Immature nocytes and in VitrO matured Oocytes collected from the slaughtered Korean cattle were frozen slowly with 10% ethylene glycol+5% polyvinyl pyrolidine+0.05M trehalose (l0EPT), 10% ethylene glycol+5% ficoll+0.05M sucrose (1OEFS), or 10% ethylene glycol+5% ficoll+0.05M trehalose (l0EFT) by cell freezer (experiment 1). And also,They were ultra-rapidly frozen with 30% ethylene glycol+10% polyvinyl pyrolidine+0.5M trehalose (3OEPT) or 30% ethylene glycol+18% ficoll+0.5M sucrose (3OEFS) using electron microscope grid (experiment 2). In experiment 1, the cleavage rate was 23.0% when immature oocytes were frozen slowly using various cryoprotectants descrihed above, and 5.1% of cleaved oocytes developed to over morula stage after in Vitro fertilization (IVF). There were no significant differences among these groups. When matured oocytes were frozen slowly, the total cleavage rate was 19.7%, and over morula stage was 3.2%. lOEPT (4.8%) and EFS (4.4%) were slightly more effective than l0EFT (0.0%) for development in vitro. Only in l0EFT treated group, immature oocytes have higher developmental capacity than matured ones, when they were frozen slowly and IVF after thawing. In experiment 2, oocytes were ultra-rapidly frozen using the electron microscope grid with two kind of cryoprotectants described above. In immature oocyte group, the cleavage rate was 13.9% and 5.8% of cleaved oocytes developed to over morula stage after IVF, and in matured group, 25.7 and 7.6%, respectively. There were no significant differences between two kind of cryoprotectants, but in ultra-rapid freezing using electron microscope grid, the efficiency is slightly higher in matured oocyte group.
Kim, Sung Woo;Lee, Jinwook;Kim, Kwan-woo;Kim, Chan-Lan;Jeon, Ik Soo;Lee, Sung-soo
Journal of Embryo Transfer
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v.32
no.3
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pp.235-241
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2017
To preserve genetic materials, cryopreservation of the semen from live animals is the main technique to establish cryo-banking system which could be used for artificial insemination and embryo transfer. However, the population of Korean black goat (KBG) becomes to dwindle in number and is now faced genetic erosion by crossbreeding with non-native breeds in small KBG farms. In this study, simple freezing method was used to preserve frozen semen from KBG using spermatozoa of cauda epididymis (CE) and electro-stimulated semen (ES). The negative effects of seminal plasma on fresh sperm was confirmed using precipitation test of Triladyl egg yolk diluent and sperm viability after thawing was compared between CE and ES spermatozoa. When seminal plasma of fresh ES semen was washed with semen washing media (SWM), the rates of live sperm shown no significant difference between CE and ES spermatozoa before freezing. However, the survival rate of frozen/thawed CE sperm was higher than ES ($74.6{\pm}10.6%$ vs $53.8{\pm}5.2%$) with significant difference (p < 0.05). The results of longevity test on frozen/thawed sperm from CE showed healthier sperm than ES. Therefore, spermatozoa from CE could be used for cryo-banking system in KBG lines. The more studies are needed to increase survival rate of ES semen.
The beneficial effect of glycerol as a cryoprotectant, especially for sperm cryopreservation, has been shown in many studies. However, glycerol is toxic to living cells, and boar sperm in particular show greater sensitivity to glycerol than sperm from other domestic animals. Amides have been studied as alternative cryoprotectants for freezing stallion sperm. Sperm frozen in methylformamide or dimethylformamide as cryoprotectants show similar motility when thawed compared with sperm frozen in glycerol. We evaluated the cryoprotective effects of dimethylformamide on boar sperm freezing. To test the effect of amides, the concentration of boar semen was adjusted to $10^9sperm/mL$, and seminal plasma was removed using Hulsen solution. After centrifugation, the pellet was diluted in modified-Modena B extender. Lactose-egg yolk (LEY) extender was used as the cooling extender. The freezing extender was madeed aaddition of the optimal amount of glycerol and amides to LEY-Glycerol-Orvus ES Paste extender, and this extender was used for the second dilution. Diluted sperm were frozen in liquid nitrogen using the 0.5 mL straw method. Sperm frozen in extender with glycerol as a cderol were compared with those frozen in extender including the different amides. Sperm were tested for motility, viability, the sperm chromatin structure assay, and normal apical ridge after thawing. The percent of motile sperm diluted in glycerol was as high as that in the stallion study (61%). Dimethylformamide showed positive effects on sperm quality and was better than glycerol. Methylformamide provided similar sperm quality as glycerol. Therefore, dimethylformamide is useful for reducing cryoinjury in boar sperm and is expected to be useful as an alternative cryoprotectant.
Most captive canids and felids at Zoos in advanced countries have been examined enough to apply artificial reproductive techniques to them. We investigated reproductive hormones and vaginal epithelial cells of a 6-year-old, female coyote, hoping these data could eventually be extended to artificial insemination with frozen-thawed conspecific semen at Seoul Zoo. As a relative of pet dogs, coyote exhibited a similar appearance with only minor differences. In vaginal smear, an increase in the number of superficial cells suggests that the bitch has reached a state close to estrus. A sudden decrease of estradiol and increase of progesterone is considered as a preovulatory event. Vaginal epithelial cells and hormones might be useful for determining the optimal time of artificial insemination in coyotes' breeding.
Hydrogel chambers made from polymerized 2-hydroxyethyl methacrylate were used for in chamber fertilization. To determine whether sperm motility was preserved in the Hydrogel chamber, chambers which have rabbit sperm or frozen-thawed bovine sperm were transplanted inside of mouse peritoneal cavity and sperm were observed after recovering the chambers in the due time. As a result, it was determined that preservation of sperm motility was good. To determine whether in chamber fertilization was possible, chambers which have rabbit oocytes and sperm were transplanted inside of mouse peritoneal cavity and eggs were observed after recovering the chambers at 84 hr of preservation. As a result, the fact that fertilization and culture was occurred inside of the chamber was determined.
To establish a protocol of estrus induction and synchronization in European mouflon, we performed artificial insemination using frozen-thawed semen and exogenous hormones. CIDR was inserted into vaginas of four mouflons for 16 days. A day before removal of CIDR, PG 600 was injected intramuscularly. $PGF_2{\alpha}$ was injected when removing CIDR. Artificial insemination was cervically conducted with injecting LHRH 48 hours after CIDR withdrawal. Even though no pregnancy was confirmed, estrous signs were notified like open cervix, congestion of vaginal wall and discharge of cervical mucus. Further research in the wild sheep would be needed for development of artificial breeding methods and advancing sustainability of domestic zoos.
In previous studies, we reported that sow which was transferred OPS-freezing embryos not able to deliver a piglet (Kim et al, 2004). This study was conducted to investigate a possibility of gilt as recipients which produce piglets after transfer of OPS-freezing embryos. All transferred embryos were prepared by in vitro production (IVP) system. In vitro culture (IVC) medium used glucose-free NCSU23 supplemented with 5mM sodium pyruvate, 0.5 mM sodium lactate and 4 mg/ml bovine serum albumin for 2 days at $39^{\circ}C$. From day 3 of IVC, 10% fetal bovine serum albumin was added to the culture medium. In preparing of freezing embryos, embryos were treated with 7.5 $\mu g/ml$ cytochalasin-B for 30 min and centrifuged at $13,000{\times}g$ for 13 min. And then, embryos were exposed sequentially to an ethylene glycol (EG) solution, aspirated into open pulled straw (OPS), and plunged or thawed into the liquid nitrogen. In embryo transfer (ET), we used two kinds of type (surgical method vs. non-surgical method). In surgical method of embryo transfer, $55\sim65$ embryo were transferred in both uterine horn of two recipient gilts by plastic straw. Non-surgical method which is like artificial insemination was performed on three gilts. Each 140 frozen embryos were transferred to two gilts and 40 fresh embryos to one gilt. Pregnancy establishment was shown one recipient at 45 days after ET. However, the one recipient was also aborted at 58 days after ET. These results suggest that gilts can be considered as a candidate of recipients for OPS-freezing embryo transfer.
Proceedings of the Korean Society of Embryo Transfer Conference
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2002.11a
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pp.104-104
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2002
This study was performed to find out the optimal larval stage among trochophore, D-shaped and umbo stage larvae and the desirable protective additive such as fructose, glucose, sucrose and trehalose with cryoprotectant for cryopreservation of surf clam, Spisula sachalinensis larvae. Dimethyl sulfoxide and ethylene glycol were used as cryoprotectant and each cryoprotectant was made to 2.0 M with previous protective additives. The larvae were immersed in the preparations waited for 15 minutes to reach equilibration, and then frozen in a program freezer (-35$^{\circ}C$) and liquid nitrogen (-196$^{\circ}C$). The freezing rate of 1.0$^{\circ}C$ /min. was used for cryopreservation of trochophores before seeding temperature (-12$^{\circ}C$). The survival rate of frozen-thawed larvae increased as larval developing and that of umbo stage larvae was the highest as 96.1 ${\pm}$ 1.0%. The presence of lower concentration of disaccharides as sucrose or trehalose significantly enhanced survival rate when mixed with cryoprotectants (P<0.05). The results of our study indicate that desirable developmental stages of larvae and protective additive for cryopreservation are the umbo stage larvae and 0.2 M sucrose, respectively.
In order to improve the cryopreservatory techniques of livestock embryos, the quick freezing method which is directly plunged in liquid nitrogen via prefreezing procedure without freezing machine was carried out for mouse embryos treated with permeable and nonpermeable cryoprotectants. The viability of frozen-thawed embryos were evaluated by FDA vital dye test. The results obtained was summaried as follows: 1. A total of 720 embryos were recovered from frozen embryos for viability test. Evalution of the fluorescein diacetate(FDA) vital dye test with mice embryos were resulted of 2.3 total mean score - evaluted in orderly higher mean grade of P3 453 (63%), P2 133(18%), P1 51(7%) and P0 83(12%). 2. An all-round evalution of these combination, the highest viability was showed in 3M ethylene glycol + 0. 25M trehalose treated with the copper prefreezing. 3. Effects of permeable and nonpermeable cryoprotectants combination were evaluated by means FDA score. 3M ethylene glycol + 0.25M trehalose showed the highest survival rates of 2.8 mean FDA score. 4. Effects of permeable cryoprotectants were evaluated by mean FDA score but the results were not significantly different each other. 5. In evalution of the nonpermeable cryoprotectants, 0. 25M trehalose obtalned higher mean FDA score than of 0.25M sucrose and it was significantly different(P<0.05). 6. There was no significantly difference between copper and stainless-steel in prefreezing procedures.
본 연구는 개 채취 정액의 동결후의 생존성과 신선 및 동결 정자의 capacitation, acrosome reaction과 생존성을 조사하고, 아울러 신선 및 동결 정액을 자연 발정 또는 발정 유기 암캐 에게 인공수정 후 임신율을 조사하였다. 개 채취 정액의 동결 융해 후의 생존성은 $64.5{\pm}2.30%$로서 신선 정액의 생존성에 비해 유의하게 낮게 나타났다(p<0.05). 신선 및 동결 정액의 capacitation, acrosome reaction 및 생존성은 각각 $52.5{\pm}4.5%,\;9.5{\pm}0.6%,\;68.8{\pm}4.5%$ 및 $16.2{\pm}3.2%,\;3.2{\pm}0.5%,\;24.5{\pm}2.5%$로 나타났다. 신선 및 동결 정액을 자연 발정 또는 발정을 유기한 암캐에 인공수정했을 때 임신율은 각각 50.0% 및 33.3%로서 동결 정액을 이용했을 때 임신율이 신선 정액에 비해 낮은 임신율을 나타냈다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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