The astaxanthin recovery efficiencies were compared in acetonitrile, acetone, methanol, dichloromethane : methanol (1:3, v/v) and ethylacetate : ethanol (1:1, v/v) as a extraction solvent after the grinding of the H. pluvialis cells. The astaxanthin extraction yield in acetone was 1.13~1.29 times higher than other extraction solvents. It was also found that 96.7% of astaxanthin accumulated in H. pluvialis could be recovered by a single extraction. Since astaxanthin exists mainly as astaxanthin esters in H. pluvialis, a gradient reversed-phase HPLC analysis was carried out for the separation of astaxanthin esters from the extracts of H. pluvialis. Among the astaxanthin inside the H. pluvialis cell, free astaxanthin was 45.9% and astaxanthin esters were the rest.
Astaxanthin is one of the carotenoid with strong antioxidant. The conditions of extraction of astaxanthin from Portunus trituberculatus were optimized in this work. Six factors of conditions such as, extraction method, extraction solvent, ratio of solvent to raw material, temperature, and time, were investigated. For the increase of the extraction yield, ionic liquids were used as additives in the extraction solvent. The optimum extraction conditions were found: heat reflux extraction, Dichloromethane/methanol (25:75, v/v) as solvent, 1:30 of the ratio of solvent raw material, $80^{\circ}C$, 90 min, and ionic liquid as additive. As a result, 45.81 ${\mu}g/g$ of astaxanthin was extracted from waste.
Yoon, Chang Hwan;Bok, Hee Sung;Choi, Dae Ki;Row, Kyung Ho
Korean Chemical Engineering Research
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v.50
no.3
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pp.545-550
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2012
A 17-run Box-Behnken design (BBD) was used to optimize the extraction conditions of astaxanthin from shrimp waste. Three factors such as ratio of ethanol to raw material, extraction temperature ($^{\circ}C$) and extraction time (min) were investigated. The adjusted coefficient of determination ($R^2{_{adj}}$) for the model was 0.9218, and the probability value (p=0.0003) demonstrated a high significance for the regression model. The optimum extraction conditions were found to be: optimized ratio of ethanol to raw material 29.7, extraction temperature $49.5^{\circ}C$ and extraction time 59.9 min. Under these conditions, the mean extraction yield of astaxanthin was $17.80{\mu}g/g$, which was in good agreement with the predicted model value. Under these conditions, validation experiments were done and the mean extraction yield of astaxanthin was $17.77{\mu}g/g$, which is in good agreement with the predicted model value.
Kim, Young-Beom;Ryu, Kang;Lim, Gio-Bin;Lee, Eun-Kyu
KSBB Journal
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v.17
no.2
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pp.176-181
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2002
Astaxanthin (3,3'-dihydroxy-${\beta}$, ${\beta}$-carotene-4-4'-dione), a natural pigment of pink to red color, is widely distributed in nature particularly in the skin layer of salmonoids and the crust of shrimp, lobster, etc. Recently, it was produced from the yeast culture of Phaffia rhodozyma. Because of its high thermal stability and antioxidant functionality, its applications can be extended into food, cosmetics, and pharmaceutical ingredient beyond the traditional feed additive. Because of its very high lipophilicity, astaxanthin has been extracted traditionally by strong organic solvents such as chloroform, petroleum ether, acetone, etc. In this study, we developed a surfactant-based solubillization system for astaxanthin, and used it to extract astaxanthin from disrupted yeast cells. Among Tween 20, Triton X-100 and SDS, Tween 20 was identified as the most suitable surfactant in terms of extraction capacity and safety. The ethylene oxide group of Tween 20 was identified as the most significant factor to increase the HLB value that determined the extraction capacity. The effects of micelle formation condition, such as the molar ratio of astaxanthin and Tween 20, pH, and ionic strength were also investigated. pH and ionic strength showed no significant effects. The optimal molar ratio between astaxanthin and Tween 20 was 1 : 12. Antioxidant activity of astaxanthin was higher than ${\beta}$-carotene and ${\alpha}$-tocopherol. Astaxanthin in the crude extract from the yeast cell was more resistant to air and/or light degradation than pure astaxanthin, probably because of the presence of other carotenoids and lipids.
This study investigated an efficient method for the extraction of astaxanthin from the red yeast Xanthophyllomyces dendrorhous. The extraction process comprised three steps: 1) cultivating the yeast; 2) treating the yeast culture suspension with microwaves to destroy the cell walls and microbodies; and 3) drying the yeast and extracting the astaxanthin pigment using ethanol, methanol, acetone, or a mixture of the three as the extraction solvent. Ultimately, various treatment tests were performed to determine the conditions for optimal pigment extraction, and the total carotenoid and astaxanthin contents were quantified. A frequency of 2,450 MHz, an output of 500 watts, and irradiation time of 60 s were the most optimum conditions for yeast cell wall destruction. Furthermore, optimal pigment extraction occurred when using a cell density of 10g/l at $30^{\circ}C$ over 24 h, with a 10% volume of ethanol.
Kim, Yeong-Beom;Lee, Eun-Gyu;Lee, Sang-Yun;Im, Gyo-Bin
한국생물공학회:학술대회논문집
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2000.11a
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pp.198-201
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2000
The capacity of micelle formation between astaxanthin and various surfactants was compared. Tween 20 was identified the most suitable surfactant in terms of astaxanthin extraction capacity. The ethylene oxide group of Tween 20 was identified as the most significant factor to increase the HLB value that determined the extraction capacity. The effect of micelle formation condition, such as molar ratio of astaxanthin and Tween 20, pH and ionic strength was also investigated. pH and ionic strength showed no significant effects. Antioxidant activity of astaxanthin was twice of ${\alpha}-tocopherol$ and 4 times of ${\beta} -carotene$. Crude astaxanthin extract from the yeast cell seemed to be less degraded than pure astaxanthin by air and light exposure, probably because of the presence of other carotenoids and lipids. Under the optimal conditions, the molar ratio of micelle formed was found to be 1 : 12 for astaxanthin : Tween 20.
A sensitive and accurate method for the detection of astaxanthin was developed. The optimum HPLC system for the extraction and quantification of astaxanthin was based on a reversed phase column, and a quaternate mobile phase contained dichloromethane. The amount of astaxanthin can be accurately quantified in Phaffia rhodozyma cultures. The results of this study suggest that the mixture solution of dimethylsulphoxide and acetone is the optimal extraction solvent for astaxanthin and samples treatment for astaxanthin analysis must control low temperature and absent light operation strictly.
Kim, So-Young;Cho, Eun-Ah;Yoo, Ji-Min;In, Man-Jin;Chae, Hee-Jeong
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.37
no.10
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pp.1363-1368
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2008
The extraction and quantitative analysis conditions for astaxanthin from Haematococcus pluvialis, and the structural characteristics of H. pluvialis extract, H. pluvialis hydrolysate and synthetic astaxanthin were investigated using UV/visible and FT-IR spectrometers. Astaxanthin was dissolved in methanol, and then treated to enhance the solubility by sonication for 45 min. With sonication pretreatment, the solubility of astaxanthin increased up to 1.5 times compared to that without sonication. The extracts were hydrolyzed by cholesterol esterase for the analysis of H. pluvialis extract containing astaxanthin ester. A HPLC method using reverse phase C18 column with methanol-water (95:5, v/v) as mobile phase was developed to analyze astaxanthin. After hydrolysis, the absorption spectrum of H. pluvialis hydrolysat was changed to similar pattern to synthetic astaxanthin, confirming the extraction and analysis condition of astaxanthin from H. pluvialis.
Journal of the Korea Academia-Industrial cooperation Society
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v.10
no.1
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pp.194-199
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2009
An efficient production method of food-grade heamatococcus extract was developed based on stepwise enzymatic hydrolysis. In the first step, Haematococcus pluvialis cells hydrolysis carried out with commercially available exopeptidase(Flavourzyme) and endopeptidase (Alcalase), resulted in increased astaxanthin content. In the second step, proteolytic hydrolyzed H. pluvialis cells treated with hetero-polysaccharides hydrolytic enzyme (Viscozyme). By two-stage treatments using Alcalase and Flavourzyme and Viscozyme, the highest astaxanthin content was obtained. The astaxanthin content was remarkably enhanced by 320% $(529{\mu}g/g\rightarrow2,256{\mu}g/g)$ than that of the non-treated extract. And then, antioxidative activities determined by DPPH method were increased with increasing the astaxanthin content in haematococcus extract prepared by enzymatic hydrolysis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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