In general, the blood cell culture is a common method for animal chromosome preparation. However, every animal and its cells have unique physiological characteristics and functions. Hence, it is very difficult to find the suitable method of chromosome preparation using animal lymphocyte culture. This study was carried out to fine the suitable method of chromosome preparation using lymphocytes cultures in mammalians and aves including cattle, rat, mouse and chicken. To seek the optimal method of lymphocyte culture in each animal, $2^3$ factorial experiment was designed. The design evaluated three main effects in culture duration, kinds of mitogen supplements and colcemid exposure time with two levels within each effect. The mitotic index and the score of chromosome morphology were analyzed. In results, the suitable methods of lymphocyte culture for chromosome preparation were 72 hours culture, pokeweed mitogen(PWM) supplement and 90 minutes of colcemid exposure in cattle, 72 hours culture, PWM supplement and 50 minutes of colcemid exposure in chicken, 96 hours culture, concanavalin A supplement and 90 minutes of colcemid exposure in rat, and 72 hours culture, PWM supplement and 50 minutes of colcemid exposure in mouse, respectively. In conclusion, kinds of mitogen, culture duration and colcemid exposure time significantly affected the mitotic index and chromosome morphology, in animal lymphocyte culture. The interaction effects between/among treatment factors were also statistically significant.
Kim, Se-Joo;Choi, Joong-Ki;Ryu, Seong-Ho;Min, Gi-Sik
Animal cells and systems
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제15권3호
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pp.251-258
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2011
Ciliates are considered one of the most diverse protozoa and play significant roles in ecology. For successful taxonomic study of these microscopic eukaryotes, a staining procedure is necessary, due mainly to intrinsic difficulties in recognizing characteristics from living cells. Although molecular taxonomy has been used to resolve the ambiguities associated with traditional morphology-based taxonomy, extraction of genomic DNA from stained ciliate cells is not available yet. In the present study, we describe a method to extract genomic DNA from a single protargol-impregnated euplotid cell. By using $HgCl_2$ as a fixative and modulating the exposure time of bleach solution in the protargol impregnation, high-quality genomic DNA can successfully be extracted from a stained single cell with minimal loss of morphological integrity. This technique will contribute to the effectiveness of combined approaches of molecular and morphological taxonomy from single ciliate cells.
This study was conducted to improve efficiency of a follicle culture system without reducing developmental competence of intrafollicular oocytes. Preantral follicles (100 to $125{\mu}m$ in diameter) of F1 hybrid (B6CBAF1) mice were cultured singly for 216 h in modified ${\alpha}$-MEM-glutamax medium, to which 2.5 IU/ml hCG and epidermal growth factor was added 16 h prior to the end of culture. Medium change was either performed three times (54 h interval), twice (72 h interval), once (108 h interval), or not at all (216 h interval). Maturation (progression to the metaphase II stage) of intrafollicular oocytes was detected from 4 days after culture in the three-times change treatment, while all treatments yielded mature oocytes from day 5 of culture. Compared with the three-times change, decreasing the change frequency to once did not reduce the capacity to begin maturation (germinal vesicle breakdown of 82 to 86%), to mature (78 to 79%) and to develop into blastocysts after parthenogenetic activation (29 to 32%). Morphological parameters were similar among these treatments. Except for the no medium change treatment, similar colony-forming activity of inner cell mass cells after culturing of blastocysts in leukemia inhibitory factor-containing medium was detected, while the morphology of the colony-forming cells deteriorated in the change-once treatment compared with the change twice or three-times. In conclusion, the efficiency of the preantral follicle culture system could be improved by reducing frequency of medium change up to a 72 h interval (three times in total 216 h culture) without decreasing developmental competence of oocytes.
Cryopreservation of embryos by vitrification is a simple method to preserve bovine embryos for subsequent embryo transfer, but embryonic viability after vitrification has been inconsistent and low compared with conventional slow freezing. The aim of the present study is to examine the effect of serum or serum albumin in a vitrification solution and epidermal growth factor(EGF) or fibroblast growth factor(FGF) on in vitro viability of bovine blastocysts frozen by vitrification. Bovine blastocysts were produced by in vitro maturation, fertilization of follicular oocytes and culture of embryos in a synthetic oviduct fluid medium(SOFM) containing BSA and 19 essential and nonessential amino acids. Blastocysts with excellent or good morphology were selected at 7 or 8 days after culture and utilized for vitrification. In experiment 1, blastocysts were vitrified in a solution containing semi-fetal calf serum(SFCS) or BSA(5 or 10mg/ml) and then their subsequent viabilities were examined by culturing thawed embryos in a SOFM containing BSA and 19 amino acids. Effect of EGF or FGF added to a SOFM containing polyvinyl alcohol(PVA) on the viability of vitrified-thawed blastocysts was investigated in experiment 2. BSA added at 5 or 10mg/ml to a vitrification solution showed significantly higher(p < 0.05) developmental rate to expanded and hatching blastocysts than SFCS, but there was no significant difference in the developmental rate to hatched blastocysts after thawing. Supplementation of a culture medium with EGF and/or FGF significantly increased(p < 0.05) embryo development to expanded blastocysts compared with control but showed no beneficial effect on the development to hatching or hatched blastocysts. Coculture of thawed embryos with granulosa cells in a TCM 199 containing 10% fetal calf serum(FCS) showed the highest developmental rate to expanded, hatching and hatched blastocysts among the groups tested. In conclusion, supplementation of a vitrification solution with BSA at 5mg/ml and culture of thawed blastocysts in a medium containing EGF and/or FGF can improve in vitro viability of bovine blastocysts frozen by vitrification.
Holstein cow ovaries obtained at a slaughterhouse were used to study the influence of the oocyte collection methods (slicing, puncture, aspiration I and II) on recovery efficiency and subsequent in vitro maturation and embryonic development competence of immature oocytes recovered. In the slicing method, the whole ovarian was chopped into small pieces with a surgical blade. In the puncture method, the whole ovarian surface was punctured by 18-g needle. In other 2 aspiration methods, collected oocytes by aspirating from the visible follicles using an 18-g needle attached to a 5 ml syringe (aspiration I) or using a constant negetive pressure (-80 mmHg) with a vacuum pump (aspiration II). The oocytes were classified into 4 classes on the basis of the morphology of cumulus cells and cytoplasmic appearance of oocyte. Slicing ($9.6{\pm}0.4$) and puncture ($9.7{\pm}0.4$)yielded a larger number of oocytes per ovary than other two aspiration methods (aspiration I and II were $5.8{\pm}0.3$and $5.6{\pm}0.4$, respectively) (p<0.05). The number of the highest quality oocytes (grade A) per ovary was significantly higher in slicing ($4.2{\pm}0.2$) and puncture ($4.6{\pm}0.1$) methods than in other methods (aspiration I and II were $1.2{\pm}0.2$ and $1.4{\pm}0.2$, respectively) (p<0.05). The rate of nuclear maturation of the highest and higher quality oocytes (grade A and grade B, respectively) was not affected by the oocytes collection methods. The oocytes collection methods also did not influence subsequent embryonic developmental competence after in vitro fertilization with M II stage oocytes. It is concluded that slicing and puncture methods of the ovaries can be used as an alternative techniques to aspiration by the syringe or vacuum pump.
The aim of the present study was to investigate the cleavage pattern, its developmental ability and apoptosis of porcine embryo in vitro. Morphology data on a total of 919 embryos were analyzed retrospectively. Forty-eight hours after insemination, embryos were classified into five groups based on the cleavage state as follows; 1 cell, 2 cell, 4 cell, 5 to 8 cell and fragmentation. These groups were cultured another 120 hours and then evaluated for blastocyst formation. Blastocyst formation rates were significantly higher in 4 cell (42.5%) and 5 to 8 cell (48.6%) cleaving groups than in other groups (p<0.05). On the other hand, 2 cell and fragmentation groups produced 4.9% and 3,9% blastocysts, respectively. And we could verify that in the event of 2 cell block and fragmentation of embryo. To analyze the apoptotic frequency in preimplantation development of porcine IVF embryos, all cells of each blastocyst were performed by TUNEL assay. There were no significantly differences in the total cell numbers of embryos and apoptotic cell rate in blastocysts among the each classified groups. Data suggest that 4 cell and 5 to 8 cell cleaving embryos at 48 hour after insemination have high developmental competence, and may be an useful parameter to predict the development of preimplantation embryos and to study using preimplanation embryonic research.
Jo, Jun Woo;Jee, Byung Chul;Suh, Chang Suk;Kim, Seok Hyun
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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제40권4호
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pp.148-154
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2013
Objective: To compare the mouse oocyte vitrification outcomes of the CryoLogic vitrification method (CVM) and the conventional open method using a Cryotop. Two CVM methods (original CVM and modified CVM) were tested. Methods: Mature oocytes obtained from female BDF-1 mice were vitrified by two-step exposure to equilibrium and vitrification solutions. Three vitrification protocols were tested on three groups: the CVM-kit, modified CVM, and Cryotop groups. After exposure to the two solutions, the oocytes were vitrified. After warming, the oocytes were fertilized in vitro, and the embryo development was assessed. Blastomeres positive for caspase were counted using an in situ assay kit. The spindle morphology and chromosome configurations of warmed vitrified oocytes were also assessed. Results: The modified CVM and Cryotop groups showed similar developmental capacities, and similar proportions of cells with intact spindles and chromosome configurations. The modified CVM protocol was superior to the original CVM protocol for developmental competence and intact spindle preservation. However, the CVM group showed a relatively higher number of apoptotic cells in blastocysts. Conclusion: Closed vitrification using the modified CVM protocol may be used as an alternative to the conventional open method, but strategies to decrease apoptosis in the blastomere need to be investigated.
Caulubacter is distinctive in the morphology and replication and ubiquitous in the biosphere, especially in every type of aquatic environment. In water and waste-water treatment processes, chlorine and chlorine compounds have been used as a main disinfectant throughout the world. Therefore, Caulobacter in the waters should be affected by chlorination of the waters. The objective of this study is to determine the effects of the disinfectants on Caulobacter cells and on the developmental processes of the cells. The Caulobacter swarmer cells were disinfected by chlorine at pH 7.0 minutes of the reaction with 2.0 mg/l of infected at pH 10.0. The swarmer cells treated with 2.0 or 4.0 mg/l of chlorine for 15 minutes lost their flagella and were observed by electron microscopy to be damaged on their cell surfaces, discharging some cellular materials. When the chlorinated swarmers and untreated control samples were recultivated in fresh PYE broth medium, the control swarmers multiplicated exponentially after one-hour lag phase, whereas the chlorinated swarmers extended the lag phase to about four hours. During the extended lag phase, the cells were proved by electron microscopy to be grown and be in predivisional step, but no swarmer cell was found. When the stalked cells were chlorinated, almost all the cells were observed to have their stalks broken and some cellular materials discharged. In those samples recultivated, many cells differentiated to possess an abnormally elongated stalk with several crossbands on it. This suggests that the chlorine-shocked Caulobacter cells can develope to abnormal morphology in water environments which they can survive and regrow in.
본 연구는 고양이의 불임 해결을 위한 방안의 하나로써 체외수정란을 생산할 목적으로 난자의 형태, 보존 및 번식주기별 난자의 체외발생에 미치는 영향을 조사하였다. 1. 신선 난소로부터 회수한 난구세포부착 및 나화 난자를 각각 배양했을 때 GV 및 MI으로의 체외성숙율은 74.3%와 25.7%와 및 28.6%와 11.4%,로써 난구세포 부착 난자가 나화 난자의 비해 높은 체외성숙율을 나타냈다. 2. 휴지기, 난포기 및 황체기 단계로 구분하여 채취한 난구세포 부착 난포란을 배양하였을 때 GV 및 MI기로의 체외성숙율은 각각 88.6%와 6.5%, 60.0%와 11.4%, 77.1%와 5.7%였다. 3. 신선 및 salt에 보존한 난소로부터 회수한 난구세포부착 및 나화 난자를 각각 배양했을 때 GV 및 MI으로의 체외성숙율은 74.3%와 25.7%, 37.1%와 11.4% 및 57.1%와 13.3%, 17.1%와 3.3%으로서 난구세포 부착 신선난자가 나화 또는 salt 보존 난자에 비해 높은 체외 성숙율을 나타냈다.
The ultrastructural characteristics of germ cell differentiations during spermatogenesis and mature sperm morphology in male $Atrina$ ($Servatrina$) $pectinata$ were evaluated via transmission electron microscopic observation. The accessory cells, which contained a large quantity of glycogen particles and lipid droplets in the cytoplasm, are assumed to be involved in nutrient supply for germ cell development. Morphologically, the sperm nucleus and acrosome of this species are ovoid and conical in shape, respectively. The acrosomal vesicle, which is formed by two kinds of electron-dense or lucent materials, appears from the base to the tip: a thick and slender elliptical line, which is composed of electron-dense opaque material, appears along the outer part (region) of the acrosomal vesicle from the base to the tip, whereas the inner part (region) of the acrosomal vesicle is composed of electron-lucent material in the acrosomal vesicle. Two special characteristics, which are found in the acrosomal vesicle of A. ($S$) $pectinata$ in Pinnidae (subclass Pteriomorphia), can be employed for phylogenetic and taxonomic analyses as a taxonomic key or a significant tool. The spermatozoa were approximately $45-50{\mu}m$ in length, including a sperm nucleus (about $1.43{\mu}m$ in length), an acrosome (about $0.51{\mu}m$ in length), and a tail flagellum (about $46-47{\mu}m$). The axoneme of the sperm tail evidences a 9+2 structure.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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