Lectin activities and chemical characteristics of Escherichia coli, Lactobacillus spp. and Bifidobacterium spp. originating from the porcine cecal mucosal layer were studied based on hemagglutination assay (HA) and hemagglutination inhibition assay (HIA). Although all the bacterial strains were able to agglutinate erythrocytes of porcine or rabbit origin, much higher HA titers were consistently observed for Lactobacillus spp. than for E. coli or for Bifidobacterium spp. A remarkable reduction in HA titers occurred by the treatment of E. coli and Lactobacillus spp. with protease or trypsin and of Bifidobacterium spp. with protease, trypsin or periodate. There were no significant effects on the HA titers of the three groups of bacteria after the treatment with lipase. Hemagglutination of E. coli was strongly inhibited by D (+)-mannose and D (+)-galactose; Lactobacillus spp. by $\alpha$-L-rhamnose and methyl-$\beta$-galactopyranoside; Bifidobacterium spp. by D (+)-alactose, $\alpha$-L-rhamnose, $\alpha$-L-fucose, L (+)-arabinose, D (+)-mannose, D (-)-fructose at a relatively low concentration (1.43 to 3.75 mg/ml). These results, combined with the enhanced HA activities of the three bacterial strains by modification of rabbit erythrocytes with neuraminidase and abolished HA activity of E. coli after treatment with $\beta$-galactosidase, indicate that it might be the glycoproteinous substances surrounding the surface of the bacterial cells that are responsible for the adhesions of these microorganisms by recognizing the specific receptors on the red blood cell.
Proceedings of the Korea Society of Poultry Science Conference
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2004.11a
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pp.9-10
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2004
We developed a new panel of markers for the characterization of chicken PGCs. The results of immunostaining demonstrated that anti-SSEA-3, anti-SSEA-4, anti-integrin 6, and anti-integrin 1 antibodies. and STA and DBA bound specifically to chicken PGCs. These reagents could be used to characterize chicken PGCs together with conventional marker reagents such as PAS and anti-SSEA-1 antibody. We also showed that double staining of PGCs with the newly developed markers was feasible, which might contribute to rapid detection and accurate characterization of chicken PGCs.
These studies were carried out to investigate the properties of H-Y antigen purified by immunoaffinity chromatography using monoclonal H-Y antibody. Immunoaffinity column was prepared by the coupling of monoclonal antibody to the Aminolink Coupling Gel. Murine testis supernatant was applied onto the column and eluted by O.lM glycine-HCl buffer and 31${\mu}g$ of H-Y Ag was eluted from one testis. Purified H-Y Ag strongly reacted with Con A and lentil from 6 different kinds of lectins tested, which may indicate that sugar moiety of H-Y Ag is composed of glucose, mannose and their derivatives. Con A-sepharose affinity column was used to purified H-Y Ag based on that H-Y Ag is glycoprotein. The fraction eluted by 0.2M Me-${\alpha}$-D-mannoside from the column loaded with murine testis supernatant was identified to be H-Y Ag by dot blot test. Molecular weight of the purified H-Y Ag was estimated by Sepharose G-75 gel filtration and SDS-PAGE, and showing that it was about 67,000 dalton. In fluorescence test, the ratio of XY embryos and XX embryos was 1:1.
Galectin family, endogenous ${\beta}$-galactoside-binding animal lectins, is known for the role in cell differentiation, morphogenesis, apoptosis and tumorigenesis. Galectin-3, one of family member, has been studied for its role in cell differentiation and tumor metastasis, and for its expression on epithelial cells of colon and mast cells but not in brain. Several reports, however, suggest its expression in brain including as a prion binding protein. In this report we explored possibility of galectin-3 expression in brain tissue. With Western blot and RT-PCR with rat brain tissues, we could detect galectin-3 that was not shown by conventional immunohistochemistry. Our results indicated galectin-3 was expressed in brain, and substantiate the previous report on galecin-3 as a prion-related protein in brain.
The seed, or grain, of modern cultivars of Lupinus angustifolius, commonly known as Australian sweet lupins (ASL), is an established feed resource for the intensive animal industries of Australia, Japan, Korea and several other countries in Asia and Europe. Since the introduction of ASL to the world marketplace about 25 years ago, researchers in many countries have found them to be a valuable component of the diet of beef and dairy cattle, sheep, pigs, poultry, finfish and crustaceans. The seed of ASL contains ~32% crude protein (CP) (~35% DM basis) and 5% oil. The main storage carbohydrates in the seed are the ${\beta}$-galactans that comprise most of the cell-wall material of the kernel and the cellulose and hemicellulose of the thick seed coats. ASL seeds contain about 40% non-starch polysaccharides (NSP) and a negligible amount of starch. This makes them an excellent ingredient for ruminant diets, as the risk of acidosis is very low. The seed of modern cultivars of domesticated Lupinus species contain negligible amounts of lectins and trypsin inhibitors so they do not require preheating before being used as an ingredient in feeds for monogastric species. They have a high digestibility coefficient for protein, >90% for most species, but a low energy digestibility, ~60%, which is mostly due to the high content of NSP. The low content of methionine (0.22%) and of lysine (1.46%) is typical of the legumes. The lysine availability for pigs is >70%. Lupin kernels contain ~39% CP (~42% DM basis), 6% oil and 30% NSP. They have a higher digestible energy for pigs and finfish and a higher metabolisable energy for poultry than whole seed. Commercial operations rarely achieve complete separation of kernel from hull and it is more likely that the kernel fraction, called splits or meats, will contain ~36% CP. The replacement of soybean meal or peas with ASL in cereal-based diets for most intensively reared animals, birds and fish is possible provided lysine, methionine and digestible energy levels are kept constant. This makes ASL economically competitive in many, but not all, circumstances.
Jung, Won Yong;Cho, Eun Seok;Kwon, Eun Jung;Park, Da Hye;Chung, Ki Hwa;Kim, Chul Wook
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.21
no.2
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pp.167-176
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2008
Galectins are a group of animal lectins consisting of galectin-type carbohydrate recognition domains (CRD) with relatively minor domains. The biological properties of galectins include the regulation of inflammation, intercellular adhesion, cell differentiation and cell death. The diverse kinds of galectin suggest variety in their biological roles. Galectin-1 is released during adipocyte differentiation and is associated with fat which is one of the important factors for meat quality. To verify expression level, a 0.5 kb clone of galectin-1 was obtained from cDNA prepared from back fat tissue of a Sancheong Berkshire pig with good quality meat, and the galectin-1 gene identified. The deduced amino acid sequence of the galectin-1 gene was compared with those obtained from other species. By using RT-PCR and Real time-PCR, an attempt was made to determine the expression level of galectin-1 and to compare with various tissues (tenderloin and back fat) taken from pigs in different groups. Grouping of pigs was based on growth-stage (weighing 60, 80, and 110 kg) and the sub-speciation (Yorkshire and Sancheong Berkshire pigs). We attempted to determine influences of pig species, growth stages and tissue variations on the expression level of the galectin-l gene and it was revealed that the expression pattern of the galectin-1 gene was significantly different (p<0.01 or p<0.05). Galectin-1 genes were expressed more highly in the back fat tissues of pigs weighing 110 kg than in those weighing 60 kg or 80 kg. However, the lowest expression was seen in the tenderloin tissues of pigs weighing 110 kg. Sancheong Berkshire pigs showed higher expression of the galectin-1 gene compared to Yorkshire pigs. Accordingly, it is considered that the expression pattern of the galectin-1 gene influences the growth of back fat tissues and the pig speciation relationship. Previous studies suggested that different expression of galectin-1 genes represents variety among the breeds and is closely related to fat tissue growth, conjugation and catabolism. Further, this study suggests that the expression of galectin-1 at a specific growth stage and tissue contributes significantly to the overall meat quality of Sancheong Berkshire pigs.
Cho, Jinhee;Bing, So Jin;Kim, Areum;Yu, Hak Sun;Lim, Yoon-Kyu;Shin, Taekyun;Choi, Jonghee;Jee, Youngheun
Korean Journal of Veterinary Research
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v.54
no.4
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pp.209-218
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2014
Experimental autoimmune encephalomyelitis (EAE), an animal model of human multiple sclerosis (MS), reflects pathophysiologic steps in MS such as the influence of T cells and antibodies reactive to the myelin sheath, and the cytotoxic effect of cytokines. Galectin-9 (Gal-9) is a member of animal lectins that plays an essential role in various biological functions. The expression of Gal-9 is significantly enhanced in MS lesions; however, its role in autoimmune disease has not been fully elucidated. To identify the role of Gal-9 in EAE, we measured changes in mRNA and protein expression of Gal-9 as EAE progressed. Expression increased with disease progression, with a sharp rise occurring at its peak. Gal-9 immunoreactivity was mainly expressed in astrocytes and microglia of the central nervous system (CNS) and macrophages of spleen. Flow cytometric analysis revealed that $Gal-9^+CD11b^+$ cells were dramatically increased in the spleen at the peak of disease. Increased expression of tumor necrosis factor (TNF)-R1 and p-Jun N-terminal kinase (JNK) was observed in the CNS of EAE mice, suggesting that TNF-R1 and p-JNK might be key regulators contributing to the expression of Gal-9 during EAE. These results suggest that identification of the relationship between Gal-9 and EAE progression is critical for better understanding Gal-9 biology in autoimmune disease.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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