Bacterial cell-to-cell communication, termed quorum sensing (QS), leads to coordinated group behavior in a cell-density-dependent fashion and controls a variety of physiological processes including virulence gene expression. The repressor of the lsr operon, LsrR, is the only known regulator of LuxS/AI-2-mediated QS in Salmonella. Although lack of lsrR did not result in noticeable differences in Salmonella survival, the down-regulation of QS as a result of lsrR overexpression decreased Salmonella survival within macrophages. We found that impaired growth of Salmonella overexpressing lsrR within macrophages was due largely to its hypersensitivity to NADPH-dependent oxidative stress. This, in turn, was a result of decreased expression of genes involved in the oxidative stress response, such as sodA, sodCI, and sodCII, when lsrR was overexpressed. These results suggest that down-regulation of QS by excess LsrR can lower Salmonella virulence by hampering Salmonella evasion from oxidative killing within macrophages.
Ahn Sun Hee;Lee Eun Mi;Kim Dong Gyun;Hong Gyoung Eun;Park Eun Mi;Kong In Soo
Journal of Life Science
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v.16
no.1
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pp.131-135
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2006
Oligopeptide is known to be an essential nitrogen nutrient for bacterial growth. Oligopeptide can be transported into cytoplasm by a specific transport system, Opp system. Opp system is composed of five proteins, which are transcribed by an operon. These are responsible for oligopeptide binding protein (OppA), permease (OppB and OppC) and energy generation system (OppD and OppF), respectively. Previously, we isolated the opp operon from Vibrio fluvialis and constructed the oppA mutant by allelic exchange method. In this study, we investigated the growth pattern and biofilm production under the different growth condition. When the cells were cultivated using brain heart infusion(BHI) medium, the wild type was faster than the mutant in growth during the exponential phase. However, it showed that the growth pattern of two strains in M9 medium is very similar. The growth of wild type showed better than that of the mutant grown at pH 8. At pH 7, there was no an obvious difference in growth. After 5 mM $H_2O_2$ was treated to the cells $(OD_{600}=1.2)$, the cell survival was examined. The oppA mutation did not affect in survivability. In the presence of $10{\mu}g/ml$ polymyxin B, the biofilm production of the oppA mutant was higher than that of the wild type.
Escherichia coli O157:H7 is one of the most common foodborne pathogens responsible for outbreaks of hemorrhagic colitis, which can lead to the life-threatening hemolytic-uremic syndrome. In this study, we identified phytochemicals that specifically inhibit the expression of LEE operon in E. coli O157:H7. Among phytochemicals, diosmin decreased the adherence of E. coli O157:H7 towards Caco-2 cells in vitro (p<0.01) and its biofilm formation activity (p<0.05). Quantitative RT-PCR analysis revealed that the transcripts of Ler-regulated genes and genes related to curli production were significantly reduced in the presence of diosmin. However, diosmin does not affect bacterial viability, indicating that the resistance rate to diosmin was remarkably low. Overall, these results provide significant insights into the development of a novel anti-infective agent that is different from conventional antibiotics.
Kim, Minjeong;Lim, Sangyong;Kim, Dongho;Choy, Hyon E.;Ryu, Sangryeol
Molecules and Cells
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v.28
no.4
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pp.389-395
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2009
We previously observed that the transcription of some flagellar genes decreased in Salmonella Typhimurium tdcA mutant, which is a gene encoding the transcriptional activator of the tdc operon. Since flagella-mediated bacterial motility accelerates the invasion of Salmonella, we have examined the effect of tdcA mutation on the invasive ability as well as the flagellar biosynthesis in S. Typhimurium. A tdcA mutation caused defects in motility and formation of flagellin protein, FliC in S. Typhimurium. Invasion assays in the presence of a centrifugal force confirmed that the defect of flagellum synthesis decreases the ability of Salmonella to invade into cultured epithelial cells. In addition, we also found that the expression of Salmonella pathogenicity island 1 (SPI1) genes required for Salmonella invasion was down-regulated in the tdcA mutant because of the decreased expression of fliZ, a positive regulator of SPI1 transcriptional activator, hilA. Finally, the virulence of a S. Typhimurium tdcA mutant was attenuated compared to a wild type when administered orally. This study implies the role of tdcA in the invasion process of S. Typhimurium.
The genes involved in riboflavin synthesis (ribI, II, III, and IV) were found immediately downstream of luxG in the lux operon from Photobacterium species. The single stranded DNA containing the intergenic region of lux genes and rib genes from Photobacterium phosphoreum was fully protected by P. phosphoreum mRNA from the S1 nuclease mapping assay suggesting that a transcriptional terminator was not present in the region. In addition, the levels of riboflavin synthase activity in P. phosphoreum was increased during the development of bacterial bioluminescence in the same fashion as the luciferase and fatty acid reductase activities. Insertion of the Photobacterium leiognathi DNA extending from luxB to ribII, between a strong lux promoter and a reporter gene (chloramphenicol acetyltransferase, CAT) and transferred by conjugation into P. leiognathi, did not affect expression of reporter gene. Moreover the CAT gene was not expressed in an analogous construct missing the lux promoter indicating that a promoter was not present in this region. Based on the data here, it can be concluded that the lux genes and rib genes in Photobacterium species are under common regulation.
Copper-containing compounds are introduced into the environment through agricultural chemicals, mining, and metal industries and cause severe detrimental effects on ecosystems. Certain microorganisms exposed to these stressors exhibit molecular mechanisms to maintain intracellular copper homeostasis and avoid toxicity. We have previously reported that the soil bacterial isolate Achromobacter sp. AO22 is multi-heavy metal tolerant and exhibits a mer operon associated with a Tn21 type transposon. The present study reports that AO22 also hosts a unique cop locus encoding copper homeostasis determinants. The putative cop genes were amplified from the strain AO22 using degenerate primers based on reported cop and pco sequences, and a constructed 10,552 base pair contig (GenBank Accession No. GU929214). BLAST analyses of the sequence revealed a unique cop locus of 10 complete open reading frames, designated copSRABGOFCDK, with unusual separation of copCD from copAB. The promoter areas exhibit two putative cop boxes, and copRS appear to be transcribed divergently from other genes. The putative protein CopA may be a copper oxidase involved in export to the periplasm, CopB is likely extracytoplasmic, CopC may be periplasmic, CopD is cytoplasmic/inner membrane, CopF is a P-type ATPase, and CopG, CopO, and CopK are likely copper chaperones. CopA, B, C, and D exhibit several potential copper ligands and CopS and CopR exhibit features of two-component regulatory systems. Sequences flanking indicate the AO22 cop locus may be present within a genomic island. Achromobacter sp. strain AO22 is thus an ideal candidate for understanding copper homeostasis mechanisms and exploiting them for copper biosensor or biosorption systems.
Wang, Xiaochen;Yang, Hongyu;Zhou, Wei;Liu, Jun;Xu, Ning
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.29
no.8
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pp.1288-1298
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2019
Bacterial ATP synthases drive ATP synthesis by a rotary mechanism, and play a vital role in physiology and cell metabolism. Corynebacterium glutamicum is well known as an industrial workhorse for amino acid production, and its ATP synthase operon contains eight structural genes and two adjacent genes, cg1360 and cg1361. So far, the physiological functions of Cg1360 (GenBank CAF19908) and Cg1361 (GenBank CAF19909) remain unclear. Here, we showed that Cg1360 was a hydrophobic protein with four transmembrane helices (TMHs), while no TMH was found in Cg1361. Deletion of cg1360, but not cg1361, led to significantly reduced cell growth using glucose and acetic acid as carbon sources, reduced F1 portions in the membrane, reduced ATP-driven proton-pumping activity and ATPase activity, suggesting that Cg1360 plays an important role in ATP synthase function. The intracellular ATP concentration in the ${\Delta}cg1360$ mutant was decreased to 72% of the wild type, while the NADH and NADPH levels in the ${\Delta}cg1360$ mutant were increased by 29% and 26%, respectively. However, the ${\Delta}cg1361$ mutant exhibited comparable intracellular ATP, NADH and NADPH levels with the wild-type strain. Moreover, the effect of cg1360 deletion on L-valine production was examined in the L-valine-producing V-10 strain. The final production of L-valine in the $V-10-{\Delta}cg1360$ mutant reached $9.2{\pm}0.3g/l$ in shake flasks, which was 14% higher than that of the V-10 strain. Thus, Cg1360 can be used as an effective engineering target by altering energy metabolism for the enhancement of amino acid production in C. glutamicum.
SOS response is a conserved response to DNA damage in prokaryotes and is negatively regulated by LexA protein, which recognizes specifically an "SOS-box" motif present in the promoter region of SOS genes. Myxococcus xanthus DK1622 possesses a lexA gene, and while the deletion of lexA had no significant effect on either bacterial morphology, UV-C resistance, or sporulation, it did delay growth. UV-C radiation resulted in 651 upregulated genes in M. xanthus, including the typical SOS genes lexA, recA, uvrA, recN and so on, mostly enriched in the pathways of DNA replication and repair, secondary metabolism, and signal transduction. The UV-irradiated lexA mutant also showed the induced expression of SOS genes and these SOS genes enriched into a similar pathway profile to that of wild-type strain. Without irradiation treatment, the absence of LexA enhanced the expression of 122 genes that were not enriched in any pathway. Further analysis of the promoter sequence revealed that in the 122 genes, only the promoters of recA2, lexA and an operon composed of three genes (pafB, pafC and cyaA) had SOS box sequence to which the LexA protein is bound directly. These results update our current understanding of SOS response in M. xanthus and show that UV induces more genes involved in secondary metabolism and signal transduction in addition to DNA replication and repair; and while the canonical LexA-dependent regulation on SOS response has shrunk, only 5 SOS genes are directly repressed by LexA.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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