Bacillus subtilis에 존재하는 DEAD-box RNA helicase에 대한 유전자 상동성 검색을 통해 yqfR, yfmL, ydbR, deaD 의 4종류의 유전자를 확인하였고 이들 유전자 각각의 결손 돌연변이체를 제조하였다. 이들 돌연변이체들의 특성을 알아보기 위하여 LB 배양액을 사용하여 여러 온도에서의 생장 속도를 조사하였다. LB 배양액에서 $37^{\circ}C$의 생장 결과 ydbR 결손 균주가 다소 생장이 느려지나($T_d$=53 min) 다른(yqfR, yfmL, deaD) 결손 돌연변이체들은($T_d$=30-40 min) 결손이 없는 야생형 균주 CU1065와($T_d$=32 min) 유사하였다. 반면에 $22^{\circ}C$에서의 생장은 CU1065 ($T_d$=102 min)에 비해 yqfR ($T_d$=151 min), yfmL ($T_d$=214 min), ydbR ($T_d$=343 min) 결손 균주 순으로 생장속도가 느린 저온 민감성을 보인다. deaD의 $22^{\circ}C$에서의 생장 속도는 ($T_d$=109 min) CU1065와 ($T_d$=102 min) 매우 유사하여 저온 민감성을 보이지 않았다. 그리고 이들 유전자들의 이중, 삼중, 사중의 결손 균주들을 제조하였고, 여러 온도에서 ($42^{\circ}C$, $37^{\circ}C$, $22^{\circ}C$) LB 배양액을 사용하여 생장 속도를 측정 하였다. 다중 결손은 단일 결손보다 더 심한 저온 민감성을 보이며, 이중 결손의 경우, ydbR과 yfmL의 결손이 다른 조합의 결손보다 보다 큰 저온 민감성을 나타내었다 ($T_d$=984 min). 이러한 저온 민감성은 E. coli의 csdA 혹은 srmB 결손의 결과와 유사하며 리보솜 조립과 관련이 있는 생리적 기능으로 보인다.
RNA-binding proteins are involved in RNA metabolism and posttranscriptional regulation of various fundamental biological processes. The PUF family of RNA-binding proteins is highly conserved in eukaryotes, and its members regulate gene expression, mitochondrial biogenesis, and RNA processing. However, their biological functions in Aspergillus species remain mostly unknown in filamentous fungi. Here we have characterized the puf genes in the model organism Aspergillus nidulans. We generated deletion mutant strains for the five putative puf genes present in the A. nidulans genome and investigated their developmental phenotypes. Deletion of pufA or pufE affected fungal growth and asexual development. pufA mutants exhibited decreased production of asexual spores and reduced mRNA expression of genes regulating asexual development. The pufE deletion reduced colony growth, increased formation of asexual spores, and delayed production of sexual fruiting bodies. In addition, the absence of pufE reduced both sterigmatocystin production and the mRNA levels of genes in the sterigmatocystin cluster. Finally, pufE deletion mutants showed reduced trehalose production and lower resistance to thermal stress. Overall, these results demonstrate that PufA and PufE play roles in the development and sterigmatocystin metabolism in A. nidulans.
The acid-labile subunit (ALS) is known to interact with the IGF binding protein (IGFBP) in the presence of insulin-like growth factors (IGFs). Studies, however, indicate that ALS forms a doublet with IGFBP3, independent of IGFs. To characterize the structural domain required for the IGF-free ALS-IGFBP3 interaction, seven recombinant human IGFBP3 mutants were generated: three deletion mutants and four site-specific mutants that had altering N-terminal regions of IGFBP3. ALS and IGFBP3 mRNAs were co-injected into Xenopus oocytes, and their products were cross-linked and immunoprecipitated using antisera against ALS or IGFBP3. Among the deletion mutants, the mutant of D40 (deleted in 11-40th amino acids) exerted no effect in the interaction with ALS, while D60 (${\Delta}11$-60) demonstrated a moderate reduction. D88 (${\Delta}11$-88), however, showed a significant decrease. In the case of site-specific mutants, the mutation that alterated the IGF binding site (codons 56 or 80) exerted a significant reduction in the interaction, whereas codons 72 or 87 showed no significant change in the interaction with ALS. The stability of the ALS-IGFBP3 interaction was analyzed according to a time-dependent mode. Consistent with the binding study, mutants on the IGF binding sites (56 or 80) consistently show a weakness in the ALS-IGFBP3 interaction when compared to the mutants that covered the non-IGF binding sites (72 or 87). This study suggests that the N-terminal of IGFBP3, especially the IGF binding site, plays an important role in interacting with ALS as well as in stabilizing the dual complex, independent of IGFs.
6M-MuLV mutants containing deldtions around the putative packaging signal were constructed by using recombinant DNA technique and transfected into NIH/3T3 cell. 2 of 6 mutants can not be packaged into virions even in the presence of the wild type helper virus. The boundary between the packagible and the non-packagible genome is located around Pvu I site, 421 nucleotide downstream from the 5' end of M-MuLV genome. 10 base pair inverted repeat sequence (GAGUCCAAAA) which can make stem structure around Pvu Isite could be the putative packaging signal.
Recent identification and characterization of plant homeobox genes suggest that they play important roles in morphogenetic events. OSH1, one of the rice homeobox genes, is thought to be related to organ development since the changes of OSH1 gene expression cause morphological abnormalities of leaves by the ectopic expression and is expressed during early embryogenesis. In this experiment, the expression pattern of OSH1 was analyzedinmutants by in situ hybridization, and OSH1's potential as a molecular marker was explored. Region-specific expression of OSH1 during early embryogenesis shows that OSH1 could be used as a molecular marker for characterizing embryo mutants. Although several organless and shootless mutants showed normal expression of OSM1, some mutants exhibited abnormal expression patterns. In a minute organless cle1-1 embryo whose epidermis resembled morphologically the epithelium of scutellum, OSH1 expression was limited to a small basal region. This expression pattern suggests the gross deletion of the basal part. In a radicleless mutant, odm115, OSH1 expression was detected in a basal region instead of subcentral region of the ventral side. Together with other characteristics (short embryo and normal adventitious roots), odm115 was estimated to be derived from the deletion of basal region. Among five shootless mutants, three showed normal expression of OSH1. In the shl2 embryo, no expression of OSH1 was observed. In the shl1 embryo, however, OSH1 expression was extended to a dorsal side, indicating that SHL2 might be related to dorsoventral patterning. The above results of in situ hybrydization clearly indicate that OSH1 can be utilized as a marker for characterizing gene functions of embryo mutants.
Fusarium graminearum (teleomorph Gibberella zeae) is an important plant pathogen that causes head blight of major cereal crops such as wheat, barley, and rice, as well as causing ear and stalk rot on maize worldwide. Plant diseases caused by this fungus lead to severe yield losses and accumulation of harmful mycotoxins in infected cereals [1]. Fungi utilize spore production as a mean to rapidly avoid unfavorable environmental conditions and to amplify their population. Spores are produced sexually and asexually and their production is precisely controlled. Upstream developmental activators consist of fluffy genes have been known to orchestrate early induction of condiogenesis in a model filamentous fungus Aspergillus nidulans. To understand the molecular mechanisms underlying conidiogenesis in F. graminearum, we characterized functions of the F. graminearum fluffy gene homologs [2]. We found that FlbD is conserved regulatory function for conidiogenesis in both A. nidulans and F. graminearum among five fluffy gene homologs. flbD deletion abolished conidia and perithecia production, suggesting that FlbD have global roles in hyphal differentiation processes in F. graminearum. We further identified and functionally characterized the ortholog of AbaA, which is involved in differentiation from vegetative hyphae to conidia and known to be absent in F. graminearum [3]. Deletion of abaA did not affect vegetative growth, sexual development, or virulence, but conidium production was completely abolished and thin hyphae grew from abnormally shaped phialides in abaA deletion mutants. Overexpression of abaA resulted in pleiotropic defects such as impaired sexual and asexual development, retarded conidium germination, and reduced trichothecene production. AbaA localized to the nuclei of phialides and terminal cells of mature conidia. Successful interspecies complementation using A. nidulans AbaA and the conserved AbaA-WetA pathway demonstrated that the molecular mechanisms responsible for AbaA activity are conserved in F. graminearum as they are in A. nidulans. F. graminearum ortholog of Aspergillus nidulans wetA has been shown to be involved in conidiogenesis and conidium maturation [4]. Deletion of F. graminearum wetA did not alter mycelial growth, sexual development, or virulence, but the wetA deletion mutants produced longer conidia with fewer septa, and the conidia were sensitive to acute stresses, such as oxidative stress and heat stress. Furthermore, the survival rate of aged conidia from the F. graminearum wetA deletion mutants was reduced. The wetA deletion resulted in vigorous generation of single-celled conidia through autophagy-dependent microcycle conidiation, indicating that WetA functions to maintain conidia dormancy by suppressing microcycle conidiation in F. graminearum. In A. nidulans, FlbB physically interacts with FlbD and FlbE, and the resulting FlbB/FlbE and FlbB/FlbD complexes induce the expression of flbD and brlA, respectively. BrlA is an activator of the AbaA-WetA pathway. AbaA and WetA are required for phialide formation and conidia maturation, respectively [5]. In F. graminearum, the AbaA-WetA pathway is similar to that of A. nidulans, except a brlA ortholog does not exist. Amongst the fluffy genes, only fgflbD has a conserved role for regulation of the AbaA-WetA pathway.
In order to elucidate and characterize the signal transduction pathway(s) whereby yeast cells respond to mating pheromone, we have isolated mutants which are able to conjugate in the absence of the alpha-factor receptor. Sixty-one suppressors of a ste2-deletion mutation which also confer a ts conditional "start" arrest phenotypw have been subjected to genetic analysis. The mutants could be assigned to three complementation groups designated CDC70, CDC72 and CDC73, which are unlinked to each other as well as to the previously identified start genes. Quantitation of mating ability of the cdc70, cdc72 and cdc73 mutations in a ste2-deletion background gives levels ranging from 0.1% to 0.3% of wild type, depending on the allele and the gene. The results indicate that the signals from mating pheromone might be mediated by the CDC70, CDC72 and CDC73 products. products.
In this study HepG2 cells were used to express and purify HBV pol proteins. In order to facilitate purification of HBV pol proteins, HBV pol and its deletion mutants were fused to MBP (Maltose Binding Protein). As a result we successfully expressed and partially purified both wild type and mutant recombinant HBV pol proteins by using an amylose resin and anti-MBP antibody. In the case of wild type, the anti-MBP antibody detected three bands. One was full-length and the others were generated by proteolysis of the terminal domain region. The expressed MBP/POL proteins were localized both in the cytoplasm and in the perinuclear region. The purified proteins had polymerase activity toward an exogenous homo-polymer template. The MBP/POL protein also had DNA synthesis activity in vivo, since the MBP/POL expression construct was able to complement a HBV polymerase mutant in trans.
The aim of this study was to investigate the regulation of lantipeptide production in Streptomyces globisporus SP6C4, which produces the novel antifungal lantipeptides conprimycin and grisin, and to identify the role of cytochrome P450 (P450) in tis regulation. To investigate the regulation of lantipeptide production, we created gene deletion mutants, including ΔP450, ΔtsrD, ΔlanM, ΔP450ΔtsrD, and ΔP450ΔlanM. These mutants were characterized in terms of their morphology, sporulation, attachment, and antifungal activity against Fusarium oxysporum. The gene deletion mutants showed distinct characteristics compared to the wild-type strain. Among them, the ΔP450ΔlanM double mutant exhibited a recovery of antifungal activity against F. oxysporum, indicating that P450 plays a significant role in regulating lantipeptide production in S. globisporus SP6C4. Our findings highlight the significant role of P450 in the regulation of lantipeptide production and morphological processes in S. globisporus. The results suggest a potential link between P450-mediated metabolic pathways and the regulation of growth and secondary metabolism in SP6C4, thereby highlighting P450 as a putative target for the development of new antifungal agents.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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