The ultrastructural changes of adrenal chromaffin cells and ganglion cells in the adrenal gland of vacor-induced diabetic Mongolian gerbils were studied by electron microscopy. After one month of vacor-induced diabetes, some chromaffin cells were filled with dense bodies and large cytosomes with formy contents. Most of degenerating axon terminals were observed on chromaffin cells. A few macrophages were found among chromaffin cells at one month after induction. Several of these macrophages were filled with numerous phagosomes. After one month of vacor-induced diabetes, the ganglion cells showed increase in numbers of dense bodies and degenerating dendrites compared with the normal ganglion cells. Both electron dense and lucent types of degenerating axon terminals were found in interstitial space of the ganglion cells. Degenerating unmyelinated and myelinted axons contained dense and lamellar bodies. The satellite cells and macrophages with engulfed degenerated axon terminals were observed. After three months of vacor-induced diabetes, the unmyelinated and myelinated axons showed degenerative changes, whereas no structural changes could be demonstrated in adrenal ganglion and chromaffin cells. The satellite cells and macrophages containing partially digested debris were still commonly observed in the interstitial space of adrenal medulla. These results suggest that the degenerative changes occur in the adrenal ganglion cells as well as adrenal chromaffin cells of vacor-induced diabetic Mongolian gerbils.
Objective : Adrenal medullary chromaffin cells are known to release analgesic substances such as opioides and catecholamines. Transplantation of them is a novel method that challenges current approaches in treating chronic pain. The transplantation of xenogeneic chromaffin cells into the central nervous system(CNS) supply antinociception in animals. In this study, we investigated the analgesic effects of rat adrenal medullary chromaffin cells transplanted into the CNS of the mouse. To study the antinociceptive efficacy of transplanted chromaffin cells, the survival of rat adrenal medullary chromaffin cells transplanted into the CNS of mouse was determined. Methods : The adrenal medullary chromaffin cells isolated from rat were transplanted into the striatum of mouse. These cells were confirmed of the release of Met-enkephalin and Leu-enkephalin by HPLC, and immunoblots for tyrosine hydroxylase(TH). Two weeks after transplantation, we performed immunohistochemistry for TH to determine the survival of implanted cells and assessed pain sensitivity at the same time. Results : The isolated rat adrenal medullary chromaffin cells were positive for anti-TH antibody and released Met-enkephalin and Leu-enkephalin more than rat endothelial cells. Transplanted rat chromaffin cells were stained with anti-TH antibody in striatum of mouse after 2 weeks. Pain sensitivity was reduced on the chromaffin cell-transplanted mouse compared to endothelial cell-transplanted mouse by the hot plate test. Conclusion : These results suggest that the rat chromaffin cells were suitably transplanted into the CNS of mouse. This approach could be used as a therapy for reducing of chronic pain induced by cancer or neuronal injury.
부신수질 크로마핀세포는 아세틸콜린에 반응하여 카테콜아민을 분비한다. 카테콜아민이 분비되기 위하여는 세포외 칼슘이 절대적으로 필요한데 이는 막전압 의존성 칼슘통로를 통하여 칼슘이 세포 속으로 유입되어야 분비기전이 시작됨을 시사한다. 부신수질 크로마핀 세포를 단일세포로 분리한 후 패치클람프 테크닉을 적용하여 여러 종류의 칼슘통로가 존재한다는 것이 알려져 있으나 아직 종이 달라짐에 따라 다른 칼슘통로가 존재하는 지 여부가 확실하지 않다. 그러므로 본 연구에서는 흰쥐 부신수질 크로마핀 세포를 대상으로 하여 단일 세포 패치클람프 테크닉을 적용하여 이 세포에 존재하는 다양한 칼슘통로의 존재를 확인하고자 하였다. L형 칼슘통로 억제제인 nicardipine, N형 칼슘통로 억제제인 $\omega$-CgTx GVIA, P형 칼슘통로 억제제인 $\omega$-AgaTx IVA를 사용하여 L형, N형, P형 칼슘통로가 흰쥐 부신수질 세포에 존재함을 확인하였고 개개의 칼슘통로가 전체 칼슘전류에 기여하는 정도는 L형 >N형> P형이었다.
It is well known that chromaffin cells of adrenal medulla secrete catecholamine in response to sympathetic nerve activation and the influx of $Ca^{2+}$ through the voltage dependent $Ca^{2+}$ channels (VDCC) in the cell membrane do a major role in this secretory process. In this study, we explored the effect of divalent cations on VDCC of rat chromaffin cells. Rat (Sprague-Dawley rat, 150-250 gm) chromaffin cells were isolated and cultured. Standard giga seal, whole cell recording techniques were employed to study $Ca^{2+}$ current with external and internal solutions that could effectively isolate VDCC currents $(NMG\;in\;external\;and\;TEA\;and\;Cs^{2+}\;in\;internal\;solution)$. The voltage dependence and the inactivation time course of VDCC in our cells were identical to those of bovine chromaffin cells. A persistent inward current was first activated by depolarizing step pulse from the holding potential (H.P.) of -80 mV to -40 mV, increased to maximum amplitude at around +10 mV, and became smaller with progressively higher depolarizing pulses to reverse at around +60 mV. The inactivation time constant $(\tau)$, fitted from the long duration test potential (2 sec) was $1295.2{\pm}126.8$ msec $(n=20,\;1\;day\;of\;culture,\;mean\;{\pm}S.E.M.)$ and the kinetic parameters were not altered along the culture duration. Nicardipine $(10\;{\mu}M)$ blocked the current almost completely. Among treated divalent cations such as $Cd^{2+},\;Co^{2+},\;Ni^{2+},\;Zn^{2+}\;and\;,Mn^{2+},\;Cd^{2+}$ was the most potent blocker on VDCC. When the depolarizing step pulse from -80 mV to 10 mV was applied, the equilibrium dissociation constant $(K_d)$ of $Cd^{2+}\;was\;39\;{\mu}M,\;K_d\;of\;Co^{2+}\;was\;100\;{\mu}M\;and\;K_d\;of\;Ni^{2+}];was];780{\mu}M.$ The principal findings of this study are as follows. First, the majority of $Ca^{2+}$ channels in rat chromaffin cells are well classified to L-type $Ca^{2+}$ channel in the view of kinetics and pharmacology. Second, all divalent cations tested could block the $Ca^{2+}$ current and the most potent blocker among the tested was $Cd^{2+}$.
Adrenal chromaffin cells secrete catecholamine in response to acetylcholine. The secretory response has absolute requirement for extracellular calcium, indicating that $Ca^{2+}$ influx through voltage operated $Ca^{2+}$ channels (VOCC) is the primary trigger of the secretion cascade. Although the existence of various types of $Ca^{2+}$ channels has been explore using patch clamp techique in adrenal chromaffin cells, the contribution of different types of $Ca^{2+}$ channels to catecholamine secretion remains to be establised. (omitted)omitted)
대한약학회 2003년도 Proceedings of the Convention of the Pharmaceutical Society of Korea Vol.1
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pp.126.1-126.1
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2003
Adrenal medullary chromaffin cells secrete catecholamines in response to nicotinic agonists (Douglas & Rubin. 1961; Wakade, 1981; Amy & Kirshner, 1982). Several types of voltage-dependent Ca2+ channels are present on adrenal chromaffin cells, but the role of each type in the catecholamine secretion process remains controversial. (omitted)
앞의 연구에서 우리는 진세노사이드가 신경세포에 존재하는 high-threshold voltage-dependent $Ca^{2+}$ channel을 억제한다는 것을 발표하였다. 그러나, 이러한 연구는 진세노사이드가 여러 칼슘 채널subtypes중 어느 특정 칼슘 채널만을 선택적으로 조절한다는 것을 보여주지는 않았다. 따라서 이 연구에서 우리는 여러 칼슘 채널subtypes에 선택적으로 작용하는 약물 혹은 toxins을 이용하여 진세노사이드가 어느 종류의 칼슘 채널 subtypes를 억제하는가를 bovine chromaffin cell을 이용하여 연구하였다. 사용한 물질은nimodipine(L-type 칼슘 채널 길항제), $\omega$-conotoxin GVIA (N-type $Ca^{2+}$ channel 길항제), $\omega$-agatoxin IVA(P-type 칼슘 채널 길항제)이었다. 연구 결과 진세노사이드는 bovine chromaffin 세포에 존재하는 high-threshold 칼슘 current을 투여 농도별로 억제하였다. $IC_{50}$/은 약 120 $\mu$g/ml인 것으로 나타났다. nimodipine은 진세노사이드에 의한 칼슘 currents억제 작용에 영향을 미치지 않은 것으로 나타났다. 그러나, $\omega$-conotoxin GVIA, $\omega$-agatoxin IVA 및 nimodipine+$\omega$-conotoxin GVIA+$\omega$-agatoxin IVA을 처리한 세포에서는 진세노사이드에 의한 칼슘 currents억제 작용이 현저하게 줄어 들었다. 이러한 연구 결과들은 진세노사이드가 L-type 칼슘 채널은 억제하지 않고, 주로 N-, p-, 및 Q-type칼슘 채널을 억제한다는 것을 보여주고 있다
The conductance change evoked by step depolarization was studied in primarily cultured rat adrenal chromaffin cells using patch-clamp and capacitance measurement techniques. When we applied a depolarizing pulse to a chromaffin cell, the inward calcium current was followed by an outward current and depolarization-induced exocytosis was accompanied by an increase in conductance trace. The slow inward tail current which has the same time course as the conductance change was observed in current recording. The activation of slow tail current was calcium-dependent. Reversal potentials agreed with Nernst equation assuming relative permeability of $Cs^+\;to\;K^+$ is 0.095. The outward current and tail current were blocked by apamin (200 nM) and d-tubocurarine (2 mM). The conductance change was blocked by apamin and did not affect membrane capacitance recording. We confirmed that conductance change after depolarization comes from the activation of the SK channel and can be blocked by application of the SK channel blockers. Consequently, it is necessary to consider blocking of the SK channel during membrane capacitance recording.
The expression of proenkephalin (proENK) mRNA and Met-enkephalin (ME) secretion in C6 rat glioma cells and bovine adrenal medullary chromaffin (BAMC) cells were elucidated in the present study. The levels of proENK mRNA and ME secreted into the media in BAMC cells were measured in the presence of cycloheximide and 12-tetrade-canoylphorbol-13-acetate (TPA). Cycloheximide (20 nM) abolished the induction of proENK mRNA expression, protein synthesis and ME secretion by TPA (1nM), indicating that de novo protein synthesis was necessary for proENK gene expression and ME secretion.
Long-term treatment of cultured bovine adrenal medullary chromaffin (BAMC) cells with arachidonic acid $(100\;{\mu}M),$ angiotesnin II (100 nM), prostaglandin $E_2\;(PGE_2;\;10\;{\mu}M),$ veratridine $(2\;{\mu}M)$ or KCl (55 mM) for 24 hrs increased both norepinephrine and epinephrine levels in the supernatant. Pretreatment with staurosporine (10 nM), a protein kinase C (PKC) inhibitor, completely blocked increases of norepinephrine and epinephrine secretion induced by arachidonic acid, angiotensin II, $PGE_2,$ veratridine or KCl. In addition, K252a, another PKC inhibitor whose structure is similar to that of staurosporine, effectively attenuated both norepinephrine and epinephrine secretion induced by arachidonic acid. However, K252a did not affect the catecholamine secretion induced by angiotensin II, $PGE_2,$ veratridine or KCl. Our results suggest that staurosporine may inhibit long-term catecholamine secretion induced by various secretagogues in a mechanism other than inhibiting PKC signaling. Furthermore, long-term secretion of catecholamines induced by arachidonic acid may be dependent on PKC pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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