study, tissue sample of adenoid cystic carcinoma of human salivary gland were obtained from 15 surgical specimen, and all specimen were routinely fixed in 10% formalin and embedded. Serial $4-{\mu}m$ thick sections were cut from paraffin blocks. the histopathologic evaluation was done with light microscopy. And, the immunohistochemical staining, characteristics of glycosaminoglycan were observed. For biochemical analysis of glycosaminoglycan, isolation of crude glycosaminoglycan from tumor tissue and Western bolt analysis were carried out. With transmission electomicroscopy, tumor cell were observed. Biologic behavior of adenoid cystic carcinoma was observed with distribution and expression of basement membrane of glycosaminoglycan in tumor cells, The results obtained were as follows: 1. In immunohistochemical study, chondroitin sulfate is postively stained in tumor cell and interstitial space, dermatan sulfate is weakly stained in ductal cell. But keratan sulfate is negatively stained. 2. In immunohistochemical study, heparan sulfate is strong positive stained in tumor cell and basement membrane, especially in invasion area to peripheral nerve tissue. 3. In transmission electromicroscpic view, the tumor cells are composed modifed myoepithelial cells, and contains many microvilli and rough endoplasmic reticulum. 4. In Western blot analysis, the expression of glycosaminoglycan is expressed mostly in heparan sulfate. From the results obtained in this study, tumor cell of adenoid cystic carcinoma is composed modified myoepithelial cell, and glycosaminoglycan of basement membrane molecule of heparan sulfate and chondroitin sulfate mostly participate in the development and invasiveness of adenoid cystic carcinoma by immunohistochemical study and western blot analysis.
Glypican-3 (GPC3) is a member of the glypican family, which encodes cell-surface heparan-sulfate proteoglycans, and is frequently upregulated in hepatocellular carcinoma (HCC). We have recently reported that blocking endogenous GPC3 expression promotes the growth of HCC cell lines, suggesting that GPC3 plays a negative role in HCC cell proliferation. Here, we report that forced expression of GPC3 reduced the growth of HCC cells. We also found that FGF2-mediated cell proliferation was inhibited by GPC3. In addition, we observed that the adhesion of HCC cells to collagen type I and fibronectin was decreased by GPC3, whereas cellular migration and invasiveness were stimulated. Collectively, these results suggest that progression of hepatocellular carcinoma is associated with upregulation of GPC3.
한국자기공명학회 2002년도 International Symposium on Magnetic Resonance
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pp.90-90
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2002
Syndecans, transmembrane heparan sulfate proteoglycans, are coreceptors with integrin in cell adhesion process. It forms a ternary signaling complex with protein kinase C and phosphatidylinositol 4,5 bisphosphate (PIP2) for integrin signaling. NMR data indicates that cytoplasmic domain of syndecan-4 (4L) undergoes a conformational transition in the presence of PIP2, forming oligomeric conformation. The structure based on NMR data demonstrated that syndecan-4L itself forms a compact intertwined symmetric dimer with an unusual clamp shape for residues Leu$^{186}$ -Ala$^{195}$ . The molecular surface of the syndecan-4L dimer is highly positively charged. In addition, no inter-subunit NOEs in membrane proximal amino acid resides (Cl region) has been observed, demonstrating that the Cl region is mostly unstructured in syndecan-4L dimmer. However, the complex structure in the presence of PIP2 induced a high order multimeric conformation in solution. In addition, phosphorylation of cytoplasmic domain induces conformational change of syndecan-4, resulting inhibition of PKC signaling. The NMR structural data strongly suggest that PIP2 promotes oligomerization of syndecan-4 cytoplasmic domain for PKC activation and further induces structural reorganization of syndecan for mediating signaling network in cell adhesion procedure.
Background: Extracellular sulfatases (Sulfs), sulfatase 1 (Sulf1) and sulfatase 2 (Sulf2), play a pivotal role in cell signaling by remodeling the 6-O-sulfation of heparan sulfate proteoglycans on the cell surface. The present study examined the effects of Sulfs on angiotensin II (Ang II)-induced hypertensive mediator expression and vascular smooth muscle cells (VSMCs) proliferation in spontaneously hypertensive rats (SHR). Methods: Ang II receptors, 12-lipoxygenase (12-LO), and endothelin-1 (ET-1) messenger RNA (mRNA) expressions in SHR VSMCs were analyzed by real-time polymerase chain reaction and Western blotting. VSMCs proliferation was determined by [$^3H$]-thymidine incorporation. Results: Basal Sulfs mRNAs expression and enzyme activity were elevated in SHR VSMCs. However, Sulfs had no effect on the basal or Ang II-induced 12-LO and ET-1 mRNA expression in SHR VSMCs. The inhibition of Ang II-induced 12-LO and ET-1 expression by blockade of the Ang II type 2 receptor ($AT_2\;R$) pathway was not observed in Sulf1 siRNA-transfected SHR VSMCs. However, Sulf2 did not affect the action of $AT_2\;R$ inhibitor on Ang II-induced 12-LO and ET-1 expression in SHR VSMCs. The down-regulation of Sulf1 induced a reduction of $AT_2\;R$ mRNA expression in SHR VSMCs. In addition, the inhibition of Ang II-induced VSMCs proliferation by blockade of the $AT_2\;R$ pathway was mediated by Sulf1 in SHR VSMCs. Conclusion: These findings suggest that extracellular sulfatase Sulf1 plays a modulatory role in the $AT_2\;R$ pathway that leads to an Ang II-induced hypertensive effects in SHR VSMCs.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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