Supplementation of serum and estrogen in in vitro maturation(IVM) medium was shown to improve embryo development and quality in several species. This study investigates the effect of ovarian estrus stage on canine oocyte quality and supplementation of medium with canine serum or estrogen on IVM of canine oocytes. As results, in experimental 1, IVM oocytes collected from follicular stage ovaries to MII stages($10.2{\pm}1.5%$) was higher (p<0.05) with 10% canine estrus stage serum than control($1.3{\pm}1.6%$), anoestrus stage serum($4.0{\pm}1.6%$), luteal stage serum($2.7{\pm}1.7%$) and 10% FBS($1.3{\pm}1.6$). In experimental 2, 10% canine estrus stage serum supplementation has highest maturation rate to MII stages($10.0{\pm}1.8%$) and there were significant differences(P<0.05) with another treatment in follicular stages group. In order to investigate the synergic effect of estrous serum and estrogen supplementation, different estrous stage groups of oocytes were cultured with 2 ug/ml estrogen plus various concentrations of different reproductive stage serum and FBS(experimental 3). As results, the rate of maturation to metaphase II(MII) stage was significantly higher(p<0.05) in oocytes from the follicular stage supplemented with estrogen and 10% canine estrus stage serum(11.5%) compared to the other groups(6.0 - 8.8%). The present study was demonstrated that canine serum and the estrus cycle of the bitch affect the meiotic competence of oocytes. Hormonal influences within the follicle may be one of the factors responsible for the greater proportion of maturation of oocyte to MII from bitches at the follicular phase.
Kim, Eun-Kyung;Son, Weon-Young;Chi, Hee-June;Ko, Jung-Jae;Yoon, Tae-Ki;Cha, Kwang-Yul
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.19
no.2
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pp.163-168
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1992
This study was carried out to set up the ovum bank for ovum donation and to determine the best freezing method for human immature oocytes. Human immature follicular oocytes were cryopreserved by slow freezing and rapid thawing method. Immature follicular oocytes were treated by propanediol(PROH) solution by 2 and 4 step method in protocols A & B, respectively. In protocol C, immature oocytes were exposed to sucrose prior to treatment of PROH by 4 step method. We compared survival rate, maturation rate, and fertilization rate of immature oocytes among three protocols. Results were as follows. 1. Oocytes treated by the protocol C showed the highest survival rate( 70.3 %) and maturation rate(34.6%) after thawing. 2. Survival rate of oocytes treated by the protocol C was significantly higher than that of the protocol B after thawing(p<0.05). In conclusion, treatment of oocytes with sucrose prior to expose PROH was the best freezing method. Sucrose may have reduced the toxic effect of cryoprotectant to oocytes. We failed to induce fertilization of oocytes, which were treated by any protocols, by conventional insemination method, but obtained 28.8% fertilization rate by using partial zona dissection(PZD) method. This result suggests that micromanipulation(PZD) of the thawed oocytes before insemination will improve the fertilization rate.
These studies were conducted to investigate the effects of culture temperature and time on the in vitro maturation and semen type and media on the in vitro fertilization of bovine follicular oocytes, and to asses in vitro fertilization rate of oocytes cultured by extraffollicular method following fertilization in vitro, or transfer into the pseudopregnant rabbit oviduct or uterus. The bovine oocytes recovered from follicles were cultrued for 18 hrs or 72hrs at 38$^{\circ}C$ with 5% CO2 in moist air. Flesh-diluted(2 folds) and frozen-thawed semen in 0.5ml straw from a fertile bull were used. In order to obtain capacitation of spermatozoa were treated with bovine follicular fluids(BFF) and Inophore A(IA). The results obtained were summarized as follows: 1. The oocytes were classified as "A, B, C, D and Degenerative" depending morphological integrity and those were 62.0%, 12.0%, 17.2%, 5.9% and 3.0% of the total oocytes harvested, respectively. 2. The oocytes matured to metaphase II were significantly increased between 24-48hrs of incubation and at 37-39$^{\circ}C$ with 5% CO2 in moist air. 3. The in vitro fertilization rate following transferred into rabbit oviduct or uterus with bull semen and in vitro matured oocytes were higher ligation than non-ligation of oviduct or uterus. 4. The in vitro fertilization rate of oocytes matured in vitro were higher neat than frozen semen and treatment of IA than BFF on the capacitation of spermatozoa. 5. The effects of semen types and media on in vitro fertilization of oocytes matured in vitro were higher fertilization rate of neat than friozen semen, and media was not significant.
The aim of this study is to investigate the effect of porcine epididymal fluid (pEF) on in vitro-maturation and subsequent fertilization of porcine follicular oocytes. Porcine cumulus-oocytes complexes retrieved from antral follicles were cultured in tissue culture medium (TCM)-l99 supplemented with pEF of different concentrations. At 48 h after culture, development of oocytes to germinal vesicle (GV) breakdown, metaphase I, anaphase-telophase I, and metaphase II were examined Significant (p<0.05) increase in the proportion of oocytes developed to MII stage was observed in oocytes cultured in pEF-containing TCM-l99 than in oocytes cultured in pEF-free TCM-199 (46.2% vs 16.7%), which was a dose-dependent manner. Subsequently, the proportion of monospermic fertilization were significantly (p<0.05) increased in oocytes cultured in the TCM supplemented with pEF than those cultured in pEF-free TCM-199 (51.0% vs 24.1%). In the second series of experiment, the percentage of MII oocytes was significantly (p<0.05) increased after exposure of oocytes to pEF during the first 22 h period of culture than after exposure of oocytes to pEF during the next 24 h of culture, while no significant difference in the percentage of monospermy was observed. The results of this study demonstrate that pEF contains at least enhancing component(s) for nuclear maturation.
This study was conducted to investigate the effects of fetal bovine serum(FBS), calf serum(CS) and human serum(HS) on in vitro maturation of porcine follicular oocytes. The results obtained were summarized as follows : 1. The maturation rates of oocytes cultured in medium containing FBS 5, 10, 20 and 30% were 47.0, 63.5, 48.4 and 43.2%, respectively. There were significantly higher than those of non-treated group(25.3%). And the highest maturation rate was the 10% treatment. 2. The maturation rates of oocytes cultured in medium containing CS 5, 10, 20 and 30% were 55.2, 56.6, 59.4 and 46.5%, respectively. There were significantly higher than those of non-treated group(25.3%). And the highest maturation rate was the 20% treatment. 3. The maturation rates of oocytes cultured in medium containing HS 5, 10, 20 and 30% were 74.5, 78.2, 73.1 and 68.6%, respectively. There were significantly higher than those of non-treated group(29.6%). And the highest maturation rate was the 10% treatment.
Kim, Se-Woong;Park, Jong-Im;Jung, Yeon-Gil;Roh, Sangho
Reproductive and Developmental Biology
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v.38
no.4
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pp.143-146
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2014
Antioxidants, as reactive oxygen species scavengers, are one of the beneficial additives in serum-free defined culture medium. In this study, three separate experiments were performed to determine the effects of 3-hyroxyflavone added to the culture medium on the developmental competence of follicular bovine oocytes during in vitro maturation (IVM) and/or in vitro culture (IVC). The rate of blastocyst developed from oocytes cultured in IVM medium with 3-hyroxyflavone was significantly higher than that from control oocytes (39.0% vs. 26.3%, p<0.001), respectively. However, oocytes cultured in the medium with addition of 3-hyroxyflavone only at IVC period did not show significance in the blastocyst development when compared with control. When 3-hyroxyflavone was added to both IVM and IVC media, the rate of blastocyst formation was even significantly lower (21.1%) than control (26.5%; p<0.05). The present findings suggested that antioxidative activity of 3-hydroxyflavone added to only IVM medium beneficially affected the developmental competence of follicular bovine.
This study was carried out to investigate the factors affecting fertilization in vitro of follicular oocytes with frozen-thawed spermatozoa in Korean Native Cattle. The bovine ovaries were obtained at a slaughter house and the follicular oocytes were recovered by aspirating the follicular fluid from the visible follicles of 3~6mm. The bovine oocytes were matured in vitro for 20~24 hours in TCM-199 containing FCS and hormones. The matured oocytes were fertilized in vitro using Percoll-separated frozen-thawed spermatozoa in BO solution. The effects of dilution and fertilization media, capacitating method, concentration of inseminated sperm and time after insemination of fertilization, were observed. The results obtained are summarized as follows : 1. The fertilization rate of frozen-thawed sperm inseminated in BO solution with caffeine and heparin together(56.4%) was higher than that of sperm inseminated in BO solution with either caffeine(10.5%) or heparin(8.9%) and without both caffeine and heparin(0%)(P<0.05). 2. The fertilization rate(56.3%) of frozen-thawed sperm inseminated in BO solution with both caffeine and heparin without preincubation was higher than that of sperm preincubated(2.9%)(P<0.05). 3. The fertilization with high concentration of frozen-thawed sperm(1.4~1.8$\times$107cells/ml) in BO solution containing caffeine and heparin resulted in higher fertilization rate, 76.7%, than the low concentration of sperm(0.8~1.0$\times$107cells/ml), 32.7%(P<0.01). 4. When the oocytes were inseminated with frozen-thawed sperm in BO solution containing caffeine and heparin without preincubation, fertilization rate increased by time and the rates were 5.9, 46.0 and 59.4% at 8, 16 and 24 hours, respectively.
These studies were carried out to find the proper conditions for in vitro maturation and fertilization of bovine follicular oocytes and culture methods capable of further developing early embryos. For these objectives, the cleavage rate of oocytes matured and fertilized in vitro was investigated under medium supplemented with hormones and estrous cow serum and season of oocytes collection as well as different cumulus cell stage before insemination. Finally, 2~8 cell embryos were cultured in in vitro and in vitro culture system to investigate developmental capacity into morula. 1. Cleavage rate of oocytes matured in vitro was 27%(20/73) for A(LH+FSH+estradil-17$\beta$+10% FBS), 38%(27/71) for B(LH+10% ECS) and 27%(15/56) for C(10% ECS), respectively. Supplement B showed more higher rate and 4~8 cell embryos were also obtained much more in this group(67%, 18/27). In vitro maturation rate of follicular oocytes cultured in TCM 199 supplemented withLH and 10% ECS was 88%(75/85). 2. Cleavage rate(15%, 10/65) of oocytes collected in summer was significantly lower than in fall(47%, 42/89). 3. Cleavage rate(15%, 10/65) of oocytes collected in summer was significantly lower than in fall(47%, 42/89). 3. Cleavage rate(15%, 10/65) of oocytes with partially removed cumulus cell before insemination was more higher than that(44%, 27/62) of oocytes with intact cumulus cell. 4. The frequency of development from early cleaved embryos into morula was 6%(4/65), 12%(4/33) for co-culture of cumulus cell monolayer and bovine oviduct epithelial cell monolayer, respectively and 25%(6/25) in ligated rabbit oviduct.
Purine has been identified in the preparation of follicular fluid and shown an activity in maintaining oocyte meiotic arrest. Therefore this study was performed to examine the inhibitory effect of purine on germinal vesicle break down(GVBD) in the presence and absence of human fetal cord serum(HFCS) or human mature follicular fluid(HMFF), as a protein source, in vitro culture. Immature oocytes(GV stage) were collected from ovaries of 21∼28 days old ICR mice by puncturing the antral follicles with a fine needle, at 48 hrs after PMSG injection. Some of the oocytes were denuded by drawing the cumulus-enclosed(complex) oocytes in and out of a pasteur pipet. Complex oocytes and denuded oocytes were cultured 3 hrs. in T6 media containing 0.75mM adenosine or/and 4mM hypoxanthine, with HFCS or HMFF. Their GVBD rates were observed at every 1 hr. during the culture time. Both adenosine and hypoxanthine have shown a time-dependent inhibitory effect on GVBD in complex and denuded oocytes and the inhibitory effect was maximized in culture medium containing hypoxanthine and adenosine. HFCS and HMFF increased the GVBD rates in the presence of the purines, thus HFCS and HMFF may contain a factor that could reverse the inhibitory effect of purines. Also complex oocytes were more sensitive to not only the inhibitory effect of purines but the promoting action of HMFF on GVBD than denuded oocytes. Therefore it was reconfirmed that granulosa cells play an important part in meiotic arrest and resumption.
This study was carried out to assess whether the addition of myo-inositol to maturation medium could improve porcine oocyte maturation in vitro. Oocytes were cultured for the first 22 h in Witten's medium containing 10IU/$m\ell$ PMSG, 10 IU/$m\ell$ HCG supplemented with or without myo-inositol. Subsequently, they were cultured for additional 22 h in Witten's medium without hormone supplemented with or without myo-inositol. When the porcine oocytes were cultured in maturation medium containing myo-inositol, the proportion of metaphase II oocytes 44h after culture was higher in the myo-inositol group(P<0.05). To study effects of cumulus cell on the maturation induced by myo-inositol, we examined the maturation status of cumulus-enclosed or cumulus-denuded porcine follicular oocytes. The rates of maturation were significantly higher in the cumulus-enclosed oocytes(P<0.05). However, the maturation rates of cumulus-denuded oocytes cultured in medium containing myo-inositol were higher than those of control group(P<0.05). Our results suggest that myo-inositol may affect meiotic progression of porcine follicular oocytes and supplementation of myo-inositol in maturation medium may be useful for the in vitro maturation of porcine follicular oocytes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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