A microbial consortium, TMC7, was enriched for the degradation of natural lignocellulosic materials under high temperature. TMC7 degraded 79.7% of rice straw during 15 days of incubation at $65^{\circ}C$. Extracellular xylanase was effectively secreted and hemicellulose was mainly degraded in the early stage (first 3 days), whereas primary decomposition of cellulose was observed as of day 3. The optimal temperature and initial pH for extracellular xylanase activity and lignocellulose degradation were $65^{\circ}C$ and between 7.0 and 9.0, respectively. Extracellular xylanase activity was maintained above 80% and 85% over a wide range of temperature ($50-75^{\circ}C$) and pH values (6.0-11.0), respectively. Clostridium likely had the largest contribution to lignocellulose conversion in TMC7 initially, and Geobacillus, Aeribacillus, and Thermoanaerobacterium might have also been involved in the later phase. These results demonstrate the potential practical application of TMC7 for lignocellulosic biomass utilization in the biotechnological industry under hot and alkaline conditions.
The endo-1,4-${\beta}$-xylanase was extracted and purified from the extracellular xylanolytic systems of Trichoderma viride. The crude enzyme was chromatographed with ion-exchange reins of DEAE Sepharose CL-6B, Sepharose, S-Sepharose CL-6B and the resulting xylanase was turned out to be a single protein as 20KD hy SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The xylooligomers were obtained from xylan by incubation with the purified xylanase up to 50%. The ${\beta}$-xylosidase lost its activity completely by incubation of crude enzyme for 24hr with buffer solution of pH 2.8 at $27^{\circ}C$. And also, the xylooligomers were obtained from xylan as a main product by incubation with the crude enzyme treated with acidic buffer.
Journal of Korea Technical Association of The Pulp and Paper Industry
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v.36
no.3
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pp.9-14
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2004
The useful fungi which secret extracellular enzymes was selected for deinking agent of old newsprint. Five fungal strains were isolated from a paper mill soil ground. The CMCase, FPase and xylanase activities of fungi on the liquid culture were investigated at optimal growth conditions. The results of this study were as follow: The optimal pH and temperature for culture growth were 4~8 and 27~$35^{\circ}C$, respectively. For screening of extracellular enzymes at optimal culture conditions the optimal culture period were less than 6-7 days. Fusarium pallidoroseum and Aspergiilus niger which shows relatively higher CMCase, FPase and xylanase activities than the other species were selected for further enzymatic deinking research.
An extracellular xylanase of Bacillus stearothemophilus was purified to a single protein through a sequency of operations including ammonium sulfate fractionation, DEAE Sepharose CL-6B ion exchange chromatography, Sephadex G-100 gel filtration and heat treatment. The purified enzyme had a moleular weight of 170, 000. the pH and temperature optima for the enzyme activity were pH 9.0 and $55^{\circ}C$, respectively. The activity was enhanced by $co^{2+} \; and\; Mn^{2+}$, and inhibited by $Hg^{2+}$. Pattern of hydrolysis demonstrated that the xylanase was an endo-splitting enzyme able to break down larchwood xylan at random giving xylobiose and xylotriose as the main end products.
Xylanase is a class of enzymes that hydrolyze the linear polysaccharide ${\beta}$-1,4-xylan into xylose. This enzyme is applied in the process of paper making and may be used for the process of biofuel production in the future. The Paenibacillus donghaensis JH8, isolated from Donghae deepsea sediment and reported as a novel bacterium, was known to degrade xylan and its xylanase was characterized in this study. The enzyme was maximally induced in the presence of 0.1% xylan. The production of xylanase was started at early logarithmic phase and reached about 55 miliunit at stationary phase of growth. The optimal temperature and pH of extracellular xylanase were found to be $40^{\circ}C$ and pH 6.0, respectively. The activity of xylanase was inhibited by the presence of $Ca^{2+}$, $Mn^{2+}$, $Fe^{2+}$, $Cu^{2+}$, $Al^{3+}$ or EDTA, and activated by $K^+$, $Ag^+$ or DTT. This xylanase was stable at $40^{\circ}C$ for 120 min, but lost almost their activity in 30 min at $60^{\circ}C$. Zymography analysis of concentrated culture supernatant revealed one major band at 42 kDa and two faint bands at 68 and 120 kDa.
To obtain an efficient natural lignocellulolytic complex enzyme, we screened an efficient lignocellulose-degrading composite microbial system (XDC-2) from composted agricultural and animal wastes amended soil following a long-term directed acclimation. Not only could the XDC-2 degrade natural lignocelluloses, but it could also secrete extracellular xylanase efficiently in liquid culture under static conditions at room temperature. The XDC-2 degraded rice straw by 60.3% after fermentation for 15 days. Hemicelluloses were decomposed effectively, whereas the extracellular xylanase activity was dominant with an activity of 8.357 U/ml on day 6 of the fermentation period. The extracellular crude enzyme noticeably hydrolyzed natural lignocelluloses. The optimum temperature and pH for the xylanase activity were $40^{\circ}C$ and 6.0. However, the xylanase was activated in a wide pH range of 3.0-10.0, and retained more than 80% of its activity at $25-35^{\circ}C$ and pH 5.0-8.0 after three days of incubation in liquid culture under static conditions. PCR-DGGE analysis of successive subcultures indicated that the XDC-2 was structurally stable over long-term restricted and directed cultivation. Analysis of the 168 rRNA gene clone library showed that the XDC-2 was mainly composed of mesophilic bacteria related to the genera Clostridium, Bacteroides, Alcaligenes, Pseudomonas, etc. Our results offer a new approach to exploring efficient lignocellulolytic enzymes by constructing a high-performance composite microbial system with synergistic complex enzymes.
Cultural conditions for the formation of extracellular xylanase by Candida sp. X-6-41 were investigated. The xylanase was not produced in culture medium containing polypeptone or yeast extract as a nitrogen source, respectively, whereas the enzyme w8s produced in chemically defined medium containing (NH$_4$)$_2$SO$_4$as a sole nitrogen source. The xylanase production was affected by the amino acids such as isoleucine and tryptophan. The enzyme production of the strain was completely inhibited by the addition of isoleucine in the culture medium, but enhanced by tryptophan below the concentration of 25$\mu$g/$m\ell$.
S. chibaensis J-59 produced an extracellular xylanase in a CSL medium composed of 1.5% com steep liquor, 0.1% $MgSO_4{\cdot}7H_2O$, 0.012% $CoCl_2{\cdot}6H_2O$, and 0.15% glucose containing xylan. but it did not produce in the culture medium containing xylose. The production of enzyme reached to a maximum level (0.83 uints/ml) when bacteria were cultured in 2.5 l jar fermentor for 48hrs at $30^{\circ}C$ and pH 7.0. Furthermore, S. chibaensis J-59 produced an intracellular glucose isomerase in a medium containing xylan and/or xylose. Xylanase was purified 29-fold over the culture supernatants of S. chibaensis J-59 by ammonium sulfate fractionation, chromatography on DEAE-Sephadex A-50, and gel filtration on Sephadex G-200. The purified enzyme is a monomeric enzyme with a native molecular mass of 25 kDa and a subunit molecular mass of 25 kDa. The purified enzyme requires $Mg^{2+}$ for activity, $Ca^{2+}$, $Co^{2+}$ is not an inhibitor but inhibit by $Fe^{3+}$, $Hg^{2+}$, and $Cu^{2+}$, sodium dodecyl sulfate, N-bromosuccinide. Pattern of hydrolysis demonstrated that the xylanase was an endo-splitting enzyme able to break down birchwood xylan at random giving xylobiose, xylotriose and xylotetrose as the main end products.
Journal of Korea Technical Association of The Pulp and Paper Industry
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v.37
no.1
s.109
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pp.38-46
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2005
This study was focused on the optimum culture condition in CMCase, FPase and xylanase activities of two fungal strains that secret extracellular enzymes for using enzymatic deinking agent to old newsprint. The results of this study were as follows. When Fusarium pallidoroseum was grown on the medium, containing of rice bran+xylan $2.0\%,\;peptone\;0.6\%,\;KH_2PO_4\;0.075\%\;and\;MnSO_4\;0.06\%\;with\;pH\;9.0,\;at\;29^{\circ}C$ for 6 days, the quantitative degree of extracellular enzyme production was the highest. Optimum culture condition for Aspergillus niger was pH 5.0, $27^{\circ}C$ incubating temperature and 7 days incubation period on liquid medium, containing of CMC+xylan $2.5\%,\;yeast\;extract\;0.4\%,\;K_3PO_4\;0.05\%\;and\;CaCl_2+FeSO_4\;0.08\%$. Aspergillus niger was fairly higher FPase and xylanase activities than Trichoderma reesei ATCC 28217.
The influence of cellulosic and hemicellulosic substrates on the production of cellulase and xylanase complexes in Aspergillus niger was investigated. The culture conditions with different substrates exhibited profound effects on the level of endoglucanase (CMCase), ${\beta}-glucosidase$, endoxylanase and ${\beta}-xylosidase$, and on their isozyme patterns. However, intracellular and extracellular isozyme patterns of cellulase and xylanase complexes were qualitatively identical and appeared to be simultaneous in the early growth phase. Prolonged incubation led to the increase in the concentrations of isozymes with a little changes in the relative proportions of those isozymes. These results suggest that the biosynthesis of cellulase and xylanase complexes in A. niger is coordinately regulated at the level of induction. Moreover, multiple forms of extracellular cellulase and xylanase complexes seem to be the outcome of specific gene expression and should not be considered solely as the consequence of post-secretional modification of synthesized enzymes.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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