Autophagy-related protein 8 (Atg8) is an essential component of autophagy formation and encystment of cystforming parasites, and some protozoa, such as, Acanthamoeba, Entamoeba, and Dictyostelium, have been reported to possess a type of Atg8. In this study, an isoform of Atg8 was identified and characterized in Acanthamoeba castellanii (AcAtg8b). AcAtg8b protein was found to encode 132 amino acids and to be longer than AcAtg8 protein, which encoded 117 amino acids. Real-time PCR analysis showed high expression levels of AcAtg8b and AcAtg8 during encystation. Fluorescence microscopy demonstrated that AcAtg8b is involved in the formation of the autophagosomal membrane. Chemically synthesized siRNA against AcAtg8b reduced the encystation efficiency of Acanthamoeba, confirming that AcAtg8b, like AcAtg8, is an essential component of cyst formation in Acanthamoeba. Our findings suggest that Acanthamoeba has doubled the number of Atg8 gene copies to ensure the successful encystation for survival when 1 copy is lost. These 2 types of Atg8 identified in Acanthamoeba provide important information regarding autophagy formation, encystation mechanism, and survival of primitive, cyst-forming protozoan parasites.
Autophagy, an evolutionarily conserved cellular degradation pathway of the lysosome, is associated with many physiological and pathological processes. The hallmark of autophagy is the formation of the autophagosome that engulfs and degrades cytosolic components via its fusion with the lysosome, in either a selective or a non-selective manner. Autophagy is tightly regulated by proteins encoded by autophagy-related (atg) genes. Among these proteins, ATG8/LC3 is essential for autophagosome biogenesis/maturation and it also functions as an adaptor protein for selective autophagy. In mammalian cells, several homologs of yeast Atg8 such as MAP1LC3, GABARAP, and GABARAPL 1/2 have been identified. However, the biological relevance of this gene diversity in higher eukaryotes, and their specific roles, are largely unknown. In this review, we describe the mammalian ATG8/LC3 family and discuss recent advancements in understanding their roles in the autophagic process.
We aimed to investigate the mechanism and effects of autophagy on cisplatin (DDP)-induced apoptosis in human gastric cancer cell line SGC7901. After SGC7901 cells were treated with DDP and/or chloroquine, cell proliferation was measured using MTT assay; cell apoptosis was determined by flow cytometry; autophagy and apotosis-related proteins expression were detected by Western blot; and quantitative analysis of autophagy after monodansylcadaverine (MDC) staining was performed using fluorescence microscopy. We found after treatment with 5 mg/L DDP for 24 h, the rates of cell apoptosis were ($21.07{\pm}2.12$)%. Autophagy, characterized by an increase in the number of autophagic vesicles and the level of LC3-II protein was observed in cells treated with DDP. After inhibition of autophagy by chloroquine, the rates of cell apoptosis were increased to ($30.16{\pm}3.54$)%, and the level of Caspase-3 and P53 protein were increased, and Bcl-2 protein was decreased. Therefore, autophagy protects human gastric cancer cell line SGC7901 against DDP-induced apoptosis, inhibition of autophagy can promote apoptosis, and combination therapy with DDP and chloroquine may be a promising therapeutic strategy for gastric cancer.
Autophagy targets cytoplasmic cargo to a lytic compartment for degradation. Autophagy-related (Atg) proteins, including the transmembrane protein Atg9, are involved in different steps of autophagy in yeast and mammalian cells. Functional classification of core Atg proteins in plants has not been clearly confirmed, partly because of the limited availability of reliable assays for monitoring autophagic flux. By using proUBQ10-GFP-ATG8a as an autophagic marker, we showed that autophagic flux is reduced but not completely compromised in Arabidopsis thaliana atg9 mutants. In contrast, we confirmed full inhibition of auto-phagic flux in atg7 and that the difference in autophagy was consistent with the differences in mutant phenotypes such as hypersensitivity to nutrient stress and selective autophagy. Autophagic flux is also reduced by an inhibitor of phosphatidylinositol kinase. Our data indicated that atg9 is phenotypically distinct from atg7 and atg2 in Arabidopsis, and we proposed that ATG9 and phosphatidylinositol kinase activity contribute to efficient autophagy in Arabidopsis.
Kwang Ho Lee;Adiyantara Gumilang;Teng Fu;Sung Wook Kang;Kyoung Su Kim
Mycobiology
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제50권6호
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pp.467-474
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2022
Autophagy serves as a survival mechanism and plays important role in nutrient recycling under conditions of starvation, nutrient storage, ad differentiation of plant pathogenic fungi. However, autophagy-related genes have not been investigated in Colletotrichum scovillei, a causal agent of pepper fruit anthracnose disease. ATG8 is involved in autophagosome formation and is considered a marker of autophagy. Therefore, we generated an ATG8 deletion mutant, ΔCsatg8, via homologous recombination to determine the functional roles of CsATG8 in the development and virulence of C. scovillei. Compared with the wild-type, the deletion mutant ΔCsatg8 exhibited a severe reduction in conidiation. Conidia produced by ΔCsatg8 were defective in survival, conidial germination, and appressorium formation. Moreover, conidia of ΔCsatg8 showed reduced lipid amount and PTS1 selectivity. A virulence assay showed that anthracnose development on pepper fruits was reduced in ΔCsatg8. Taken together, our results suggest that CsATG8 plays various roles in conidium production and associated development, and virulence in C. scovillei.
Autophagy is a degradation pathway in eukaryotic cells in which aging proteins and organelles are sequestered into double-membrane vesicles, termed autophagosomes, which fuse with vacuoles to hydrolyze cargo. The key step in autophagy is the formation of autophagosomes, which requires different kinds of vesicles, including COPII vesicles and Atg9-containing vesicles, to transport lipid double-membranes to the phagophore assembly site (PAS). In yeast, the cis-Golgi localized t-SNARE protein Sed5 plays a role in endoplasmic reticulum (ER)-Golgi and intra-Golgi vesicular transport. We report that during autophagy, sed5-1 mutant cells could not properly transport Atg8 to the PAS, resulting in multiple Atg8 dots being dispersed into the cytoplasm. Some dots were trapped in the Golgi apparatus. Sed5 regulates the anterograde trafficking of Atg9-containing vesicles to the PAS by participating in the localization of Atg23 and Atg27 to the Golgi apparatus. Furthermore, we found that overexpression of SFT1 or SFT2 (suppressor of sed5 ts) rescued the autophagy defects in sed5-1 mutant cells. Our data suggest that Sed5 plays a novel role in autophagy, by regulating the formation of Atg9-containing vesicles in the Golgi apparatus, and the genetic interaction between Sft1/2 and Sed5 is essential for autophagy.
Mitochondria are responsible for supplying of most of the cell's energy via oxidative phosphorylation. However, mitochondria also can be deleterious for a cell because they are the primary source of reactive oxygen species, which are generated as a byproduct of respiration. Accumulation of mitochondrial and cellular oxidative damage leads to diverse pathologies. Thus, it is important to maintain a population of healthy and functional mitochondria for normal cellular metabolism. Eukaryotes have developed defense mechanisms to cope with aberrant mitochondria. Mitochondria autophagy (known as mitophagy) is thought to be one such process that selectively sequesters dysfunctional or excess mitochondria within double-membrane autophagosomes and carries them into lysosomes/vacuoles for degradation. The power of genetics and conservation of fundamental cellular processes among eukaryotes make yeast an excellent model for understanding the general mechanisms, regulation, and function of mitophagy. In budding yeast, a mitochondrial surface protein, Atg32, serves as a mitochondrial receptor for selective autophagy that interacts with Atg11, an adaptor protein for selective types of autophagy, and Atg8, a ubiquitin-like protein localized to the isolation membrane. Atg32 is regulated transcriptionally and post-translationally to control mitophagy. Moreover, because Atg32 is a mitophagy-specific protein, analysis of its deficient mutant enables investigation of the physiological roles of mitophagy. Here, we review recent progress in the understanding of the molecular mechanisms and functional importance of mitophagy in yeast at multiple levels.
Kim, Jin Kyeong;Shin, Kon Kuk;Kim, Haeyeop;Hong, Yo Han;Choi, Wooram;Kwak, Yi-Seong;Han, Chang-Kyun;Hyun, Sun Hee;Cho, Jae Youl
Journal of Ginseng Research
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제45권6호
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pp.717-725
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2021
Background: Korean Red Ginseng (KRG) is a traditional herb that has several beneficial properties including anti-aging, anti-inflammatory, and autophagy regulatory effects. However, the mechanisms of these effects are not well understood. In this report, the underlying mechanisms of anti-inflammatory and autophagy-promoting effects were investigated in aged mice treated with KRG-water extract (WE) over a long period. Methods: The mechanisms of anti-inflammatory and autophagy-promoting activities of KRG-WE were evaluated in kidney, lung, liver, stomach, and colon of aged mice using semi-quantitative reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR), quantitative RT-PCR (qRT-PCR), and western blot analysis. Results: KRG-WE significantly suppressed the mRNA expression levels of inflammation-related genes such as interleukin (IL)-1β, IL-8, tumor necrosis factor (TNF)- α, monocyte chemoattractant protein-1 (MCP-1), and IL-6 in kidney, lung, liver, stomach, and colon of the aged mice. Furthermore, KRG-WE downregulated the expression of transcription factors and their protein levels associated with inflammation in lung and kidney of aged mice. KRG-WE also increased the expression of autophagy-related genes and their protein levels in colon, liver, and stomach. Conclusion: The results suggest that KRG can suppress inflammatory responses and recover autophagy activity in aged mice.
Background: KG-135, a standardized formulation enriched with Rk1, Rg3, and Rg5 ginsenosides, has been shown to inhibit various types of cancer cells; however, the underlying mechanisms are not fully understood. In this study, we explored its effects in A549 human lung cancer cells to investigate the induction of Forkhead Class box O3a (FOXO3a) and autophagy. Methods: Cell viability was determined by sulforhodamine B staining. Apoptosis and cell cycle distribution were analyzed using flow cytometry. The changes of protein levels were determined using Western blot analysis. Autophagy induction was monitored by the formation of acidic vesicular organelles stained with acridine orange. Results: KG-135 effectively arrested the cells in G1 phase with limited apoptosis. Accordingly, a decrease of cyclin-dependent kinase-4, cyclin-dependent kinase-6, cyclin D1, and phospho-retinoblastoma protein, and an increase of p27 and p18 proteins were observed. Intriguingly, KG-135 increased the tumor suppressor FOXO3a and induced the accumulation of autophagy hallmark LC3-II and acidic vesicular organelles without an increase of the upstream marker Beclin-1. Unconventionally, the autophagy adaptor protein p62 (sequestosome 1) was increased rather than decreased. Blockade of autophagy by hydroxychloroquine dramatically potentiated KG-135-induced FOXO3a and its downstream (FasL) ligand accompanied by the cleavage of caspase-8. Meanwhile, the decrease of Bcl-2 and survivin, as well as the cleavage of caspase-9, were also drastically enhanced, resulting in massive apoptosis. Conclusion: Besides arresting the cells in G1 phase, KG-135 increased FOXO3a and induced an unconventional autophagy in A549 cells. Both the KG-135-activated extrinsic FOXO3a/FasL/caspase-8 and intrinsic caspase-9 apoptotic pathways were potentiated by blockade of autophagy. Combination of KG-135 and autophagy inhibitor may be a novel strategy as an integrative treatment for cancers.
Jung, Ran;Choi, Jong Ho;Lee, Hyun Jung;Kim, Jin Kyeoung;Kim, Gi Jin
한국발생생물학회지:발생과생식
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제17권2호
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pp.99-109
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2013
Trophoblasts, in the placenta, play a role for placental development as well as implantation in the early pregnancy. The characteristics and functions of trophoblast are identified by their localization and potency for proliferation, differentiation, and invasion. Thus, inadequate trophoblast cell death induces trophoblast dysfunction resulting in abnormal placental development and several gynecological diseases. Recently, it was reported that increased immortalization-upregulated protein-2 (IMUP-2) by hypoxia influences trophoblast apoptosis. However, IMUP-2 function on autophagy, which is type II programmed cell death remains unclear. In this study, we analyzed IMUP-2 expression in trophoblast cells (HTR8-SVneo) and compared IMUP-2 effects on cell death including apoptosis and autophagy in trophoblast regardless of IMUP-2 expression. Increased IMUP-2 in trophoblast by IMUP-2 gene transfection induces cell death, especially, apoptosis increases more than autophagy (p<0.05). However, the decreased IMUP-2 in trophoblasts after siRNA treatment decreased apoptosis with the decreased activities of caspase 3 and 7. The expressions of LC3 and MDC as an autophagosome makers and phosphorylated mTOR, which is a negative regulator for autophagy, increased. In addition, the S phase of cell cycle increased in trophoblasts when IMUP-2 expression decreased. Taken together, the alteration of IMUP-2 can control the balance between apoptosis and autophagy of trophoblasts resulting in functional involvement in placental development and in gynecological diseases by regulating the function of trophoblasts.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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