To investigate the effect of hemolymph of silkworm larvae on the multiplication of Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV) in BmN-4 cells, BmN-4 cells were infected with BmNPV, which were sequentially Heated with the hemolymph exracted from B. mori larvae. When the culture media TC-100 containing 3% fetal bovine serum was mixed with 10% hemolymph heated at 65$^{\circ}C$ for 30 minutes, the released polyhedra by multiplication of BmNPV in BmN-4 cells were increased more than those of non-treated. However, multiplication of BmNPV in BmN-4 cells treated with non-heated hemolymph was not effective, since non-heated hemolymph was toxic for the cell growth. The result of plaque assay showed that plaque forming units in BmN-4 cells treated with heated hemolymph are significantly increased, suggesting that efficiency of multiplication of BmNPV in BmN-4 cells is due to increase not of cell growth but of infectivity of BmNPV.
Bombyx mori nuclear polyhedrosis virus (BmNPV) was successfully multiplied in the nuclear of BmN4 cells cultured with insect Grace's medium. By electron microscopic observation, the virons had a single nucleocapsid in an envelope. Polyhedral protein synthesis of BmNPV in BmN4 cells was detected at 18 hr p.i. and polyhedral protein was a singlepolypeptide with a M.W of 30 kd. At 48 hr p.i. polyhedra formation was observed by inverted mociroscope and electron microscope. Genome analysis of BmNPV by restriction endonucleases was not revealed the difference between virus produced in vivo and that in vitro.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.4
no.1
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pp.51-56
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2002
A recombinant transfer vector pBacSCF was constructed by inserting huamn stem cell factor (hSCF) cDNA into plasmid pBacPAK8. BmN cells were co-transfected with modified Bombyx mori, nuclear polyhedrosis virus (BmBacPAK) DNA and the recmbinant transfer vector to construct a recombinant baculovirus containing hSCE gene. DNA dot blotting and RNA dot blotting demonstrated that the hSCE gene was contained in the recombinant virus and transcribed. The recombinant baculovirus was infectious to BmN cells and to silkworm. SDS-PAGE analysis showed a specific band of expressed product in the extract of infected cells and in the heamolymph of infected larvae. Bioactivity of the recombinant hSCE was determined with W-1 cell line and MTT colorimetric method in synergy with interlukin-3 (IL-3). These results revealed that the hSCF gene was over-expressed in cultured cells and lavae of silkworm.
In order to express the FLP recombinase in B. mori cultured cell line, BmN-4, transient expression system using a heat shock protein gene (hsp70) promoter of Dorosophilla melnogaster was constructed. This vector was designated as pHsSV. Activity strength of the hsp70 promoter was compared with that of immediate early gene (IE-1) and polyhedrin gene of BmNPV employing the E. coli $\beta$-galactosidase gene as a reporter gene. The result showed that the pHs $\beta$-gal plasmid vector expressed the $\beta$-galactosidase at 2nd and 3rd day after the transfer of plasmid DNA into BmN-4 cells, which was similar to that of pIE1 $\beta$-gal vector, but different from that of a recombinant virus, vBm $\beta$-gal. For the construction of FLP recombinase transient expression vector, the FLP recombinase gene was cloned by polymerase chain reaction technique. To express the FLP recombinase, this gene was inserted into pHsSV plasmid vector, under the control of the hsp70 promotor, and tranfected in BmN-4 cells. The expressed FLP recombinase was estimated at 44kDa on a 12.5% SDS-PAGE.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.7
no.2
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pp.197-201
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2003
The recombinant plasmids harboring a heterologous gene coding mouse endostatin were transfected and expressed stably in Trichoplusia ni Tn 5B1-4 cells and Bombyx mori BmN cells, respectively. Recombinant endostatin expressed in the stably transformed Tn 5B1-4 and BmN cells was secreted into the medium. BmN cells are relatively lower in maximum cell growth and recombinant endostatin production than Tn 5B 1-4 cells. Recombinant endostatin was also purified to homogeneity using a simple one-step ${Ni^2+}$ affinity fractionation method. Purified recombinant endostatin inhibited endothelial cell proliferation in a dose-dependent manner. The concentration at half-maximum inhibition $({ED_50})$ for recombinant endostatin was approximately 0.35 ${\mu}g$/ml.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.15
no.1
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pp.35-38
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2007
In this study, ORF 46 of Bombyx mod nucleopolyhedrovirus(Bm46) fused with EGFP was expressed in Bombyx mod cell lines, larvae and pupae by BmNPV Bacmid system. Bm46 and EGFP were cloned into donor plasmid pFastBacHTb, which was transformed to competent DH10B cells containing helper and BmNPV bacmid by site-specific transposition. Recombinant bacmid was used to transfected BmN-4 cells to produce the recombinant baculovirus vBm-Bm46-EGFP. Recombination virus was injected into silkworm larvae and pupae. The expression of the fusion protein was monitored by examining green fluorescence using a fluorescent microscope. Intense fluorescence in cells and silkworm was observed at 4 days post-infection, indicating the Bm46-EGFP fusion gene was expressed successfully.
International Journal of Industrial Entomology and Biomaterials
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v.1
no.1
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pp.53-58
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2000
A cDNA encoding the luciferase of firefly Luciola lateralis was cloned downstream from the polyhedrin gene promoter of Bombyx mori nucleopolyhedrovirus and expressed in B. mori cells (BmN-4). The coding soquence for luciferase was inserted into pBmKSK2 rectors) which was reconstructed from the polyhedrin-based transfer vector pBmKSKl by modifying cloning sites. Recombinant virus, BmK2-LUCDF, containing the luciferase gene was selected and purified in BmN-4 cells. The emission of luminescence by luciferase was only detected in BmK2-LUCDF-infected cell extracts. This result indicates that the cloned new luciferase gene of firefly L. lateralis can be expressed efficiently in baculovirus expression system and used as a useful reporter gene.
To investigate the molecular biological marker in insect cells, BmN-4 and Sf-0 cells were analysed by SDS-PAGE and random amplification of polymorphic DNA. The results showed that the patterns of total cell protein and random amplification of polymorphic DNA were distinguished between BmN-4 and Sf-9 cells, suggesting that the unique major bands were useful as molecular biological marker in BmN-4 and Sf-9 cells.
It has been reported that bone marrow (BM)-side population (SP) cells, with hematopoietic stem cell activity, can transdifferentiate into cardiomyocytes and contribute to myocardial repair. However, this has been questioned by recent studies showing that hematopoietic stem cells (HSCs) adopt a hematopoietic cell lineage in the ischemic myocardium. The present study was designed to investigate whether BM-SP cells can in fact transdifferentiate into functional cardiomyocytes. Phenotypically, BM-SP cells were $19.59%{\pm}9.00\;CD14^+$, $8.22%{\pm}2.72\;CD34^+$, $92.93%{\pm}2.68\;CD44^+$, $91.86%{\pm}4.07\;CD45^+$, $28.48%{\pm}2.24\;c-kit^+$, $71.09%{\pm}3.67\;Sca-1^+$. Expression of endothelial cell markers (CD31, Flk-1, Tie-2 and VEGF-A) was higher in BM-SP cells than whole BM cells. After five days of co-culture with neonatal cardiomyocytes, $7.2%{\pm}1.2$ of the BM-SP cells expressed sarcomeric ${\alpha}$-actinin as measured by flow cytometry. Moreover, BM-SP cells co-cultured on neonatal cardiomyocytes fixed to inhibit cell fusion also expressed sarcomeric ${\alpha}$-actinin. The co-cultured BM-SP cells showed neonatal cardiomyocyte-like action potentials of relatively long duration and shallow resting membrane potential. They also generated calcium transients with amplitude and duration similar to those of neonatal cardiomyocytes. These results show that BM-SP cells are capable of functional cardiomyogenic differentiation when co-cultured with neonatal cardiomyocytes.
In this paper, four conducting polymers (poly[(N-butyl-phenothiazine)-sulfide] (PBPS), poly[(N-hexyl-phenothiazine)-sulfide] (PHPS), poly[(N-decyl-phenothiazine)-sulfide] (PDPS), and poly[(N-(2-ethylhexyl)-phenothiazine)-sulfide] (PEHPS)) were synthesized with a high temperature and high pressure reaction. The structures of synthesized polymers were confirmed by $^1H-NMR$ and characterized by UV-Vis, cyclic voltammetry, and GPC. From the UV-Vis absorption spectra, the ${\lambda}_{max}$ values of PBPS, PHPS, PDPS, and PEHPS were 338, 341, 340, and 334 nm, respectively and their optical band gaps were 3.11, 3.13, 3.16, and 3.05 eV, respectively. To evaluate the feasible applicability as a photovoltaic cell, the devices composed of for example, ITO/PEDOT : PSS/polymer (PBPS, PDPS) : $PC_{71}BM$ (1 : 3, w/w)/$BaF_2$/Ba/Al were fabricated using the blends of the PBPS and PDPS as a donor, and $PC_{71}BM$ as an acceptor. Then, the power conversion efficiencies (PCE) of devices were estimated as 0.076% of PBPS and 0.136% of PDPS by solar simulator.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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