The purpose of this study is to investigate the effect of influent phosphorus concentration on the nitrogen and phosphorus removal in sequencing batch reactor(SBR) and sequencing batch biofilm reactors(SBBRs) in order to recover the enhanced biological phosphorus removal (EBPR) capacity at the sludge of the deterioration of EBPR capacity. In SBBRs, comparing to SBR, the organic removal was occurred actively at the 1 st non-aeration period because of the active phosphorus release at this period. However, the variation of TOC removal according to the decrease of influent phosphorus concentration was not clearly shown both in SBR and SBBRs. In case of SBR losing EBPR capacity, the EBPR capacity was not recovered by the decrease of the influent phosphorus concentration from 7.5 mg/L to 0.9 mg/L. The nitrogen removal increased by the decrease of influent phosphorus concentration both in SBR and SBBRs.
Enhanced biological phosphorus removal (EBPR) behavior and microbial characteristics in the anaerobic-aerobic SBR (PAO SBR) and the anaerobic-anoxic SBR (DPAO SBR) were examined in this research. For 392 days of operation, both SBRs have exhibited a good EBPR (or denitrifying EBPR) performance. $P_{release}/P_{influent}$ ratio was highest in both reactors after the stabilization, while the efficiency of phosphorus removal was decreased since the sludge granulation has been visually observed within the reactor. The comparative analysis of Pyrosequencing-based microbial population between PAO and DPAO sludges showed indirectly that Dechloromonas spp. could utilize $O_2$ and $NO_3{^-}-N$ as an electron acceptor and Accumulibacter phosphatis use only $O_2$ in EBPR system. Also, we concluded that Thauera spp. as a denitrifier contribute significantly to the anoxic phosphorus removal in the DPAO system.
Microbial communities were analyzed in an anaerobic/aerobic sequencing batch reactor (SBR) fed with glucose as a sole carbon source. Scanning electron microscopy (SEM) showed that tetrad or cuboidal packet bacteria dominated the microbial sludge. Quinone, slot hybridization, and 165 rRNA gene sequencing analyses showed that the Proteobacteria beta subclass and the Actinobacteria group were the main microbial species in the SBR sludge. However, according to transmission electron microscopy (TEM), the packet bacteria did not contain polyphosphate granules or glycogen inclusions, but only separate coccus-shaped bacteria contained these, suggesting that coccus-shaped bacteria accumulated polyphosphate directly and the packet bacteria played other role in the enhanced biological phosphorus removal (EBPR). Based on previous reports, the Actinobacteria group and the Proteobacteria beta subclass were very likely responsible for acid formation and polyphosphate accumulation, respectively, and their cooperation achieved the EBPR in the SBR operation which was supplied with glucose.
Biological nutrient removal (BNR) sludge was added to a sequencing batch reactor (SBR) in the addition ratios of 0%, 20%, 40%, 50% while observing the variation of nutrient removal characteristics and microorganism groups. When the BNR sludge was added in a ratio over 40%, the characteristics of EBPR (enhanced biological phosphorus removal) was shown at the 27 days. However, a distinct BNR was not shown when the addition ratio of BNR sludge was lower than 40%. The organic removal efficiency were shown as 90% in all SBRs irrespective of the addition ratio of BNR sludge. At the 27 days, the phosphorus removal efficiencies were shown as 40%, 55%, 77% and 69%, respectively, according to the addition ratio of BNR sludge. Overall, efficient nitrification and phosphorus removal was shown when the added BNR sludge ratio was over 40%.
A sequencing batch reactor was operated under different pH conditions to see the influence of pH to microbial community in enhanced biological phosphorus removal (EBPR) systems. Long term influences of different steady-state pH conditions on the microbial community composition were evaluated by polymerase chain reaction (PCR)-denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) and fluorescence in situ hybridization (FISH). The shift in populations from polyphosphate-accumulating organisms (PAOs) to Alphaproteobacteria was observed when pH was changed from 7.5 to 7.0. Alphaproteobacteria with the typical morphological traits of tetrad-forming organisms (TFOs) eventually became dominant members. The alphaproteobacterial TFOs were the phenotype expected for glycogen-accumulating organisms (GAOs), which accumulate large amount of glycogen into the cell. The results strongly suggested that low operational pH condition encourages the appearance of the GAOs in EBPR process, significantly reducing the EBPR capacity.
Enhanced biological phosphorus removal (EBPR) is not always successfully achieved by anaerobic/aerobic operation. It has been reported that the EBPR deterioration was caused by the outgrowth of glycogen-accumulating organisms (GAO) over polyphosphate-accumulating organisms (PAO). It was found that pHcould be a tool which might induce the success of EBPR in a sequencing batch reactor (SBR) supplied with acetate. When the pH of anaerobic phase was controlled at 7.0, the operation resulted in failure of EBPR. However, when the pH of anaerobic phase increased up to 8.4, complete EBPR was achieved. We explained the mechanism of pH effect on the competition between GAO and PAO with experimental results and previously proposed biochemical models.
The overall performance of BNR-MBR, so-called Anoxic-Anaerobic-Aerobic Membrane Bioreactor ($A^3$-MBR), developed for nutrient removal was studied to determine the efficiencies and mechanisms under different solid retention time (SRT). The reactor was fed by synthetic high-rise building wastewater with a COD:N:P ratio of 100:10:2.5. The results showed that TKN, TN and phosphorus removal by the system was higher than 95%, 93% and 80%, respectively. Nitrogen removal in the system was related to the simultaneous nitrification-denitrification (SND) reaction which removed all nitrogen forms in aerobic condition. SND reaction in the system occurred because of the large floc size formation. Phosphorus removal in the system related to the high phosphorus content in bacterial cells and the little effects of nitrate nitrogen on phosphorus release in the anaerobic condition. Therefore, high quality of treated effluent could be achieved with the $A^3$-MBR system for various water reuse purposes.
An improvement of nitrogen and phosphorus removal in SBR using the elutriated acids from the food waste as an external carbon source was investigated in this study. The food waste was elutriated at $35^{\circ}C$ and pH 9 to produce the external carbon source. The elutriate of food waste were continuously collected. The elutriated liquid contained VFAs of 39,180 mg/L representing soluble COD of 44,700 mg/L. The SBR showed poor denitrification and EBPR (enhanced biological phosphorus removal) without elutriated VFAs addition. An average denitrification rate was 0.4 mg NOx-N/g MLVSS/day. In turn, EBPR was also inhibited by this poor denitrification because the remaining nitrate in anaerobic phase resulting a poor denitrification. On the other hand, the denitrification in anoxic phase significantly improved with an elutriated VFAs addition. Nitrate removal was 82% while the denitrification rate was 2.9 mg NOx-N/g MLVSS/day with 18.4 mL/cycle of elutriated VFAs. With the enhanced denitrification, nitrate concentration in anaerobic phase could effectively be controlled to a very low level. The elimination of nitrate inhibition in anaerobic phase resulted enhancement of EBPR. The specific phosphate release rate was $1.9mg\;PO_4^{3-}-P/g\; MLVSS/day$ with less than 0.5 mg/L of $PO_4^{3-}-P$ concentration.
This study aims at characterizing the bacteriophages isolated from activated sludge performing enhanced biological phosphorous removal (EBPR) to understand the interactions between the phage-host system and bacterial community. Sixteen bacterial isolates (E1-E16) were isolated as host bacterial strains from EBPR activated sludge for phage isolation. Forty bacteriophages based on their plaque sizes (2 plaques on E4, 4 on E8, 11 on E10, 5 on E14, 18 on E16) were obtained from filtered supernatant of the EBPR activated sludge. Each bacteriophage did not make any plaque on bacterial strains tested in this study except on its own host bacterial strain, respectively, indicating that the bacteriophages are with narrow host specificity. However, fourteen of the forty bacteriophages obtained in this study lost their virulent ability even on their own host bacteria. All of the lytic phages showed similar one-step growth patterns and had long latent period (about 9 hours) to reproduce their phage particles in their host bacterial cells. On the other hand, their probable burst sizes (6 to 48 per host cell) were large enough to actively lyse their host bacterial cells. Therefore, it could be implied that bacteriophages are also important members of the microbial community in EBPR activated sludge, and lytic phages directly decrease the population size of their host bacterial groups in EBPR activated sludge by lysis.
While the enhanced biological phosphorus removal(EBPR), in anaerobic/aerobic condition, was known to remove phosphorus by means of metabolism of poly-P microorganisms, the phosphorus removed could be released in the form of ortho-P in the aerobic fixed biofilm reactor. This study was initiated to investigate the cause of ortho-P release in the aerobic fixed biofilm reactor. The resutls indicated that the phosphorus release was caused by autooxidation. The synthesis and release of phosphrous were related to the ORP and the boundary value for the phase change was about 170mV. In the synthesis phase, the phosphorus removal rate per COD removed was $0.023mgP_{syn}/mgCOD_{rem}$. The phosprous contents of the microorganism were 4.3 ~ 6.0% on a dry weight basis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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