Annexin I is a member of the in family of calcium dependent phospholipid banding proteins and is an in vitro phospholipase $A_2$ (PLA$_2$) inhibitor. The mechanism of PLA$_2$ inhibition by annexin I is still ambiguous. The structure of annexin I was studied at the atomic level by using nuclear magnetic resonance (NMR), circular dichrotsm (CD) and fluorescence spectroscopy. Recombinant human annexin I and N-terminally truncated annexin I (1-31 deleted: d-annexin I) were purified and their NMR spectra were compared. The NMR spectra of the two were similar. When $Ca^{2+}$ ion added to annexin I ad d-annexin I, peak broadening occurred, but no significant spectroscopic change was observed. When porcine pancreatic PLA$_2$ was added to deuterium labeled annexin I, an interaction of annexin I with PLA$_2$ was observed as indicated by the disappearance and shift of several peaks in the NMR spectrum. This result supports a protein-protein interaction mechanism for PLA$_2$ inhibition by annexin I.I.
Auranofin has been developed as antirheumatic drugs, which is currently under clinical development for the treatment of chronic lymphocytic leukemia. Previous report showed that auranofin induced apoptosis by enhancement of annexin A5 expression in PC-3 cells. To understand the role of annexin A5 in auranofin-mediated apoptosis, we performed microarray data analysis to study annexin A5-controlled gene expression in annexin A5 knockdown PC-3 cells. Of differentially expressed genes, plasminogen activator inhibitor (PAI)-2 was increased by annexin A5 siRNA confirmed by qRT-PCR and western blot. Treatment with auranofin decreased PAI-2 and increased annexin A5 expression as well as promoting apoptosis. Furthermore, auranofin-induced apoptosis was recovered by annexin A5 siRNA but it was promoted by PAI-2 siRNA. Interestingly, knockdown of annexin A5 rescued PAI-2 expression suppressed by auranofin. Taken together, our study suggests that induction of annexin A5 by auranofin may enhance apoptosis through suppression of PAI-2 expression in PC-3 cells.
Human annexin I is a member of annexin family of calcium dependent phospholipid binding proteins, which have been implicated in various physiological roles including phospholipase A2(PLA2) inhibition, membrane fusion and calcium channel activity. In this work, the structure of N-terminally truncated human annexin I ({{{{ DELTA }}-annexin I) and its interactions with Ca2+, ATP and cAMP were studied at atomic level by using nuclear magnetic resonance (NMR) spectroscopy. The effect of Ca2+ binding on the structure of {{{{ DELTA }}-annexin I was investigated. The addition of Ca2+ to {{{{ DELTA }}-annexin I caused some changes in 13C NMR spectra. Carbonyl carbon resonances of some histidines were significantly broadened by Ca2+ binding. However, in the case of methionine, phenylalanine, and tyrosin, small changes could be observed. We found that ATP and cAMP bind {{{{ DELTA }}-annexin I, and the binding ratio of ATP to {{{{ DELTA }}-annexin I is 1. These results are well consistent with the report that cAMP and ATP interact with annexin I, and affect the calcium channels formed by annexin I. Because {{{{ DELTA }}-annexin I is a large protein with 35 kDa molecular weight, site-specific (carbonyl-13C) labeling technique was used to study the interaction sites of {{{{ DELTA }}-annexin I with Ca2+. NMR study was focused on the carbonyl carbon resonances of tyrosine, phenylalanine, methionine and histidine residues of {{{{ DELTA }}-annexin I because the number of these amino acids is small in the amino acid sequence of {{{{ DELTA }}-annexin I.
Human annexin I is a member of annexin family of calcium dependent phospholipid binding proteins, which have been implicated in various physiological roles including phospholipase A$_2$ (PLA$_2$) inhibition, membrane fusion and calcium channel activity. In this work, the structure of N-terminally truncated human annexin I (Δ-annexin I) and its interactions with Ca$\^$2+/, ATP and cAMP were studied at atomic level by using $^1$H, $\^$15/N, $\^$l3/C NMR (nuclear magnetic resonance) spectroscopy. The effect of Ca$\^$2+/ binding on the structure of Δ-annexin I was investigated, and compared with that of Mg$\^$2+/ binding. The addition of Ca$\^$2+/ to Δ-annexin I caused some changes in the high field and low field regions of $^1$H NMR spectra. Whereas, upon addition of Mg$\^$2+/ to Δ-annexin I, almost no change could be observed. Also we found that the binding ratio of ATP to Δ-annexin I is 1. Because Δ-annexin I is a large protein with 35 kDa molecular weight, site-specific (carbonyl-$\^$l3/C, amide-$\^$15/N) labeling technique was used to determine the interaction sites of Δ-annexin I with Ca$\^$2+/ and ATP. Assignments of all the histidinyl carbonyl carbon resonances have been completed by using Δ-annexin I along with its specific 1,2-subdomain. The carbonyl carbon resonances originating from His52 and His246 of Δ-annexin I were significantly affected by Ca$\^$2+/ binding, and some Tyr and Phe resonances were also affected. The carbonyl carbon resonances originating from His52 is significantly affected by ATP binding, therefore His52 seems to be involved in the ATP binding site of Δ-annexin I.
Background: Ginsenoside compound K(C-K), a major metabolite of ginsenoside, exhibits anticancer activity in various cancer cells and animal models. A cell signaling study has shown that C-K inhibited nuclear factor-kappa B ($NF-{\kappa}B$) pathway in human astroglial cells and liver cancer cells. However, the molecular targets of C-K and the initiating events were not elucidated. Methods: Interaction between C-K and Annexin A2 was determined by molecular docking and thermal shift assay. HepG2 cells were treated with C-K, followed by a luciferase reporter assay for $NF-{\kappa}B$, immunofluorescence imaging for the subcellular localization of Annexin A2 and $NF-{\kappa}B$ p50 subunit, coimmunoprecipitation of Annexin A2 and $NF-{\kappa}B$ p50 subunit, and both cell viability assay and plate clone formation assay to determine the cell viability. Results: Both molecular docking and thermal shift assay positively confirmed the interaction between Annexin A2 and C-K. This interaction prevented the interaction between Annexin A2 and $NF-{\kappa}B$ p50 subunit and their nuclear colocalization, which attenuated the activation of $NF-{\kappa}B$ and the expression of its downstream genes, followed by the activation of caspase 9 and 3. In addition, the overexpression of Annexin A2-K320A, a C-K binding-deficient mutant of Annexin A2, rendered cells to resist C-K treatment, indicating that C-K exerts its cytotoxic activity mainly by targeting Annexin A2. Conclusion: This study for the first time revealed a cellular target of C-K and the molecular mechanism for its anticancer activity.
To investigate the value of expression of annexin A2, microvessel density (MVD) and CD105 in pancreatic ductal adenocarcinoma (PDAC) tissues and adjacent normal tissues, immunohistochemical staining was used. The positive expression rate of Annexin A2 and the MVD in pancreatic ductal adenocarcinoma tissues was higher than that in in adjacent normal tissues (p<0.005). Expression of Annexin A2 and MVD correlated with histological grade (p<0.05). MVD of cancers in TNM stage IIb was higher than that in TNM stageI~IIa (p<0.026). Cancerous tissues with Annexin A2 staining grade 3+ had lower MVD than the tissues with the other Annexin A2 staining grade (p<0.05). Patients with high MVD had worse prognosis. However, our study did not confirm Annexin A2 was an independent risk factor for patients with PDAC. We confirmed MVD labeled by CD105 was an independent risk factor for patients with PDAC and had moderate predictive value of prognosis.
Annexin I is a member of the annexin family of calcium dependent phospholipid binding proteins and has anti-inflammatory activity by inhibiting phospholipase A$_2$ (PLA$_2$). Recent X-ray crystallographic study of annexin I identified six Ca$\^$2+/ binding bites, which was different types (type II, III) from the well-known EF-hand motif (type I). In this work, the structure of annexin I was studied at atomic level by using $^1$H, $\^$15/N and $\^$l3/C NMR(nuclear magnetic resonance) spectroscopy, and the effect of Ca$\^$2+/ binding on the structure of annexin I was studied, and compared with that of Mg$\^$2+/ binding, When Ca$\^$2+/ was added to annexin I, NMR peak change was occured in high- and low-field regions of $^1$H-NMR spectra. NMR peak change by Ca$\^$2+/ binding was different from that by Mg$\^$2+/ binding. Because annexin I is a larger protein with 35 kDa molecular weight, site-specific (amide-$\^$15/N, carbonyl-$\^$l3/C) labeling technique was also used. We were able to detect methionine, tyrosine and phenylalanine peaks respectively in $\^$13/C-NMR spectra, and each residue was able to be assigned by the method of doubly labeling annexin I with [$\^$13/C] carbonyl-amino acid and [$\^$15/N] amide-amino acid. In $\^$l3/C-NMR spectra of [$\^$13/C] carbonyl-Met labeled annexin I, we observed that methionine residues spatially located near Ca$\^$2+/ binding Sites Were Significantly effected by Ca$\^$2+/ binding. From UV spectroscopic data on the effect of Ca$\^$2+/ binding, we knew that Ca$\^$2+/ binding sites of annexin I have cooperativity in Ca$\^$2+/ binding. The interaction of annexin I with PLA$_2$ also could be detected by using heteronuclear NMR spctroscopy. Consequently, we expect that the anti-inflammatory action mechanism of annexin I may be a specific protein-protein interaction. The residues involved in the interaction with PLA$_2$ can be identified as active site by assigning NMR peaks effected by PLA$_2$ binding.
We have previously shown that 2,4,3',5'-tetramethoxystilbene (TMS), a trans-stilbene analogue, induces apoptosis in human cancer cells. However, the detailed mechanisms of mitochondria-dependent apoptosis induced by TMS are not fully understood. In the present study, the possible roles of annexin A5 in TMS-mediated apoptosis were investigated in MCF7 human breast cancer cells. Quantitative real-time PCR analysis and Western blot analysis showed that the expression of annexin A5 was strongly increased in TMS-treated cells. TMS caused a strong translocation of annexin A5 from cytosol into mitochondria. Confocal laser scanning microscopic analysis clearly showed that TMS induced translocation of annexin A5 into mitochondria. TMS increased the expression and oligomerization of voltage-dependent anion channel (VDAC) 1, which may promote mitochondria-dependent apoptosis through disruption of mitochondrial membrane potential. When cells were treated with TMS, the levels of Bax, and Bak as well as annexin A5 were strongly enhanced. Moreover, we found that the cytosolic release of apoptogenic factors such as cytochrome c, or apoptosis-inducing factor (AIF) in mitochondria was markedly increased. Annexin A5 depletion by siRNA led to decreased proapoptotic factors such as Bax, Bak, and annexin A5. Taken together, our results indicate that annexin A5 may play an important role in TMS-mediated mitochondrial apoptosis through the regulation of proapoptotic proteins and VDAC1 expression.
Annexin A3 has been identified as a novel biomarker in different types of cancers. However, little is known about its clinical significances and and biological roles in gastric cancer. In this study, we assessed annexin A3 expression in 80 patients with gastric cancer and explore its correlation with prognosis Moreover, correlations with Ki-67, Bcl-2 and Bax were also investigated. Expression of annexin A3 was increased in gastric cancer compared with that in normal gastric tissues. Annexin A3 expression was significantly associated with tumor volume and TNM stage (p<0.05). and inversely correlation with prognosis of patients. More interestingly, expression of annexin A3 was positive correlated with Ki-67 and Bcl-2 expression. Our study showed annexin A3 might be a potential prognostic marker for gastric cancer and involved in tumorigenesis by regulating apoptosis and proliferation.
Annexin I is a member of the annexin family of calcium dependent phospholipid binding proteins and has anti-inflammatory activity by inhibiting phospholipase A$_2$ (PLA$_2$). Recent X-ray crystallographic study of annexin I identified six Ca$\^$2+/ binding sites, which was different types (type II, III) from the well-known EF-hand motif (type I). (omitted)
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[게시일 2004년 10월 1일]
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