$^{18}F$-labeling reaction of bioactive molecule via click chemistry is widely used to produce $^{18}F$-labeled radiotracer in the field of radiopharmaceutical science and molecular imaging. In particular, bioorthogonal strain-promoted alkyne-azide cycloaddition (SPAAC) reaction has received much attention as an alternative ligation method for radiolabeling bioactive molecules such as peptides, DNA, proteins as well as nanoparticles. Moreover, SPAAC based pretargeting method could provide tumor images successfully on positron emission tomography system using nanoparticle such as mesoporous silica nanoparticles.
Labeling of a protein with a specific dye or tag at defined positions is a critical step in tracing the subtle behavior of the protein and assessing its cellular function. Over the last decade, many strategies have been developed to achieve selective labeling of proteins in living cells. In particular, the site-specific unnatural amino acid (UAA) incorporation technique has gained increasing attention since it enables attachment of various organic probes to a specific position of a protein in a more precise way. In this review, we describe how the UAA incorporation technique has expanded our ability to achieve site-specific labeling and visualization of target proteins for functional analyses in live cells.
This article provides an efficient 18F-labeling protocol based on a rapid condensation reaction between 2-cyanobenzothiazole (CBT) and N-terminal cysteine-containing biomolecules. The 18F-labeled CBT (18F-1) was prepared by radiofluorination of the tosylated precursor 4 with 18-crown-6/K+/[18F]F- complex. Using the purified 18F-1, 18F-labeled peptide (18F-7) and protein (18F-8) could be synthesized efficiently under mild conditions. This strategy would provide a convenient approach for rapid and site-specific 18F-labeling of various peptides and proteins for in vivo imaging and biomedical applications.
Herein we report an efficient radiolabeling method based on a rapid condensation reaction between N-terminal cysteine and 2-cyanobenzothiazole (CBT). Radioiodination of 2-cyano-6-hydroxybenzothiazole 2 was carried out using chloramine-T to give $^{125}I$-labeled CBT ([$^{125}I$]1) with a high radiochemical yield ($90{\pm}6%$ isolated yield, n=3) and radiochemical purity (>99%). To evaluate the radiolabeling efficiency of $^{125}I$-labeled CBT, model compounds, L-cysteine and N-terminal cysteine conjugated cRGD peptide were reacted with [$^{125}I$]1 under mild conditions. The radiolabeling reactions rapidly provided the $^{125}I$-labeled products [$^{125}I$]5 and [$^{125}I$]6 with excellent radiochemical yields and radiochemical purity. Therefore, we demonstrate that [$^{125}I$]1 will be a useful prosthetic group for radioactive iodine labeling of N-terminal cysteine bearing biomolecules.
Pretargeting is a two-component strategy often used for tumor targeting to enhance the tumor-to-background ratio in cancer diagnosis as well as therapy. In the multistep strategy, the highly specific unlabeled monoclonal antibodies (mAbs) with the reactive site is allowed to get localized at tumor site first, and then small and fastclearing radiolabeled chelator with counter reactive site is administered which covalently attaches to mAbs via inverse electron demand Diels-Alder reaction (IEDDA). The catalyst-free IEDDA cycloaddition reaction between 1,2,4,5-tetrazines and strained alkene dienophiles aid with properties like selective bioconjugation, swift and high yielding bioorthogonal reactions are emergent in the development of radiopharmaceutical. Due to its fast pharmacokinetics, the in vivo formed radioimmunoconjugates can be imaged at earlier time points by short-lived radionuclides like 18F and 68Ga; it can also reduce radiation damage to the normal cells. Ultimately, this review elucidates the updated status of pretargeting based on antibodies and IEDDA for tumor diagnosis (PET and SPECT) and therapy.
Biotin-S-S-Phosphine was designed and synthesized as a potential tool for a proteomic study of O-GlcNAcmodified proteins. This reagent features a disulfide linker between a triarylphosphine moiety, which allows selective conjugation to azide-containing proteins, and a biotin moiety that can allow easy isolation through its strong affinity toward avidin-coated solid beads. The disulfide linkage within this reagent can allow the easy release of the bound molecules of interest, which is difficult to achieve when a biotin:avidin pair is used alone, by reducing the disulfide bond of the reagent with DTT. Preliminary in vitro biological assays with azidelabeled and unlabeled cell lysates and a pure protein Nup62 showed that the Biotin-S-S-Phosphine reagent is highly reactive toward the free thiol groups of proteins. When a molecular tool with a disulfide linker is applied to the enrichment of the molecules of interest from other species, it is important to block the free-thiols of the sample using exhaustive alkylation prior to the Staudinger ligation reactions to restore the bioorthogonal nature of this reaction.
그람음성균의 외막은 수많은 생물물리학적 및 생화학적 과정이 작용하여 생존력을 유지하도록 설계되어 있는 세포환경의 가장 바깥 층이다. 세포공학의 발전으로 인해 박테리아의 막 환경을 변경하는 등 유전정보를 원하는 대로 조작할 수 있게 되었고 이는 박테리아를 특정 목적에 적용시킬 수 있게 하였다. 그중 기능성 분자를 박테리아 외막에 표지하는 세포 표면공학은 숙주세포가 특정 외부물질이나 자극에 반응하도록 유도하는 전략 중 하나이다. 기능성 펩타이드 또는 단백질을 세포 표면에 표지하기 위한 방법으로 막 고정 모티프를 융합한 후 세포 내에서 발현하는 방법이 일반적으로 사용되고 있지만 이는 박테리아 시스템에서 발현할 수 없는 외인성 단백질이나 크기가 큰 단백질에는 적용할 수 없다는 한계점이 있다. 박테리아 외막의 구성요소에 자연적으로 존재하는 반응성 그룹과 기능성 물질을 화학접합하는 방법도 있으나 필수 구성 요소의 비특이적 변형으로 인해 세포의 생장이 저해되는 경우가 많다. 본 연구에서는 비천연아미노산 또는 자가결합 도메인을 사용해 대장균의 세포 표면을 부위 특이적으로 형광 표지하는 두 가지의 접근법을 수행하였다. 첫 번째 접근법은 화학선택적 반응성을 지닌 비천연아미노산이 삽입된 펩타이드를 대장균 표면에 발현하여 위치 특이적으로 형광염료를 접합시키는 방법이다. 두 번째 접근법은 자가결합능력을 지닌 이종 이량체 코일-코일에서 유래된 α-나선 도메인을 대장균 외막에 발현하고 녹색 형광 단백질이 융합된 상보적인 α-나선 도메인을 막 표면에 특이적으로 고정하는 방법이다. 제시된 방법들은 위치와 시간이 제어된 방식으로 박테리아 외막에 새로운 기능을 부여하는 방법론으로서 유용하다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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